Summary

El uso de la biología sintética para Ingeniero células vivas que interactúan con materiales programables

Published: March 09, 2017
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Summary

Este artículo presenta una serie de protocolos para el desarrollo de células modificadas y las superficies funcionalizadas que permiten sintéticamente por ingeniería genética de E. coli para controlar y manipular las superficies de materiales programables.

Abstract

Hemos desarrollado una interfaz abiótico-bióticos que permite a las células por ingeniería genética para el control de las propiedades materiales de una superficie funcionalizada. Este sistema se hace mediante la creación de dos módulos: una cepa sintéticamente ingeniería de células de E. coli y una interfaz de material funcionalizado. Dentro de este manuscrito detallamos un protocolo para la ingeniería genética de los comportamientos seleccionados dentro de una cepa de E. coli usando las estrategias de clonación molecular. Una vez desarrollado, esta cepa produce niveles elevados de biotina cuando se expone a un inductor químico. Adicionalmente, detalle protocolos para la creación de dos superficies funcionalizadas diferentes, cada uno de los cuales es capaz de responder a la biotina sintetizada por células. Tomados en conjunto, se presenta una metodología para la creación de un sistema enlazado, abiótico-bióticos que permite que las células para controlar la composición del material y montaje en sustratos inertes ingeniería.

Introduction

Aquí, se presenta los procedimientos para desarrollar un sustrato programable capaz de responder a una señal química a partir de una línea celular diseñada. 1 Hacemos esto mediante la creación de una interfaz de biotina-estreptavidina que responde a la biotina producida por las células sintéticamente ingeniería Escherichia coli (E. coli). Anteriormente, las superficies programables han sido diseñados para una amplia gama de aplicaciones, desde la detección de la toxina 2 y en el punto de atención de diagnóstico 3 con la defensa y la seguridad. 4 Mientras superficies programables pueden ser útiles como sensores y actuadores, que se pueden hacer más "inteligente" dotándolos de la capacidad de adaptarse a diferentes retos medioambientales. Por el contrario, incluso los microorganismos simples, tales como E. coli, tienen la capacidad de adaptación inherente y son capaces de responder a los desafíos con soluciones sofisticadas y, a menudo inesperados. Esta adaptabilidad ha permitido E.poblaciones coli, controladas por sus redes de genes complejos, de manera rentable buscar recursos, 5 crear productos de valor añadido, 6 e incluso potencia robótica micro-escala. 7 Mediante el acoplamiento de las ventajas adaptativas de las células vivas con el uso de superficies programables, podemos crear un sustrato inteligente capaz de dar respuesta a diferentes condiciones ambientales.

La biología sintética ha dado a los investigadores nuevas habilidades para programar el comportamiento de los organismos vivos. Mediante el diseño de las células que contienen las redes de regulación de genes nuevos, los investigadores pueden diseñar células que exhiben una gama de comportamientos programados. 8, 9 Más allá de la investigación básica, estos comportamientos pueden ser utilizados para aplicaciones tales como el control conjunto de materiales y biológicamente la producción de productos de valor añadido. 10 En esto, nos detalle la forma en que utilizamos las herramientas de la biología sintética para bañogineer una cepa de E. coli que sintetiza la biotina a la inducción. Esta cepa se desarrolló mediante el uso de métodos de clonación de enzimas de restricción para montar un plásmido, pKE1-lacI-bioB. Este plásmido, cuando se transforma en la cepa de E. coli K-12 MG1655, dota a las células con la capacidad de expresar niveles elevados de bioB, una enzima esencial para la síntesis de la biotina. Cuando se indujeron células transformadas con isopropil β-D-1-tiogalactopiranósido (IPTG) y provisto de un precursor de biotina, destiobiotina (DTB), se produjeron niveles elevados de biotina.

interacción de unión de biotina con estreptavidina es uno de los enlaces más fuertes no covalentes que se encuentran en la naturaleza. Como tal, la interacción biotina-estreptavidina es a la vez bien caracterizado y altamente empleado en la biotecnología. 11 Dentro de este manuscrito, se presentan dos estrategias que emplean la interacción biotina-estreptavidina para detectar y detectar la biotina producida por células con una superficie funcionalizada. Nosotrosreferirse a estas superficies contrastantes como los esquemas de control "indirectos" y "directos". En el esquema de control indirecto, la biotina producida por células compite con biotina que se ha conjugado e inmovilizado en una superficie de poliestireno para estreptavidina sitios de unión. Además, la estreptavidina está conjugado con peroxidasa de rábano (HRP). HRP modifica 3, 3 ', 5, 5' tetrametilbencidina (TMB), para producir una señal óptica, 12 que pueden ser controlados mediante la cuantificación de la absorbancia espectral (es decir, densidad óptica) a 450 nm (OD 450). Por lo tanto, el esquema de control indirecto permite a los investigadores medir la biotina producida por células mediante el control de la atenuación de la señal de OD 450.

El esquema de control directo explota el caso de estreptavidina-biotina mediante la inmovilización de estreptavidina directamente a una superficie del material y permitiendo que la biotina producida por células y HRP biotinilada para competir por los sitios de unión de estreptavidina. Una vez más, lalos niveles relativos de biotina producida por células son monitoreados mediante la medición de una señal OD 450.

En su conjunto, las células modificadas y las superficies funcionalizadas nos permiten controlar las propiedades de una superficie programable mediante la inducción de las redes en las células vivas. En otras palabras, hemos creado un sistema que aprovecha la capacidad de adaptación de los organismos vivos y la fiabilidad y la especificación de una interfaz material de ingeniería mediante la vinculación de estos sistemas.

Protocol

1. Medios y Cultura Preparación Preparar el caldo de medios lysogeny (LB) mezclando 25 g de polvo stock LB con 1 litro de agua desionizada (DI) y el tratamiento en autoclave de la solución a 121 ° C durante 20 minutos para esterilizar. Para preparar placas de LB, añadir 15 g de agar (1,5%) a los medios LB antes de la esterilización Preparar soluciones madre de 1,000x carbenicilina (Cb) en agua DI (50 mg / ml). Si la preparación de medio LB que incluye un ant…

Representative Results

Los resultados representativos se presentan en las cinco figuras adjuntas. En primer lugar, se presenta el proceso de clonación gráficamente (Figura 1) para que el lector pueda seguir visualmente los pasos críticos para la creación de la cepa de E. coli sintéticamente ingeniería. Con el fin de caracterizar la dinámica poblacional de las células, proporcionamos una curva de crecimiento (Figura 2) generado por la medición de la densidad ?…

Discussion

Hemos presentado una nueva estrategia para interconectar células modificadas que viven con una superficie de material funcionalizado. Esto se logró mediante el desarrollo de una línea celular capaz de sintetizar niveles elevados de biotina cuando se induce con IPTG. Los niveles elevados de biotina pueden entonces ser utilizados para modificar la superficie funcionalizada. Los protocolos detallados de cómo la ingeniería de la línea de células de E. coli y cómo crear dos superficies funcionalizadas difere…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los autores agradecen el apoyo de la adjudicación FA9550-13-1-0108 de la Fuerza Aérea Oficina de Investigación Científica de los EE.UU.. Los autores reconocen, además, el apoyo de la adjudicación N00014-15-1-2502 de la Oficina de Investigación Naval de los EE.UU., la financiación del Instituto de Tecnología crítico y Ciencias Aplicadas en el Instituto Politécnico de Virginia y la Universidad del Estado, y de la Fundación Nacional de Ciencia de Graduados de Investigación Programa de Becas, adjudicación número 1.607.310.

Materials

LB Broth, Miller  Fisher Scientific 12-795-027
Agar Fisher Scientific BP9744500
Carbenicillin  Fisher Scientific BP26481
M9, Minimimal Salts, 5X Sigma-Aldrich M6030
Casamino Acids  Fisher Scientific BP1424-100
Magnesium Sulfate, Anhydrous Fisher Scientific M65-500
Calcium Chloride, Dihydrate Fisher Scientific C79-500
Dextrose (D-Glucose), Anhydrous Fisher Scientific D16-1
NEB Turbo Cell Line New England Biolabs C2984l
Oligonucleotide Primers Thermo Fisher Scientific N/A 25N synthesis, DSL purification
Q5 High-Fidelity Polymerase New England Biolabs M0491S
Q5 Reaction Buffer New England Biolabs B9027S
dNTP Solution Mix New England Biolabs N0447S
Agarose Bioexpress E-3120-125
Ethidium Bromide, 1% Fisher Scientific BP1302-10
Gel Extraction Kits Epoch Biolabs 2260250
GenCatch Plasmid DNA Miniprep Kit Epoch Biolabs 2160250
AatII New England Biolabs R0117S
SacII New England Biolabs R0157S
HindIII-HF New England Biolabs R3104S
EcoRI-HF New England Biolabs R3101S
Cutsmart Buffer New England Biolabs B7204S
T4 DNA Ligase New England Biolabs M0202S
T4 DNA Ligase Reaction Buffer New England Biolabs B0202S
ColiRolle Glass Plating Beads  EMD Millipore 7101-3
Glycerol Fisher Scientific BP229-1
Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) Fisher Scientific BP1755-10
NHS-Desthiobiotin (DTB) Thermo Fisher Scientific 16129
Succinimidyl Trans-4-(maleimidylmethyl) Cyclohexane-1-Carboxylate (SMCC)  Thermo Fisher Scientific S1534
Dimethyl Sulfoxide (DMSO)  Fisher Scientific BP231-100
Succinimidyl 3-(2-pyridyldithio) Propionate (SPDP)  Thermo Fisher Scientific S1531
NHS-LC-LC-biotin Thermo Fisher Scientific 21343
Horseradish Peroxidase (HRP)  Thermo Fisher Scientific 31490
Phosphate Buffered Saline (PBS), 10X Solution Fisher Scientific BP399500
Streptavidin (SA)  Thermo Fisher Scientific 21145
Bovine Serum Albumin (BSA) Fisher Scientific BP1600-100
Dithiothreitol (DTT) Fisher Scientific BP172-5
Ethylenediaminetetaacetic acid (EDTA)  Fisher Scientific S311-500
Tween 80  Fisher Scientific T164-500
Hydrogen Peroxide Fisher Scientific H325-4
3, 3', 5, 5'-tetramethylbenzidine (TMB) Fisher Scientific AC229280050
Vivaspin 500 Centrifugal Concentrators  Viva Products VS0192
Sodium Acetate, Anhydrous Fisher Scientific BP333-500
96-Well Polystyrene Plates Thermo Fisher Scientific 266120

Riferimenti

  1. Zhang, R., Heyde, K. C., Scott, F. Y., Paek, S. -. H., Ruder, W. C. Programming Surface Chemistry with Engineered Cells. ACS Synth. Biol. , (2016).
  2. Zhou, X., et al. Reduced graphene oxide films used as matrix of MALDI-TOF-MS for detection of octachlorodibenzo-p-dioxin. Chem. Commun. 46, 6974-6976 (2010).
  3. Pardee, K., et al. Low-Cost Detection of Zika Virus Using Programmable Biomolecular Components. Cell. 165, 1255-1266 (2016).
  4. Bähring, S., et al. Design and Sensing Properties of a Self-Assembled Supramolecular Oligomer. Chem. Eur. J. 22, 1958-1967 (2016).
  5. Nicolau Jr, D. V., Armitage, J. P., Maini, P. K. Directional persistence and the optimality of run-and-tumble chemotaxis. Comp. Biol. Chem. 33, 269-274 (2009).
  6. Du, J., Shao, Z., Zhao, H. Engineering microbial factories for synthesis of value-added products. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 38, 873-890 (2011).
  7. Kim, H., Kim, M. J. Electric Field Control of Bacteria-Powered Microrobots Using a Static Obstacle Avoidance Algorithm. IEEE Trans. Rob. 32, 125-137 (2016).
  8. Gardner, T. S., Cantor, C. R., Collins, J. J. Construction of a genetic toggle switch in Escherichia coli. Nature. 403, 339-342 (2000).
  9. Heyde, K. C., Ruder, W. C. Exploring Host-Microbiome Interactions using an in Silico Model of Biomimetic Robots and Engineered Living Cells. Sci. Rep. 5, 11988 (2015).
  10. Rice, M. K., Ruder, W. C. Creating biological nanomaterials using synthetic biology. Sci. Tech. Adv. Mater. 15, 014401 (2014).
  11. Green, N. M. Avidin. 3. The nature of the biotin-binding site. Biochem. J. 89, 599-609 (1963).
  12. Mesulam, M. M. Tetramethyl benzidine for horseradish peroxidase neurohistochemistry: a non-carcinogenic blue reaction product with superior sensitivity for visualizing neural afferents and efferents. J Histochem. Cytochem. 26, 106-117 (1978).
  13. Litcofsky, K. D., Afeyan, R. B., Krom, R. J., Khalil, A. S., Collins, J. J. Iterative plug-and-play methodology for constructing and modifying synthetic gene networks. Nat. Meth. 9, 1077-1080 (2012).
  14. Gibson, D. G., et al. Complete Chemical Synthesis, Assembly, and Cloning of a Mycoplasma genitalium Genome. Science. 319, 1215-1220 (2008).
  15. Diamandis, E. P., Christopoulos, T. K. The biotin-(strept)avidin system: principles and applications in biotechnology. Clin. Chem. 37, 625-636 (1991).
  16. Nerurkar, L. S., Namba, M., Brashears, G., Jacob, A. J., Lee, Y. J., Sever, J., L, Rapid detection of herpes simplex virus in clinical specimens by use of capture biotin-streptavidin enzyme-linked immunosorbent assay. J. Clin. Micro. 20, 109-114 (1984).
  17. Cui, Y., Wei, Q., Park, H., Lieber, C. M. Nanowire Nanosensors for Highly Sensitive and Selective Detection of Biological and Chemical Species. Science. 293, 1289-1292 (2001).

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Citazione di questo articolo
Heyde, K. C., Scott, F. Y., Paek, S., Zhang, R., Ruder, W. C. Using Synthetic Biology to Engineer Living Cells That Interface with Programmable Materials. J. Vis. Exp. (121), e55300, doi:10.3791/55300 (2017).

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