Summary

Metoder for å studere endringer i iboende Protein samling med alder i Caenorhabditis elegans

Published: November 26, 2017
doi:

Summary

Målet med metoden som presenteres her er å utforske protein aggregering under normal aldring i modellen organismen C. elegans. Protokollen representerer et kraftig verktøy til å studere de svært uløselig store aggregatene som danner med alderen og bestemme hvordan endringer i proteostasis påvirker protein aggregering.

Abstract

I de siste tiårene, har utbredelsen av nevrodegenerative sykdommer, som Alzheimers sykdom (AD) og Parkinsons sykdom (PD), vokst. Disse alder-tilknyttede lidelser er preget av utseendet på protein aggregat med fibrillary strukturen i hjernen til disse pasientene. Nøyaktig hvorfor vanligvis løselige proteiner gjennomgå fortsatt en samling prosessen dårlig forstått. Oppdagelsen at protein samling er ikke begrenset til sykdom prosesser og en del av normal aldringsprosessen kan stedet studere molekylære og cellulære mekanismer som regulerer protein aggregering, uten å bruke ectopically uttrykt menneskelige sykdomsassosierte proteiner. Her beskriver vi metoder for å undersøke iboende protein samling i Caenorhabditis elegans gjennom supplerende tiltak. Først vi undersøker hvordan å vokse stort antall alder-synkroniserte C. elegans hente alderen dyr og presenterer vi de biokjemiske fremgangsmåtene for å isolere svært uløselig-store mengder. I kombinasjon med en målrettet genetisk knockdown, er det mulig å dissekere rollen en genet av interesse i å fremme eller forebygge alder-avhengige proteiner aggregering ved hjelp av enten en omfattende analyse med kvantitative massespektrometri eller kandidat-basert analyse med antistoffer. Disse funnene er deretter bekreftet av i vivo analyse med transgene dyr uttrykke fluorescerende-merket samling utsatt proteiner. Disse metodene bør klargjøre hvorfor visse proteiner er utsatt for samlet med alder og til slutt hvordan beholde disse proteinene funksjonell.

Introduction

Protein misfolding og aggregering gjenkjennes som et kjennetegn på flere nevrodegenerative sykdommer som Annonsen, PD, amyotrofisk lateral sklerose (ALS), frontotemporal-demens (FTD) og mange andre. For eksempel α-synuclein samlinger i amyloid fibrils som akkumuleres som Lewy-legemer i substantia nigra PD pasienter, mens i ALS pasienter TDP-43 eller Fu misfold til skjemaet cytoplasmatiske aggregat i degenereres motor neurons. I hver av disse nevrodegenerative lidelser mislykkes mekanismer opprettholde protein homeostase eller proteostasis å hindre akkumulering av misfolded proteiner, derfor fører til sykdom.

Proteostasis er avgjørende for å sikre cellulære funksjoner under normale forhold disse regulatoriske mekanismene kontroll tett frekvensen av proteinsyntese, bretting og fornedrelse. Flere studier viser at med aldring, evne til mange cellene og organene å bevare protein homeostase settes gradvis og fysiologiske forverring av proteostasis nettverk med alderen er en viktig skjerpende faktor for nevrodegenerative sykdommer (omtalt i referanser1,2,3). Det faktum at protein kvalitetskontroll og cellulær respons på brettet protein stress er utsatt med alderen antyder at protein misfolding og aggregering kan være en generell konsekvens av aldring. Faktisk har vi og andre vist at protein samling er ikke begrenset til sykdom og i stedet en del av proteom blir svært vaskemiddel-uløselig i alderen dyr4,5,6,7 ,8,9,10. Beregningsorientert og i vivo analyse viste at disse fysiologiske aldersrelatert aggregater ligner sykdom mengdefunksjoner i flere aspekter5. Oppdagelsen av endogen, alder avhengig av protein aggregering gir oss muligheten til å analysere molekylære og cellulære mekanismer som regulerer protein aggregering, uten å bruke ectopically uttrykt menneskelige sykdomsassosierte proteiner. I dag finnes begrenset informasjon om regulering av utbredt protein insolubility og effekten av denne feilregulering på helsen til organismen.

Rundormer C. elegans er en av de mest omfattende studerte modell organismene i aldring forskning som disse dyrene har en relativt korte levetid og viser mange karakteristiske aldring funksjoner i høyere organismer. Effektene av aldring på protein insolubility har vært studert i C. elegans av sekvensiell biokjemiske fraksjoneres basert på differensial løselighet, som er mye brukt til å trekke ut sykdom aggregater innen neurodegeneration forskning11 . Ved kvantitative massespektrometri, ble mange hundre proteiner vist å bli aggregering utsatt i C. elegans i fravær av sykdom5. Her beskrive vi i detalj protokollen for å vokse stort antall ormer i flytende kultur og sekvensiell utvinning isolere aggregert proteiner for kvantifisering av massespektrometri og analyse ved Western blot. Fordi misfolded og aggregering utsatt proteiner akkumuleres i alderen C. elegans gonader og masker endringer i andre somatiske vev5,12,13, vi bruker en gonad-mindre mutant fokusere analyse på protein insolubility i ikke-reproduktiv vev. Metoden presentert kan analyse av svært-uløselig, stor Sammendrag som er uløselig i 0,5% SDS og pelleted ved relativt lav sentrifugal hastighet. Alternativt en mindre strenge utvinning protokoll samle også mindre og mer løselig aggregater har vært publisert andre steder,10. I tillegg beskriver vi metoden brukes til å vurdere aggregering i vivo i C. elegans.

Samlet kan disse metodene sammen med RNA-interferens (RNAi) vurdere rollen en genet av interesse modulerende alder-avhengige proteiner aggregering. For dette beskrive vi analyse av ekstrakter fra ung og gammel ormer med og uten knockdown av et bestemt protein rundt ved hjelp av RNAi. Disse metodene bør være et kraftig verktøy for å finne ut hvilke komponenter av proteostasis nettverket regulere protein insolubility. Flere tiltak som redusert insulin/insulin-lignende vekstfaktor (IGF) 1 signalering (IIS) har vist seg å forsinke dramatisk C. elegans aldring14. Levetid veier indusere ofte protein kvalitet kontrollmekanismer og dermed disse veiene kan være aktivt påvirke hastigheten av protein aggregering. Som et eksempel viser vi redusert iboende protein samling i varige dyr på hemming av IIS veien7.

Protocol

Merk: For en bedre forståelse av prosedyren, en skjematisk av arbeidsflyten (figur 1) er festet. 1. vekst av store tall for unge og eldre C. elegans utsatt RNAi mot et genet av interesse Merk: Bruk C. elegans temperatur-indusert sterilt gon-2(q388) mutanter (CF2253) å få alderen-synkroniserte folkerike. I alle trinnene er det viktig å arbeide under semi sterile forhold med åpen flamme og kontroller at det f…

Representative Results

Vi brukte metodene presenteres her for å evaluere hvordan varige dyr med redusert IIS modulerer alder-avhengige proteiner aggregering. Western blot (se trinn 2.2, hastig uløselig protein utvinning for Western blot analyse), vi analysert totalt og uløselig proteininnhold av unge (dag 3 av voksen) og alderen (dag 18 voksen) ormer kontroll RNAi og på RNAi målretting insulin / IGF-1-lignende reseptor daf-2. Vi observerte ingen store endringer i totalt protein nivå med alder ell…

Discussion

Her rapporterer vi en metode for å isolere svært-uløselig protein aggregater fra aldring C. elegans utsatt for RNAi for analyse av massespektrometri og vestlige blotting. Vi viser at forbedre proteostasis ved å redusere IIS sterkt hindrer alder-avhengige proteiner aggregering. Ved å velge bestemte aggregering utsatt proteiner til overexpress i C. elegans, er det mulig å analysere videre mekanismer modulerende iboende protein aggregering.

Iboende alder-avhengige …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av finansiering fra DZNE og Marie Curie International reintegrasjon stipend (322120 til D.C.D.)

Materials

Fernbach culture flask  Corning 4425-2XL Pyrex, Capacity 2,800 ml, with 3 baffle indents
Membrane Screw Cap  Schott 1088655 GL45
Nutating Mixer VWR 444-0148
Separatory funnel Nalgene 4300-1000 Capacity 1,000 ml
1 ml syringe  BD Plastipak 300013
Gray needle, 27 G x ½ ", 0.4 mm x 13 mm BD Microlance 3 300635
Membrane filters 0.025 µM Millipore VSWP04700
pH strip Machery-Nagel 92110 pH-Fix 0-14
Protease Inhibitor Cocktail Roche 4693132001 Complete Mini EDTA-free tablets 
Octoxynol-9  Applichem A1388 Triton X-100
4-Morpholineethanesulfonic acid (MES) Sigma-Aldrich M1317
Nonylphenylpolyethylenglycol Applichem A1694 Nonidet P40 (NP40)
DNaseI Roche 04716728001 recombinant, RNase free
RNaseA Promega A7973 solution
Total protein blot staining Thermofisher S11791 Sypro Ruby protein blot stain
Total protein gel staining Thermofisher S12001 Sypro Ruby protein gel stain
TCEP (tris (2-carboxyethyl) phosphine hydrochloride) Serva 36970
Iodoacetamide Serva 26710
Ammoniumbicarbonate Sigma-Aldrich 09830
Sequencing Grade Modified Trypsin Promega V5111
Isobaric tags for relative and absolute quantitation Sciex 4352135 iTRAQ Reagents Multiplex Kit
Centrifuge Avanti J-26XP Beckmann Coulter 393126
Ultracentrifuge Optima Max-XP Beckmann Coulter 393315
Centrifuge 5424R Eppendorf 5404000413
Centrifuge 5702 Eppendorf 5702000329
Centrifuge Megafuge 40R Thermo Scientific 75004518
Concentrator Plus Eppendorf 5305000304 Centrifugal evaporator
Fluorescent stereo-microscope M165 FC  Leica With Planapo 2.0x objective
Dissection microscope Leica  Leica S6E
High magnification microscope Zeiss Axio Observer Z1 Zeiss With PlanAPOCHROMAT 20x objective and Zeiss Axio Cam MRm
Software
Image analysis software ImageJ
Analysis of mass spectrometry data Protein Prospector http://prospector.ucsf.edu/prospector/mshome.htm
E.coli strain
OP50 CGC
RNAi bacteria
L4440 Julie Ahringer RNAi library
C. elegans mutants
CF2253 CGC, strain name: EJ1158  Genotype: gon-2(q388)
C. elegans transgenics
DCD214 Della David's lab at DZNE Tübingen Genotype: N2; uqIs24[Pmyo-2::tagrfp::pab-1]
DCD215 Della David's lab at DZNE Tübingen Genotype: daf-2(e1370) III; uqIs24[Pmyo-2::tagrfp::pab-1]

References

  1. Balch, W. E., Morimoto, R. I., Dillin, A., Kelly, J. W. Adapting proteostasis for disease intervention. Science. 319, 916-919 (2008).
  2. David, D. C. Aging and the aggregating proteome. Frontiers in genetics. 3, 247 (2012).
  3. Hartl, F. U., Bracher, A., Hayer-Hartl, M. Molecular chaperones in protein folding and proteostasis. Nature. 475, 324-332 (2011).
  4. Ayyadevara, S., et al. Age- and Hypertension-Associated Protein Aggregates in Mouse Heart Have Similar Proteomic Profiles. Hypertension. 67, 1006-1013 (2016).
  5. David, D. C., et al. Widespread protein aggregation as an inherent part of aging in C. elegans. PLoS biology. 8, 1000450 (2010).
  6. Demontis, F., Perrimon, N. FOXO/4E-BP signaling in Drosophila muscles regulates organism-wide proteostasis during aging. Cell. 143, 813-825 (2010).
  7. Lechler, M. C., et al. Reduced Insulin/IGF-1 Signaling Restores the Dynamic Properties of Key Stress Granule Proteins during Aging. Cell reports. 18, 454-467 (2017).
  8. Reis-Rodrigues, P., et al. Proteomic analysis of age-dependent changes in protein solubility identifies genes that modulate lifespan. Aging cell. 11, 120-127 (2012).
  9. Tanase, M., et al. Role of Carbonyl Modifications on Aging-Associated Protein Aggregation. Scientific reports. 6, 19311 (2016).
  10. Walther, D. M., et al. Widespread Proteome Remodeling and Aggregation in Aging C. elegans. Cell. 161, 919-932 (2015).
  11. Lee, V. M., Wang, J., Trojanowski, J. Q. Purification of paired helical filament tau and normal tau from human brain tissue. Methods in enzymology. 309, 81-89 (1999).
  12. Goudeau, J., Aguilaniu, H. Carbonylated proteins are eliminated during reproduction in C. elegans. Aging cell. 9, 991-1003 (2010).
  13. Zimmerman, S. M., Hinkson, I. V., Elias, J. E., Kim, S. K. Reproductive Aging Drives Protein Accumulation in the Uterus and Limits Lifespan in C. elegans. PLoS genetics. 11, 1005725 (2015).
  14. Uno, M., Nishida, E. Lifespan-regulating genes in C. elegans. Npj Aging And Mechanisms Of Disease. 2, 16010 (2016).
  15. Sulston, J. H. . The Nematode Caenorhabditis elegans. , 587-606 (1988).
  16. Maine, E. M. RNAi As a tool for understanding germline development in Caenorhabditis elegans: uses and cautions. Developmental biology. 239, 177-189 (2001).
  17. Rauniyar, N., Yates, J. R. Isobaric labeling-based relative quantification in shotgun proteomics. Journal of proteome research. 13, 5293-5309 (2014).
  18. Brignull, H. R., Morley, J. F., Garcia, S. M., Morimoto, R. I. Modeling polyglutamine pathogenesis in C. elegans. Methods in enzymology. 412, 256-282 (2006).
  19. Fay, D. S. Classical genetic methods. WormBook. , 1-58 (2013).
  20. Brunquell, J., Bowers, P., Westerheide, S. D. Fluorodeoxyuridine enhances the heat shock response and decreases polyglutamine aggregation in an HSF-1-dependent manner in Caenorhabditis elegans. Mech Ageing Dev. 141, 1-4 (2014).
  21. Angeli, S., et al. A DNA synthesis inhibitor is protective against proteotoxic stressors via modulation of fertility pathways in Caenorhabditis elegans. Aging (Albany NY). 5, 759-769 (2013).
  22. Feldman, N., Kosolapov, L., Ben-Zvi, A. Fluorodeoxyuridine improves Caenorhabditis elegans proteostasis independent of reproduction onset. PLoS One. 9, 85964 (2014).
  23. Davies, S. K., Leroi, A. M., Bundy, J. G. Fluorodeoxyuridine affects the identification of metabolic responses to daf-2 status in Caenorhabditis elegans. Mech Ageing Dev. 133, 46-49 (2012).
  24. Luo, S., Kleemann, G. A., Ashraf, J. M., Shaw, W. M., Murphy, C. T. TGF-beta and insulin signaling regulate reproductive aging via oocyte and germline quality maintenance. Cell. 143, 299-312 (2010).
  25. Andux, S., Ellis, R. E. Apoptosis maintains oocyte quality in aging Caenorhabditis elegans females. PLoS genetics. 4, 1000295 (2008).
  26. Vilchez, D., et al. RPN-6 determines C. elegans longevity under proteotoxic stress conditions. Nature. 489, 263-268 (2012).
  27. Ghazi, A., Henis-Korenblit, S., Kenyon, C. A transcription elongation factor that links signals from the reproductive system to lifespan extension in Caenorhabditis elegans. PLoS genetics. 5, 1000639 (2009).
  28. Shemesh, N., Shai, N., Meshnik, L., Katalan, R., Ben-Zvi, A. Uncoupling the Trade-Off between Somatic Proteostasis and Reproduction in Caenorhabditis elegans Models of Polyglutamine Diseases. Front Mol Neurosci. 10, 101 (2017).
  29. Kaletsky, R., et al. The C. elegans adult neuronal IIS/FOXO transcriptome reveals adult phenotype regulators. Nature. 529, 92-96 (2016).
  30. Kawarabayashi, T., et al. Age-dependent changes in brain, CSF, and plasma amyloid (beta) protein in the Tg2576 transgenic mouse model of Alzheimer’s disease. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 21, 372-381 (2001).
  31. Kraemer, B. C., et al. Neurodegeneration and defective neurotransmission in a Caenorhabditis elegans model of tauopathy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100, 9980-9985 (2003).
check_url/56464?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Groh, N., Gallotta, I., Lechler, M. C., Huang, C., Jung, R., David, D. C. Methods to Study Changes in Inherent Protein Aggregation with Age in Caenorhabditis elegans. J. Vis. Exp. (129), e56464, doi:10.3791/56464 (2017).

View Video