Summary

मैक्रोफेज के अंदर Intracellular विकास के ठहराव के डाह के आकलन के लिए एक तेज और विश्वसनीय विधि है Leishmania परजीवी

Published: March 16, 2018
doi:

Summary

सभी रोगजनक Leishmania प्रजातियों में रहते है और उनके हड्डीवाला मेजबान के मैक्रोफेज अंदर दोहराने । यहां, हम Leishmaniaके साथ संस्कृति में murine अस्थि मज्जा-व्युत्पंन मैक्रोफेज को संक्रमित करने के लिए एक प्रोटोकॉल मौजूद, intracellular वृद्धि कैनेटीक्स के सटीक ठहराव द्वारा पीछा किया । यह विधि होस्ट-रोगज़नक़ संपर्क और Leishmania डाह को प्रभावित करने वाले व्यक्तिगत कारकों का अध्ययन करने के लिए उपयोगी है ।

Abstract

Leishmaniaका जीवनचक्र, लीशमनियासिस का प्रेरणा का एजेंट, क्रमशः कीट और हड्डीवाला होस्ट्स के अंदर promastigote और amastigote चरणों के बीच वैकल्पिक । लीशमनियासिस के रोगजनक लक्षण व्यापक रूप से भिन्न हो सकते हैं, सौम्य त्वचा के घावों से अत्यधिक घातक आंत रोग रूपों के लिए संक्रमित प्रजातियों के आधार पर, सभी Leishmania प्रजातियों के हड्डीवाला चरण के दौरान मेजबान मैक्रोफेज अंदर रहते हैं उनका जीवनचक्र । Leishmania infectivity इसलिए सीधे अपने आक्रमण, जीवित और PVs अंदर parasitophorous रिक्तिकाएं (मैक्रोफेज) के भीतर दोहराने की क्षमता से संबंधित है । इस प्रकार, को दोहराने intracellularly है परजीवी की क्षमता का आकलन डाह निर्धारित करने के लिए एक भरोसेमंद विधि के रूप में कार्य करता है । पशु मॉडलों का उपयोग कर लीशमनियासिस विकास का अध्ययन समय लेने वाली है, थकाऊ और अक्सर मुश्किल है, विशेष रूप से pathogenically महत्वपूर्ण आंत रूपों के साथ. हम यहां एक पद्धति का वर्णन करने के लिए अस्थि मज्जा-व्युत्पंन मैक्रोफेज (BMMs) में Leishmania के intracellular विकास का पालन करें । Intracellular परजीवी संख्या 72 के लिए 24 एच अंतराल पर निर्धारित कर रहे है-96 एच निंनलिखित संक्रमण । इस विधि में Leishmania डाह पर विभिंन आनुवंशिक कारकों के प्रभाव का एक विश्वसनीय दृढ़ संकल्प के लिए अनुमति देता है । एक उदाहरण के रूप में, हम बताते है कि कैसे Leishmania Mitochondrial आयरन ट्रांसपोर्टर जीन (LMIT1) के एक एकल एलील विलोपन Leishmania amazonensis उत्परिवर्ती तनाव LMIT1/ΔLmit1 की क्षमता बिगड़ती BMMs अंदर बढ़ने के लिए, जंगली प्रकार की तुलना में डाह में भारी कमी को दर्शाती है । यह परख भी प्रयोगात्मक शर्तों के सटीक नियंत्रण की अनुमति देता है, जो व्यक्तिगत रूप से विभिंन कारकों के प्रभाव का विश्लेषण करने के लिए हेरफेर किया जा सकता है (पोषक तत्वों, प्रतिक्रियाशील ऑक्सीजन प्रजातियों, आदि) मेजबान रोगज़नक़ बातचीत पर । इसलिए, उचित निष्पादन और ठहराव बीएमएम संक्रमण के अध्ययन के एक गैर इनवेसिव, तेजी से, किफायती, सुरक्षित और विश्वसनीय पारंपरिक पशु मॉडल अध्ययन के लिए विकल्प प्रदान करते हैं ।

Introduction

लीशमनियासिस जीनस Leishmaniaके प्रोटोजोआ परजीवी प्रजातियों की वजह से मानव रोगों की एक व्यापक स्पेक्ट्रम को संदर्भित करता है । लगभग १२,०००,००० लोग वर्तमान में दुनिया भर में Leishmania से संक्रमित हैं, और ३५०,०००,००० से अधिक खतरे में हैं । रोग विकृति Leishmania प्रजातियों पर और मेजबान कारकों पर निर्भर करता है, और लक्षण अहानिकर आत्म चिकित्सा त्वचा घावों से घातक visceralizing रूपों के लिए बदलती हैं । अगर अनुपचारित, आंत लीशमनियासिस घातक है, केवल एक प्रोटोजोआ परजीवी के साथ संक्रमण की वजह से घातक मानव रोग के रूप में मलेरिया के बाद रैंकिंग1. रोग विकृति और लक्षणों में व्यापक मतभेद के बावजूद, सभी Leishmania प्रजातियों में एक digenic जीवन चक्र promastigote और amastigote के बीच बारी-साइकिल है कीट और हड्डीवाला मेजबान के अंदर चरणों, क्रमशः । रीढ़ के अंदर, Leishmania लक्ष्य मेजबान मैक्रोफेज आक्रमण के लिए और parasitophorous रिक्तिकाएं (PVs) के गठन के लिए प्रेरित, phagolysosomes के गुणों के साथ अंलीय डिब्बों जहां उच्च विषमय amastigote रूपों दोहराने । Amastigotes पुराने संक्रमण के दौरान मेजबान ऊतकों में जारी रहती है और संक्रमित sandflies को आगे पारित किया जा सकता है, संचरण चक्र को पूरा करने. इसलिए, मानव रोग विकास के संदर्भ में, amastigotes सबसे महत्वपूर्ण Leishmania जीवनचक्र प्रपत्र2हैं । जांच कैसे amastigotes मैक्रोफेज PVs अंदर दोहराने के लिए महत्वपूर्ण है Leishmania डाह समझ3,4,5,6,7 और के लिए उपन्यास प्रभावोत्पादक उपचारों का विकास ।

हम यहां एक नियमित रूप से हमारी प्रयोगशाला द्वारा उपयोग के लिए अस्थि मज्जा में Leishmania संक्रमण और प्रतिकृति अध्ययन-व्युत्पंन मैक्रोफेज (BMMs) है, जो समय के साथ intracellular Leishmania की संख्या का मात्रात्मक आकलन शामिल है एक विधि का वर्णन । प्रक्रिया माउस अस्थि मज्जा और मैक्रोफेज को संस्कृति में भेदभाव से monocytes की कटाई शामिल है, इन विट्रो में संक्रमण के साथ संक्रमित रूपों (metacyclic promastigotes या amastigotes) के Leishmania और ठहराव के 72-96 एच निम्नलिखित संक्रमण की अवधि के लिए हर 24 एच अंतराल पर intracellular परजीवी की संख्या । यह परख हमारी प्रयोगशाला में इस्तेमाल किया गया है कई पर्यावरणीय कारकों और परजीवी जीन के प्रभाव को निर्धारित करने में आयरन की महत्वपूर्ण भूमिका की पहचान सहित एल amazonensis डाह कि आगे footpad द्वारा मांय किया गया था चूहों में घाव विकास अध्ययन6,8,9,10,11,12,13,14,15 . के बाद से सभी रोगजनक Leishmania प्रजातियों मेजबान मैक्रोफेज के अंदर अपने प्रतिकृति आला स्थापित, इस परख सार्वभौमिक सभी Leishmania प्रजातियों में डाह निर्धारण के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है ।

बीएमएम संक्रमण प्रदर्शन एक सेल स्तर पर मेजबान-परजीवी बातचीत के विश्लेषण की अनुमति देता है, और इस प्रकार कैसे Leishmania परजीवी अपने पसंदीदा मेजबान microenvironment, मैक्रोफेज के PVs के साथ बातचीत की एक और अधिक व्यापक समझ । मैक्रोफेज संक्रमण परख सफलतापूर्वक कई समूहों द्वारा इस्तेमाल किया गया है16,17,18,19,20,21,22 का पता लगाने के लिए दोनों मेजबान मैक्रोफेज और Leishmania विशिष्ट जीन के कार्य, और उनके जटिल खेल है कि intracellular संक्रमण की विशेषता में संभावित भागीदारी । बीएमएम संक्रमण intracellular अस्तित्व, microbicidal नाइट्रिक ऑक्साइड उत्पादन, प्रतिक्रियाशील ऑक्सीजन प्रजातियों और अन्य प्रतिकूल परिस्थितियों की पीढ़ी के रूप में प्रभावित है कि मेजबान कारकों के प्रभाव के एक पढ़ें-बाहर के रूप में परजीवी विकास की अनुमति ठहराव lysosome के अंदर पडा-जैसे PVs23। मैक्रोफेज संक्रमण परख भी क्षमता विरोधी leishmanial दवा की पहचान करने के लिए उपयोग किया गया है चिकित्सीय विकास13,24के लिए सुराग ।

बीएमएम संक्रमण के इन विट्रो प्रकृति Leishmania डाह का आकलन करने के लिए अन्य तरीकों पर कई लाभ प्रदान करता है । हालांकि, कई पिछले समय के साथ intracellular परजीवी अस्तित्व के तंत्र की जांच अध्ययन एक दर20,21,24के रूप में संक्रमण नहीं है । इसके अलावा, कई समय के साथ vivo संक्रमण में निंनलिखित पर ध्यान केंद्रित अध्ययन त्वचा के घावों का आकार और अंय शारीरिक लक्षण है कि केवल परोक्ष रूप से परजीवी प्रतिकृति25,26 से संबंधित है मापने के द्वारा किया था , 27. vivo में संक्रमण परजीवी डाह का आकलन करने के लिए एक कड़े दृष्टिकोण है, लेकिन footpad सूजन के आधार पर घाव का आकार माप अक्सर अपर्याप्त हैं, के रूप में वे संक्रमित ऊतकों में भड़काऊ प्रतिक्रिया को प्रतिबिंबित नहीं है और परजीवी की निरपेक्ष संख्या । इस कारण से, footpad घावों के विकास के लिए परख संक्रमित ऊतकों, एक प्रक्रिया है कि लंबे कमजोर पड़ने परख28सीमित की आवश्यकता होती है में परजीवी लोड के ठहराव द्वारा पीछा किया जाना है । इसके अतिरिक्त, vivo में अध्ययन अक्सर विभिंन बिंदुओं पर कई जानवरों का त्याग शामिल करने के लिए ब्याज की ऊतकों को निकालने के लिए समय में6,8,9,10, 11 , 13. इसके विपरीत, BMMs की बड़ी संख्या सिर्फ एक जानवर से प्राप्त की जा सकती है, और इन कोशिकाओं को शर्तों के तहत चढ़ाया जा सकता है जो समय में विभिन्न बिंदुओं पर संक्रमण के आकलन की अनुमति देते हैं । इसके अलावा, vivo अध्ययनों में की तुलना में, इन विट्रो बीएमएम संक्रमण में प्रदर्शन प्रयोगात्मक शर्तों पर अधिक से अधिक नियंत्रण की अनुमति देता है । मैक्रोफेज को बढ़ाता है परजीवी के साथ साथ संक्रमित होने के लिए खुद को संक्रमण की बहुलता (MOI) और संस्कृति की स्थिति का सटीक नियंत्रण की अनुमति देता है । इन कारकों पर ठीक नियंत्रण असतत सेलुलर रास्ते की विशेषताओं की पहचान करने में और संक्रमण के पाठ्यक्रम पर उनके प्रभाव को समझने में महत्वपूर्ण हो सकता है ।

इन फायदों को देखते हुए यह कुछ हद तक आश्चर्य की बात है कि Leishmania डाह का अध्ययन बहुत कुछ समूहों अब तक मैक्रोफेज में intracellular प्रतिकृति के मात्रात्मक मूल्यांकन का पूरा लाभ लिया है । इस अनुच्छेद में, हम आम नुकसान है कि इस परख के अधिक व्यापक उपयोग में बाधा हो सकती है चर्चा, और एक कदम दर कदम प्रोटोकॉल प्रदान करने के लिए इसके समुचित कार्यांवयन की सुविधा । अपनी सटीक और बहुमुखी प्रतिभा को ध्यान में रखते हुए, बीएमएम संक्रमण परख हम यहां का वर्णन केवल मेजबान-रोगज़नक़ Leishmania डाह को प्रभावित करने वाली बातचीत का पता लगाने का उपयोग नहीं किया जा सकता है, लेकिन यह भी अंय सूक्ष्मजीवों कि अंदर दोहराने अध्ययन के लिए मैक्रोफेज29. महत्वपूर्ण बात यह है कि इस परख को एंटी leishmanial ड्रग डेवलपमेंट के लिए तीव्र और किफायती पूर्व नैदानिक जांच पद्धति के रूप में भी विकसित किया जा सकता है ।

Protocol

सभी प्रायोगिक प्रक्रियाओं के अनुसार स्वास्थ्य के राष्ट्रीय संस्थानों द्वारा देखभाल और प्रयोगशाला पशुओं के उपयोग के लिए गाइड में सिफारिशों के साथ आयोजित की गई और मैरीलैंड के IACUC विश्वविद्यालय द्वारा …

Representative Results

Leishmania दो संक्रामक रूपों-metacyclic promastigotes कि संस्कृति के स्थिर चरण में चक्रीय promastigotes से अंतर है, और amastigotes, जो intracellular चरणों (चित्रा 1) हैं । कुछ Leishmania प्रजातियों जैसे एल amazonensisमें, amastigotes भी axenic ?…

Discussion

मात्रात्मक बीएमएम संक्रमण परख द्वारा उत्पादित डेटा ऊपर वर्णित है, जांचकर्ताओं संक्रमण की दर और एक अपेक्षाकृत कम समय अवधि में डाह गुण में परिवर्तन का एक विश्वसनीय दृढ़ संकल्प प्राप्त करने की अनुमति द?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस कार्य को राष्ट्रीय स्वास्थ्य अनुदान संस्थान RO1 AI067979 द्वारा NWA को समर्थन दिया गया.
यूसुफ हावर्ड ह्यूजेस चिकित्सा संस्थान से स्नातक फैलोशिप के प्राप्तकर्ता है/मैरीलैंड कॉलेज पार्क के विश्वविद्यालय ।

Materials

6 well cell culture plate Cellstar 657160
Adenine Acros Organics AC147440250
Aerosol Barrier Pipet Tips (100-1000 μL) Fisherbrand 02-707-404
Aerosol Barrier Pipet Tips (20-200 μL) Fisherbrand 02-707-430
Aerosol Barrier Pipet Tips (2-20 μL) Fisherbrand 02-707-432
Bard-Parker Rib-Back Carbon Steel Surgical Blade #10 Aspen Surgical 371110
BD Luer-Lok Tip 10 mL Syringe Becton Dickinson (BD) 309604
BD Precisionglide Needle, 25G  Becton Dickinson (BD) 305124
Cell Culture Dish 35 mm x 10 mm Cellstar 627 160
Cell Culture Flask Cellstar 660175
Cover Glasses: 12 mm circles Fisherbrand 12-545-80
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dihydrochloride) Invitrogen D1306
D-Biotin J.T. Baker C272-00
EDTA Sigma Aldrich EDS
Ethyl alcohol 200 proof Pharmco-AAPER 111000200
Falcon 100 mm x 15 mm non-TC-treated polystyrene Petri dish Corning 351029
Fetal Bovine Serum Seradigm 1500-500
Ficoll400 Sigma Aldrich F8016
Fluorescence Microscope Nikon E200
Goat anti-mouse IgG Texas red Invitrogen T-862
Goat anti-rabbit IgG AlexaFluor488 Invitrogen A-11034
Hemin Tokyo Chemical Industry Co. LTD H0008
HEPES (1M) Gibco 15630-080
Isoton II Diluent Beckman Coulter 8546719
L-Glutamine Gemini 400-106
Medium 199 (10X) Gibco 11825-015
Na pyruvate (100 mM) Gibco 11360-070
Paraformaldehyde Alfa Aesar 43368
Penicillin/Streptomycin Gemini 400-109
Phosphate Buffered Saline (-/-) ThermoFisher 14200166
Polypropyline conical Centrifuge Tubes 15 mL Cellstar 188 271
Polypropyline conical Centrifuge Tubes 50 mL Cellstar 227 261
ProLong Gold antifade reagent ThermoFisher P36930
Rat anti-mouse Lamp-1 antibody Developmental Studies Hybridoma Bank 1D4B
Recombinant Human M-CSF PeproTech 300-25
Reichert Bright-Line  Hemocytometer  Hausser Scientific 1492
RPMI Medium 1640 (1X) Gibco 11875-093
Triton X-100 Surfactant Millipore Sigma TX1568-1
Trypan Blue Sigma Aldrich T8154
Delicate Scissors, 4 1/2" VWR 82027-582
Dissecting Forceps, Fine Tip VWR 82027-386
Microscope Slides VWR 16004-368
Z1 Coulter Particle Counter, Dual Threshold Beckman Coulter 6605699

Riferimenti

  1. WHO. Control of the leishmaniases. World Health Organ Tech Rep Ser. (949), (2010).
  2. Naderer, T., McConville, M. J. Intracellular growth and pathogenesis of Leishmania parasites. Essays Biochem. 51, 81-95 (2011).
  3. Rosenzweig, D., et al. Retooling Leishmania metabolism: from sand fly gut to human macrophage. FASEB J. 22 (2), 590-602 (2008).
  4. Lahav, T., et al. Multiple levels of gene regulation mediate differentiation of the intracellular pathogen Leishmania. The FASEB Journal. 25 (2), 515-525 (2011).
  5. Saunders, E. C., et al. Induction of a stringent metabolic response in intracellular stages of Leishmania mexicana leads to increased dependence on mitochondrial metabolism. PLoS Pathog. 10 (1), e1003888 (2014).
  6. Mittra, B., et al. Iron uptake controls the generation of Leishmania infective forms through regulation of ROS levels. J Exp Med. 210 (2), 401-416 (2013).
  7. Kloehn, J., et al. Using metabolomics to dissect host-parasite interactions. Curr Opin Microbiol. 32, 59-65 (2016).
  8. Huynh, C., Sacks, D. L., Andrews, N. W. A Leishmania amazonensis ZIP family iron transporter is essential for parasite replication within macrophage phagolysosomes. J Exp Med. 203 (10), 2363-2375 (2006).
  9. Flannery, A. R., Huynh, C., Mittra, B., Mortara, R. A., Andrews, N. W. LFR1 Ferric Iron Reductase of Leishmania amazonensis Is Essential for the Generation of Infective Parasite Forms. J Biol Chem. 286 (26), 23266-23279 (2011).
  10. Miguel, D. C., Flannery, A. R., Mittra, B., Andrews, N. W. Heme uptake mediated by LHR1 is essential for Leishmania amazonensis virulence. Infect Immun. 81 (10), 3620-3626 (2013).
  11. Cortez, M., et al. Leishmania Promotes Its Own Virulence by Inducing Expression of the Host Immune Inhibitory Ligand CD200. Cell Host Microbe. 9 (6), 463-471 (2011).
  12. Mittra, B., Andrews, N. W. IRONy OF FATE: role of iron-mediated ROS in Leishmania differentiation. Trends Parasitol. 29 (10), 489-496 (2013).
  13. Mittra, B., et al. A Trypanosomatid Iron Transporter that Regulates Mitochondrial Function Is Required for Leishmania amazonensis Virulence. PLoS Pathog. 12 (1), e1005340 (2016).
  14. Ben-Othman, R., et al. Leishmania-mediated inhibition of iron export promotes parasite replication in macrophages. PLoS Pathog. 10 (1), e1003901 (2014).
  15. Renberg, R. L., et al. The Heme Transport Capacity of LHR1 Determines the Extent of Virulence in Leishmania amazonensis. PLoS Negl Trop Dis. 9 (5), e0003804 (2015).
  16. McConville, M. J. Metabolic Crosstalk between Leishmania and the Macrophage Host. Trends Parasitol. 32 (9), 666-668 (2016).
  17. Carrera, L., et al. Leishmania promastigotes selectively inhibit interleukin 12 induction in bone marrow-derived macrophages from susceptible and resistant mice. J Exp Med. 183 (2), 515-526 (1996).
  18. Hsiao, C. H., et al. The effects of macrophage source on the mechanism of phagocytosis and intracellular survival of Leishmania. Microbes Infect. 13 (12-13), 1033-1044 (2011).
  19. Murray, A. S., Lynn, M. A., McMaster, W. R. The Leishmania mexicana A600 genes are functionally required for amastigote replication. Mol Biochem Parasitol. 172 (2), 80-89 (2010).
  20. Farias Luz, N., et al. RIPK1 and PGAM5 Control Leishmania Replication through Distinct Mechanisms. J Immunol. 196 (12), 5056-5063 (2016).
  21. Franco, L. H., et al. Autophagy downstream of endosomal Toll-like receptor signaling in macrophages is a key mechanism for resistance to Leishmania major infection. J Biol Chem. 292 (32), 13087-13096 (2017).
  22. da Silva, M. F., Zampieri, R. A., Muxel, S. M., Beverley, S. M., Floeter-Winter, L. M. Leishmania amazonensis arginase compartmentalization in the glycosome is important for parasite infectivity. PLoS One. 7 (3), e34022 (2012).
  23. Carneiro, P. P., et al. The Role of Nitric Oxide and Reactive Oxygen Species in the Killing of Leishmania braziliensis by Monocytes from Patients with Cutaneous Leishmaniasis. PLoS One. 11 (2), e0148084 (2016).
  24. Siqueira-Neto, J. L., et al. An image-based high-content screening assay for compounds targeting intracellular Leishmania donovani amastigotes in human macrophages. PLoS Negl Trop Dis. 6 (6), e1671 (2012).
  25. Pastor, J., et al. Combinations of ascaridole, carvacrol, and caryophyllene oxide against Leishmania. Acta Trop. 145, 31-38 (2015).
  26. Giarola, N. L., et al. Leishmania amazonensis: Increase in ecto-ATPase activity and parasite burden of vinblastine-resistant protozoa. Exp Parasitol. 146, 25-33 (2014).
  27. Sacks, D. L., Melby, P. C. Animal models for the analysis of immune responses to leishmaniasis. Curr Protoc Immunol. , 12 (2001).
  28. Tabbara, K. S., et al. Conditions influencing the efficacy of vaccination with live organisms against Leishmania major infection. Infect Immun. 73 (8), 4714-4722 (2005).
  29. Price, J. V., Vance, R. E. The macrophage paradox. Immunity. 41 (5), 685-693 (2014).
  30. Huynh, C., Andrews, N. W. Iron acquisition within host cells and the pathogenicity of Leishmania. Cell Microbiol. 10 (2), 293-300 (2008).
  31. Blackwell, J. M., et al. SLC11A1 (formerly NRAMP1) and disease resistance. Cell Microbiol. 3 (12), 773-784 (2001).
  32. Pinto-da-Silva, L. H., et al. The 3A1-La monoclonal antibody reveals key features of Leishmania (L) amazonensis metacyclic promastigotes and inhibits procyclics attachment to the sand fly midgut. Int J Parasitol. 35 (7), 757-764 (2005).
  33. Spath, G. F., Beverley, S. M. A lipophosphoglycan-independent method for isolation of infective Leishmania metacyclic promastigotes by density gradient centrifugation. Exp Parasitol. 99 (2), 97-103 (2001).
  34. Zilberstein, D., Shapira, M. The role of pH and temperature in the development of Leishmania parasites. Annu Rev Microbiol. 48, 449-470 (1994).
  35. Bates, P. A. Transmission of Leishmania metacyclic promastigotes by phlebotomine sand flies. Int J Parasitol. 37 (10), 1097-1106 (2007).
  36. Bates, P. A., Robertson, C. D., Tetley, L., Coombs, G. H. Axenic cultivation and characterization of Leishmania mexicana amastigote-like forms. Parasitology. 105 (Pt 2), 193-202 (1992).
  37. Frickmann, H., et al. Rapid identification of Leishmania spp. in formalin-fixed, paraffin-embedded tissue samples by fluorescence in situ hybridization. Trop Med Int Health. 17 (9), 1117-1126 (2012).
  38. Seguin, O., Descoteaux, A. Leishmania, the phagosome, and host responses: The journey of a parasite. Cell Immunol. 309, 1-6 (2016).
  39. Wanderley, J. L., Thorpe, P. E., Barcinski, M. A., Soong, L. Phosphatidylserine exposure on the surface of Leishmania amazonensis amastigotes modulates in vivo infection and dendritic cell function. Parasite Immunol. 35 (3-4), 109-119 (2013).
  40. Crauwels, P., et al. Apoptotic-like Leishmania exploit the host’s autophagy machinery to reduce T-cell-mediated parasite elimination. Autophagy. 11 (2), 285-297 (2015).
  41. Bringmann, G., et al. A novel Leishmania major amastigote assay in 96-well format for rapid drug screening and its use for discovery and evaluation of a new class of leishmanicidal quinolinium salts. Antimicrob Agents Chemother. 57 (7), 3003-3011 (2013).
  42. Sacks, D. L., Brodin, T. N., Turco, S. J. Developmental modification of the lipophosphoglycan from Leishmania major promastigotes during metacyclogenesis. Mol Biochem Parasitol. 42 (2), 225-233 (1990).
  43. Sacks, D. L. Leishmania-sand fly interactions controlling species-specific vector competence. Cell Microbiol. 3 (4), 189-196 (2001).
  44. McConville, M. J., Turco, S. J., Ferguson, M. A., Sacks, D. L. Developmental modification of lipophosphoglycan during the differentiation of Leishmania major promastigotes to an infectious stage. EMBO J. 11 (10), 3593-3600 (1992).
  45. Sacks, D. L., Hieny, S., Sher, A. Identification of cell surface carbohydrate and antigenic changes between noninfective and infective developmental stages of Leishmania major promastigotes. J Immunol. 135 (1), 564-569 (1985).
  46. Yao, C., Chen, Y., Sudan, B., Donelson, J. E., Wilson, M. E. Leishmania chagasi: homogenous metacyclic promastigotes isolated by buoyant density are highly virulent in a mouse model. Exp Parasitol. 118 (1), 129-133 (2008).
  47. Almeida Marques-da-Silva, E., et al. Extracellular nucleotide metabolism in Leishmania: influence of adenosine in the establishment of infection. Microbes Infect. 10 (8), 850-857 (2008).
  48. Moreira, D., et al. Impact of continuous axenic cultivation in Leishmania infantum virulence. PLoS Negl Trop Dis. 6 (1), e1469 (2012).
  49. Svensjo, E., et al. Interplay between parasite cysteine proteases and the host kinin system modulates microvascular leakage and macrophage infection by promastigotes of the Leishmania donovani complex. Microbes Infect. 8 (1), 206-220 (2006).
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Citazione di questo articolo
Sarkar, A., Khan, Y. A., Laranjeira-Silva, M. F., Andrews, N. W., Mittra, B. Quantification of Intracellular Growth Inside Macrophages is a Fast and Reliable Method for Assessing the Virulence of Leishmania Parasites. J. Vis. Exp. (133), e57486, doi:10.3791/57486 (2018).

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