Summary

Megakaryocyte Differenzierung und Thrombozyten-Formation von Human Cord Blood abgeleitet CD34 Zellen+

Published: December 27, 2017
doi:

Summary

Eine hochreine Bevölkerung von Megakaryozyten erhalten Sie bei Kabel Blut stammenden CD34+ Zellen. Eine Methode für die CD34+ Isolation und Megakaryocyte Zelldifferenzierung wird hier beschrieben.

Abstract

Thrombozyten-Produktion erfolgt hauptsächlich im Knochenmark in einem Prozeß bekannt als Thrombopoiesis. Während Thrombopoiesis differenzieren hämatopoetischen Vorläuferzellen zu Form Thrombozyten Vorläufern genannt Megakaryozyten, die unheilbar unterscheiden, Thrombozyten aus langen zytoplasmatischen Prozesse bezeichnet Proplatelets freizugeben. Megakaryozyten sind seltene Zellen beschränkt sich auf das Knochenmark und sind daher schwer zu ernten, in ausreichender Zahl für den Laboreinsatz. Effiziente Produktion von menschlichen Megakaryozyten kann erreicht in Vitro durch Kultivierung CD34+ Zellen unter geeigneten Bedingungen. Das Protokoll hier detailliert beschreibt Isolierung von CD34+ Zellen durch magnetische Zellen aus Nabelschnurblut Blutproben sortieren. Die notwendigen Schritte um hochreines, Reifen Megakaryozyten serumfreien Bedingungen zu produzieren sind beschrieben. Details der phänotypische Analyse der Megakaryocyte Differenzierung und Bestimmung der proplatelet Bildung und Thrombozyten sind ebenfalls vorhanden. Effektoren, die Megakaryocyte Differenzierung und/oder proplatelet Bildung, wie z. B. Anti-Thrombozyten-Antikörper oder Thrombopoietin Mimetika beeinflussen können hinzugefügt werden kultivierten Zellen, biologische Funktion zu prüfen.

Introduction

Isolierung von ausreichender Anzahl der primären menschlichen Megakaryozyten (MK) für regelmäßige Laboreinsatz ist nicht möglich aufgrund ihrer niedrigen Frequenz im Knochenmark, wo sie ~0.01% von kernhaltigen Zellen1entfallen. Eine bequeme Alternative ist die ex-Vivo -Erweiterung und Differenzierung von hämatopoetischen Stammzellen und Vorläuferzellen in Anwesenheit von bestimmten Wachstumsfaktoren. Eine Reihe von Zytokinen einschließlich Stammzell-Faktor (SCF; c-Kit-Ligand) und Interleukin (IL)-3 und IL-11 wurden ist in Kultur-Systeme eingesetzt, um MKs Thrombopoietin (TPO) produzieren der effektivste Wachstum und Differenzierung Faktor für Megakaryopoese Kulturen und ist effektiv, allein oder mit anderen Zytokinen, z. B. SCF und IL-3-2. TPO wirken auf Stammzell-Populationen, die Verbreitung und die Reifung der MKs2führen.

MK produzieren Thrombozyten aus zytoplasmatischen Vorsprünge genannt Proplatelets und in-vivo, ca. 1 x 1011 Thrombozyten sind entsteht täglich um Thrombozytenwerte von 150-400 x 109/L. Thrombozyten Produktion in Vitro aufrecht zu erhalten bis zu 1000 -Falten Sie niedriger als die in Vivo 3 schätzt, und dies hat Anlass zu zahlreichen Kulturbedingungen CD34 mit+ hämatopoetischen Vorläuferzellen, MK und Thrombozyten Produktion in Vitrozu verbessern. Die ursprüngliche Quelle der CD34+ für MK Differenzierung verwendete Zellen war menschlichen peripheren Blut4. Andere Zelle Quellen schließen Knochenmark5,6, embryonale Stammzellen/induzierte pluripotente Stammzellen (ESC/iPSC)7und Nabelschnur Blut (UCB)8,9,10 . Menschlichen Knochenmark CD34+ 11 und Maus Linie negative Knochenmark Zellen5 produzieren MK und Blutplättchen in Vitro; Dennoch, die mangelnde Verfügbarkeit von menschlichen Knochenmark schränkt seine Verwendung als eine Quelle von CD34+ Zellen. Im Gegensatz dazu stehen für ESC und iPSC eine unbegrenzte Quelle von Zellen für in-vitro- Thrombozyten-Produktion. Thrombozyten-Produktion aus diesen Zellen erfordert Feeder-Zellen wie murinen OP9 Zellen und längere Kultur. Thrombozyten im Feeder-freien Bedingungen abgeleitet scheinen weniger funktional12sein. iPSC-abgeleitete Plättchen werden voraussichtlich von Einsatz in klinischen Einrichtungen sein, da sie auf einer großen Skala erweitert werden können. Dieser Prozess erfordert Lentivirale vermittelte Transduktion von Transkriptionsfaktoren und langfristige Zelle Kultur13.

UCB ist eine zugängliche Quelle von CD34+ Zellen, die leicht einsetzbare Forschung Einstellungen. TPO allein kann Förderung der Differenzierung der Schnur Blut stammenden CD34+ Zellen, und dies gibt Anlass zu hochreinen, Reife MKs ohne die Notwendigkeit für Serum-Supplementierung oder Kokultur mit Feeder-Zellen. Andere Zytokine wie z. B. SCF Differenzierung von UCB CD34 verringern kann+ Zellen, während Flt-3 Ligand und IL-11 die Produktion von unreifen Megakaryozyten14 fördern. Dieses Protokoll beschreibt die Herstellung von hochreinen MK Kulturen aus Nabelschnurblut CD34+ Zellen in serumfreien Bedingungen.

Protocol

Dieses Protokoll wurde von der South Eastern Sydney menschliche Forschungsethikkommission genehmigt und von der University of New South.Wales menschliche Forschungsethikkommission ratifiziert. Nabelschnurblut aus gesunden Spendern gewonnen wurde durch die Sydney Nabelschnurblutbank (Sydney, New South Wales, Australien) zur Verfügung gestellt. Volumen von ca. 100 mL wurden für dieses Verfahren verwendet. Hinweis: In einer Klasse II Biosicherheit Schrank mit aseptischen Technik arbeiten. Das ?…

Representative Results

Dieses Protokoll ermöglicht die Zubereitung von MK hoch Reinkulturen von Schnur Blut stammenden CD34+ Zellen. Der Anteil der CD34+ Zellen in Schnur Blut ist etwa 1,3 (Abbildung 1A) und die Gesamtzahl der mononukleären Zellen (Schritt 1,8) reicht von 90-300 x 106 Stück UCB. Die Reinheit von CD34 + / CD45 + Zellen nach Isolierung reicht von 90 bis 99 % (Abbildung 1 b)….

Discussion

Das hier beschriebene Protokoll eignet sich für konsequente Produktion von MK und Thrombozyten in Kultur aus Nabelschnurblut. Diese Zellen können verwendet werden, um verschiedene Prozesse wie die Wirkung von Drogen oder biologischen Aktivitäten auf MK-Proliferation, Differenzierung, proplatelet Bildung und Produktion der Thrombozyten zu studieren.

Eine Vielzahl von Kultur, Medien und Zytokin-Kombinationen sind in der Literatur vorgestellt worden. Addition von Zytokinen wie Stammzellen Fakt…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Die Autoren erkennen die Unterstützung des australischen Gesundheits- und Medical Research Council (Projekt Grant 1012409 verbunden mit BHC).

Materials

Cell Culture Reagents
Recombinant Human TPO Miltenyi Biotec 130-094-013
StemSpan SFEM II Stem Cell Technologies 9605 Serum-free media for CD34+ cells
Name Company Catalog Number Comments
CD34 Isolation Reagents
CD34 MicroBead kit ultrapure Miltenyi Biotec 130-100-453 This kit includes the FcR human IgG blocking reagent and CD34 microbeads. These beads contain the anti-CD34 antibody clone QBEND/10. Use a different anti-CD34 clone for purity check (e.g. clone 8G12).
Lymphoprep Alere Technologies 1114545 Lymphocyte separation media (density 1.077 g/mL)
Sterile separation buffer (SB) Miltenyi Biotec 130-091-221 This buffer contains phosphate buffered saline (PBS), pH 7.2 containing 0.5% bovine serum albumin and 2 mM EDTA. It can be prepared using sterile, cell culture grade components. De-gas before use because air bubbles can block the column.
Name Company Catalog Number Comments
Flow Cytometry and Cell Staining Reagents
PE Mouse anti-Human CD34 BD Biosciences 340669 Clone 8G12. This can be used for CD34 purity check. Final antibody concentration 1:10 dilution.
PerCP mouse anti-human CD45 BD Biosciences 347464 1:10 dilution
PerCP isotype control BD Biosciences 349044 1:10 dilution
FITC Mouse anti-Human CD41a BD Biosciences 340929 Final antibody concentration 1:5 dilution.
APC Mouse anti-Human CD42b BD Biosciences 551061 This antibody can also be used to detect mature MK (the percentage of positive cells in usually lower than with anti CD42a). Final antibody concentration 1:10 dilution.
Alexa Fluor 647 Mouse anti-Human CD42a AbD Serotec MCA1227A647T Currently distributed by Bio-Rad. Final antibody concentration 1:10 dilution.
Alexa Fluor 647 Mouse Negative Control AbD Serotec MCA928A647 Currently distributed by Bio-Rad. Isotype control antibody
Anti von Willebrand factor rabbit polyclonal Abcam AB6994 1:200 dilution
V450 mouse anti-humna CD41a BD Biosciences 58425 1: 20 dilution
V450 isotype control BD Biosciences 580373 1:20 dilution
PAC1-FITC antibody BD Biosciences 340507 1:10 dilution
Anti CD62p mouse monoclonal Abcam AB6632 1:200 dilution
Alexa Fluor 488 goat anti rabbit IgG Invitrogen A11008 1:100 dilution
Alexa Fluor 594 goat anti mouse IgG Invitrogen A11020 1:100 dilution
Ig Isotype Control cocktail-C BD Biosciences 558659 Isotype control antibody
Propidium iodide Sigma Aldrich P4864
CountBright Absolute Counting Beads Molecular Probes, Invitrogen C36950 Counting beads
Name Company Catalog Number Comments
Materials
LS columns Miltenyi Biotec 130-042-401 Smaller and larger columns are also commercially available
MidiMACS Separator magnet Miltenyi Biotec 130-042-302
MACS MultiStand Miltenyi Biotec 130-042-303
Falcon 5mL round bottom polypropylene FACS tubes, with Snap Cap, Sterile In Vitro technologies 352063
Glass slides Menzel-Glaser J3800AMNZ
Mounting media with DAPI Vector Laboratories H-1200 Antifade mounting medium with DAPI
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
Inverted microscope Leica DMIRB inverted microscope
Fluorescent microscope Zeiss Vert.A1
Cell analyser BD Biosciences FACS Canto II
Cytospin centrifuge ThermoScientific Cytospin 4
Name Company Catalog Number Comments
Software
Cell analyser software BD Biosciences FACS Diva Software
Single cell analysis software Tree Star FlowJo
Fluorescent microscope software Zeiss Zen 2 blue edition

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Perdomo, J., Yan, F., Leung, H. H., Chong, B. H. Megakaryocyte Differentiation and Platelet Formation from Human Cord Blood-derived CD34+ Cells. J. Vis. Exp. (130), e56420, doi:10.3791/56420 (2017).

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