Summary

लाइमिनिन 521 मैट्रिक्स का उपयोग करने वाले मानव प्रेरित प्लुरिपोटेंट स्टेम सेल का एकीकरण फ्री डेरीवेशन

Published: July 07, 2017
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Summary

मानव प्रेरित प्लुरिपोटेंट स्टेम (एचईपीएस) कोशिकाओं के मजबूत व्युत्पन्न त्वचीय फाइब्रोब्लैस्ट्स के गैर-एकीकृत सेंडाइ वायरस (सीएवी) वेक्टर मध्यस्थताग्रस्त reprogramming का उपयोग करके प्राप्त किया गया था। एचईपीएस कोशिका के रखरखाव और क्लोनल विस्तार को पुन: संयोजक मानव लैमिनिन 521 (एलएन -521) मैट्रिक्स और आवश्यक ई 8 (ई 8) मध्यम के साथ एक्सो मुक्त और रासायनिक रूप से परिभाषित संस्कृति शर्तों का उपयोग किया गया था।

Abstract

एक्सो-फ्री और पूरी तरह से परिभाषित स्थितियां समरूप इंसान प्रेरित प्लूइपोटेंट स्टेम (एचपीएस) कोशिकाओं के मजबूत और प्रजनन योग्य पीढ़ी के प्रमुख पैरामीटर हैं। फीडर कोशिकाओं या अपरिभाषित मैट्रिक्स पर हायपीएस कोशिकाओं के रखरखाव बैच के भिन्नता, रोगजनक प्रदूषण और प्रतिरक्षा प्रत्यारोपण के जोखिम के लिए अतिसंवेदनशील होते हैं। परिभाषित पुनः संयोजक मानव लैमिनिन 521 (एलएन -521) मैट्रिक्स का उपयोग एक्सनो-फ्री और परिभाषित मीडिया फॉर्म्युलेशन के साथ में परिवर्तनशीलता को कम करता है और हायपीएस कोशिकाओं की लगातार पीढ़ी के लिए अनुमति देता है। सेंडाइ वायरस (एसईवी) वेक्टर एक गैर-एकीकृत आरएनए आधारित प्रणाली है, इस प्रकार जीनोम अखंडता समेकन करने वाले वैक्टर पर संभावित विघटनकारी प्रभाव से जुड़े चिंताओं को खारिज कर सकते हैं। इसके अलावा, इन वैक्टर ने त्वचीय तंतुकोशिकाओं के पुनर्प्रक्रमण में अपेक्षाकृत उच्च दक्षता का प्रदर्शन किया है। इसके अलावा, कोशिकाओं के एंजाइमेटिक एकल कोशिका उत्कीर्णन ने स्टेम सीए के पर्याप्त अनुभव के बिना एचपीएस कोशिकाओं के सजातीय रखरखाव की सुविधा प्रदान कीसंस्कृति होगी यहां हम एक प्रोटोकॉल का वर्णन करते हैं जो बड़े पैमाने पर परीक्षण किया गया है और प्रजननशीलता और उपयोग में आसानी पर ध्यान देने के साथ विकसित किया गया है, जिससे फाइब्रोब्लैस्ट्स से परिभाषित और एक्सनो-मुक्त मानव एचपीएस कोशिकाओं को उत्पन्न करने के लिए एक मजबूत और व्यावहारिक तरीका प्रदान किया गया है।

Introduction

ताकाहाशी एट अल द्वारा हायपीएस सेल लाइनों की पहली व्युत्पत्ति के बाद से 1 , 2 , हायपीएस कोशिकाओं ने बीमारी मॉडलिंग, दवा की खोज के लिए एक उपयोगी उपकरण प्रदान किया है और पुनर्योजी औषधि 3 में सेल थेरेपी बनाने के लिए स्रोत सामग्री के रूप में। हायपीएस कोशिका संस्कृति लंबे समय तक फाइब्रोब्लास्ट फीडर कोशिकाओं 4 , 5 या मैटिगल 6 पर और भ्रूण गोजातीय सीरम (एफबीएस) वाले मीडिया फॉर्मूलेशन के साथ सह-संस्कृति पर निर्भर रही है। बैच-टू-बैच वेरिएंस इन संस्कृति शर्तों की अपरिभाषित प्रकृति का एक सामान्य परिणाम है, जिसके परिणामस्वरूप अप्रत्याशित रूप से भिन्नताएं होती हैं, जो इन प्रोटोकॉल 7 की अविश्वसनीयता के लिए एक प्रमुख योगदानकर्ता है। परिभाषित माध्यम जैसे कि आवश्यक 8 (ई 8 ) 8 और परिभाषित सेल संस्कृति मैट्रिक्स उदाहरण के लिए एलएन -521 9 , की अनुमति देंउच्च प्रतिलिपि प्रस्तुत करने योग्य प्रोटोकॉल की स्थापना के लिए और समृद्ध हायपीएस कोशिकाओं 7 , 8 , 9 , 10 की मजबूत पीढ़ी और रखरखाव में सहायता।

एकीकरण के मुक्त पुनर्रोग्राम तकनीक का विकास एक छलांग आगे है। मूल रूप से, रिप्रोग्रैमिगिंग रेट्रोवायरल वैक्टर पर निर्भर था जो जीनोमिक अखंडता 11 पर विघटनकारी प्रभावों के साथ जीनोम में बेतरतीब ढंग से एकीकृत हुआ था। रिप्रोग्रागमिंग पद्धतियों में अग्रिमों में आरएनए आधारित वैक्टर के विकास शामिल हैं। आरएनए वैक्टर के पास डीएनए आधारित रिप्रोग्रामिंग विधि पर एक फायदा है क्योंकि जीनोमिक पुनर्संयोजन के जरिए अनपेक्षित एकीकरण 12 संभव नहीं है। एसईवी वैक्टर डीएनए चरण 11 के बिना अकेले फंसे हुए आरएनए के माध्यम से बहिर्जात कारकों के उच्च और क्षणिक अभिव्यक्ति प्रदान करते हैं सेव द्वारा वितरित पुनःप्रोग्रामाकरण वैक्टरसेल के विस्तार के दौरान पतला हो जाता है और अंततः संस्कृति से बहाल हो जाता है जिससे कि पुनर्रोग्रामिंग के एक पैरों के छद्म मुक्त तरीका उपलब्ध हो सके। इसके बाद, प्लुरिपोटेंसी का रखरखाव प्लुरिपोटेंसी जीन के अंतर्जात अभिव्यक्ति पर निर्भर करता है 2

जैसा कि अग्रणी एचईपीएस सेल आधारित चिकित्सा नैदानिक ​​परीक्षणों में बढ़ने की शुरुआत कर रहे हैं, मानकीकृत बैचों की मांग, पुनरुत्पादन और सुरक्षा 13 को संबोधित करने के लिए आवश्यक मुद्दों हैं। इसलिए, पशु उत्पत्ति के उत्पादों से बचा जाना चाहिए। उदाहरण के लिए, ज़ीनोजेनिक उत्पादों का उपयोग गैर-हानिकारक रोगजन संदूषण के जोखिम से जुड़ा हुआ है। इसके अलावा, पशु व्युत्पन्न संस्कृति घटकों की उपस्थिति में सुसंस्कृत कोशिकाओं को गैर-विषम सिएलिक एसिड को कोशिका झिल्ली में शामिल करने के लिए दिखाया गया है जो व्युत्पन्न कोशिकाओं immunogenic 14 को प्रस्तुत करने की धमकी देता है। इसलिए, किसी भी भविष्य के क्लिनिकल व्यवसायों के लिए एक्सनोजेनिक उत्पादों को खत्म करने की आवश्यकता जरूरी है। यह प्रोटोकॉल Xe लागू करता हैएचपीपीएस कोशिकाओं के रखरखाव में कोई मुक्त और परिभाषित संस्कृति कोशिकाओं को नैदानिक ​​अनुपालन के करीब लेती है।

यह प्रोटोकॉल एक सुसंगत, अत्यधिक प्रतिलिपि प्रस्तुत करने योग्य और आसानी से उपयोग करने वाली विधि का वर्णन करता है जो फाइब्रोब्लैस्ट से मानकीकृत हाईपीएस कोशिकाओं को उत्पन्न करता है। यह स्थापित hiPS कोशिकाओं के रखरखाव के लिए उपयोगकर्ता-अनुकूल संस्कृति प्रणाली भी प्रदान करता है। इस प्रोटोकॉल का उपयोग Karolinska Institutet में स्वीडिश राष्ट्रीय मानव आईपीएस कोर सुविधा में 300 से अधिक hiPS सेल लाइनों को प्राप्त करने के लिए किया गया है, जिनमें से कुछ पंक्तियों को पहले 15 , 16 का वर्णन किया गया है।

Protocol

मरीज की सामग्री और हायपीएस कोशिकाओं के संग्रह का संग्रह एथिक्स रिव्यू बोर्ड, स्टॉकहोम, 28 मार्च 2012, पंजीकरण संख्या: 2012 / 208-31 / 3 द्वारा अनुमोदित किया गया है। सेल संस्कृति कदम जैव सुरक्षा अलमारियाँ में किया जा…

Representative Results

बायोप्सी से एचपीएस कोशिकाओं तक बायोप्सी से स्थापित की गई हायपीएस कोशिकाओं की पूरी प्रक्रिया, पुनःप्रोग्रा्रामिंग वेक्टर के स्पष्ट और लक्षण वर्णन के लिए तैयार, लगभ?…

Discussion

इस प्रोटोकॉल का अपेक्षित परिणाम कई क्लोनली व्युत्पन्न हायपीएस सेल लाइनों की सफल पीढ़ी है। महत्वपूर्ण रूप से, यहां वर्णित स्थापित hiPS कोशिकाओं के रखरखाव और विस्तार के लिए विधि विश्वसनीय है और स्टेम सेल…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

यह काम एसएसएफ़ (बी 13 -0074) और विनोवा (2016-04134) फंडिंग एजेंटों द्वारा समर्थित था।

Materials

Dispase Life Technologies 171105-041 Biopsy digestion
Collagenase Sigma C0130 Biopsy digestion
Gelatin Sigma G1393 Fibroblast matrix
IMDM Life Technologies 21980002-032 Fibroblast medium
FBS Invitrogen 10270106 Fibroblast medium
PenicillinStreptomycin Life Technologies 15070-063 Antibiotic
Essential 8 media ThermFisher Scientific A1517001 iPS cell culture media
LN-521 Biolamina LN521-03 iPS cell culture matrix
TrypLE select 1X ThermoFisher Scientific 12563011 Dissociation reagent
Rho-kinase inhibitor Y27632 Millipore SCM075 Rho-kinase inhibitor (ROCKi)
CytoTune – iPS 2.0 reprogramming kit Life Technologies A1377801 Sendai virus reprogramming vector
35 mm tissue culture dish Sarstedt 83.3900.300 Cell culture
60 mm tissue culture dishes Sarstedt 83.3901.300 Cell culture
24 well tissue culture plates Sarstedt 83.3922.300 Cell culture
T25 tissue culture flasks VWR 734-2311 Cell culture
15 ml tubes Corning 430791 Centrifuge tubes
1.5 ml tube Eppendorf 0030123.301 1.5 ml tube
CoolCell cell LX Biocision BCS-405 Freezing container
DMSO Sigma D2650-100ml Fibroblast freezing
Cryovials 1.8 ml VWR 479-6847 Cryovials
PSC Cryopreservation Kit Gibco A2644601 PSC CryomediumRevitaCell supplement
Trypsin-EDTA (0.05%) ThermoFisherScientific 25300054 Fibroblast dissociation enzyme
DMEM/F12 Life Technologies 31331-028 Digestive enzymes dilutant
DPBS Life Technologies 14190-094 PBS
HBSS ThermoFIsher Scientific 14025-050 Biopsy preparation
Haemocytometer Sigma BRAND, 718920 Cell counting

References

  1. Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131 (5), 861-872 (2007).
  2. Jin, Z. B., Okamoto, S., Xiang, P., Takahashi, M. Integration-free induced pluripotent stem cells derived from retinitis pigmentosa patient for disease modeling. Stem Cells Transl Med. 1 (6), 503-509 (2012).
  3. Zhou, H., Ding, S. Evolution of induced pluripotent stem cell technology. Curr Opin Hematol. 17 (4), 276-280 (2010).
  4. Thomson, J. A., et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282 (5391), 1145-1147 (1998).
  5. Hovatta, O., et al. A culture system using human foreskin fibroblasts as feeder cells allows production of human embryonic stem cells. Hum Reprod. 18 (7), 1404-1409 (2003).
  6. Ludwig, T. E., et al. Feeder-independent culture of human embryonic stem cells. Nat Methods. 3 (8), 637-646 (2006).
  7. Rodin, S., et al. Long-term self-renewal of human pluripotent stem cells on human recombinant laminin-511. Nat Biotech. 28 (6), 611-615 (2010).
  8. Chen, G., et al. Chemically defined conditions for human iPSC derivation and culture. Nat Meth. 8 (5), 424-429 (2011).
  9. Rodin, S., Antonsson, L., Hovatta, O., Tryggvason, K. Monolayer culturing and cloning of human pluripotent stem cells on laminin-521-based matrices under xeno-free and chemically defined conditions. Nat Protoc. 9 (10), 2354-2368 (2014).
  10. Rodin, S., et al. Clonal culturing of human embryonic stem cells on laminin-521/E-cadherin matrix in defined and xeno-free environment. Nat Commun. 5, 3195 (2014).
  11. Fusaki, N., Ban, H., Nishiyama, A., Saeki, K., Hasegawa, M. Efficient induction of transgene-free human pluripotent stem cells using a vector based on Sendai virus, an RNA virus that does not integrate into the host genome. Proc Jpn Acad Ser B Phys Biol Sci. 85 (8), 348-362 (2009).
  12. Warren, L., et al. Highly Efficient Reprogramming to Pluripotency and Directed Differentiation of Human Cells with Synthetic Modified mRNA. Cell Stem Cell. 7 (5), 618-630 (2010).
  13. Unger, C., Skottman, H., Blomberg, P., Dilber, M. S., Hovatta, O. Good manufacturing practice and clinical-grade human embryonic stem cell lines. Hum Mol Genet. 17 (R1), R48-R53 (2008).
  14. Martin, M. J., Muotri, A., Gage, F., Varki, A. Human embryonic stem cells express an immunogenic nonhuman sialic acid. Nat Med. 11 (2), 228-232 (2005).
  15. Kele, M., et al. Generation of human iPS cell line CTL07-II from human fibroblasts, under defined and xeno-free conditions. Stem Cell Research. 17 (3), 474-478 (2016).
  16. Uhlin, E., et al. Derivation of human iPS cell lines from monozygotic twins in defined and xeno free conditions. Stem Cell Research. 18, 22-25 (2017).
  17. . Biosafety in Microbiological and Biomedical Laboratories Available from: https://www.cdc.gov/biosafety/publications/bmbl5/bmbl.pdf (2009)
  18. Itskovitz-Eldor, J., et al. Differentiation of human embryonic stem cells into embryoid bodies compromising the three embryonic germ layers. Mol Med. 6 (2), 88-95 (2000).
  19. Chen, K. G., Mallon, B. S., McKay, R. D., Robey, P. G. Human pluripotent stem cell culture: considerations for maintenance, expansion, and therapeutics. Cell Stem Cell. 14 (1), 13-26 (2014).
  20. Jacobs, K., et al. Higher-Density Culture in Human Embryonic Stem Cells Results in DNA Damage and Genome Instability. Stem Cell Reports. 6 (3), 330-341 (2016).
  21. Schlaeger, T. M., et al. A comparison of non-integrating reprogramming methods. Nat Biotech. 33 (1), 58-63 (2015).
  22. . Ideal Xeno-Free Culture Conditions For Human Fibroblasts That Facilitate Efficient Reprogramming Available from: https://tools.thermofisher.com/content/sfs/posters/xeno-free-culture-conditions-fibroblasts-poster.pdf (2016)
  23. Trokovic, R., Weltner, J., Noisa, P., Raivio, T., Otonkoski, T. Combined negative effect of donor age and time in culture on the reprogramming efficiency into induced pluripotent stem cells. Stem Cell Res. 15 (1), 254-262 (2015).
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Uhlin, E., Marin Navarro, A., Rönnholm, H., Day, K., Kele, M., Falk, A. Integration Free Derivation of Human Induced Pluripotent Stem Cells Using Laminin 521 Matrix. J. Vis. Exp. (125), e56146, doi:10.3791/56146 (2017).

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