Summary

En Ecdysone Receptor-baserade Singular gen omkopplare för avsiktlig uttryck för transgenens med robusthet, reversibilitet och försumbar Leakiness

Published: May 07, 2018
doi:

Summary

Här presenterar vi ett protokoll för moduleringen av transgenens uttryck pEUI(+) singular gen växeln av tebufenozide behandling.

Abstract

Exakt kontroll av transgenens uttryck är önskvärt i biologiska och kliniska studier. Eftersom funktionen binära av för närvarande anställd gen växlar kräver överföring av två terapeutiska uttryck enheter samtidigt till en enda cell, begränsas emellertid den praktiska tillämpningen av systemet för genterapi. För att förenkla systemet transgenens uttryck, genererade vi en gen switch betecknas som pEUI(+) omfattar en komplett uppsättning av transgenens uttryck moduler i en enda vektor. Bestående av GAL4 DNA-bindande domänen och modifierade REG (GvEcR), en minimal VP16 aktiveringen domän smält med en GAL4 DNA-bindande domän, samt en modifierad Drosophila ecdysone receptor (EcR), växeln nyutvecklade singular genen är mycket lyhörd för administrationen av en kemisk inducerare på ett sätt som tid – och dos-beroende. PEUI(+) vektorn är ett potentiellt kraftfulla verktyg för att förbättra kontrollen av transgenens uttryck i både biologisk forskning och kliniska studier. Här presenterar vi ett detaljerat protokoll för modulering av ett övergående och stabil transgenens uttryck med pEUI(+) vector genom behandling av tebufenozide (Teb). Dessutom delar vi viktiga riktlinjer för användningen av Teb som en kemisk inducerare.

Introduction

Flera olika gen växlar har undersökts för sin förmåga att just reglera transgenens uttryck i cellkultur och djurmodeller, med varierande framgång1,2,3. Potentiella gen switch system bör uppfylla flera stränga kriterier, inklusive: exakt riktad uttryck av transgenens, dos – och tidsberoende lyhördhet för inducerare, försumbar leakiness av arrangören, reversibilitet av transgen aktivering genom inducerare borttagning, och inducerare toxicitet nivåer tolerabla cellinjer och laboratorium djur1,2,3. Flera små molekyler inducerare har utnyttjats, inklusive tetracyklin4,5, rapamycin6,7,8, mifepriston9,10, och ecdysone11,12,13,14. I allmänhet dessa system kräver minst två plasmider som innehåller två eller tre enheter som diskret uttryck, en eller två som komponera ett föreskrivande element (inducerare plasmid) som binder en liten molekyl inducerare att få transkriptionell aktivitet; och en annan plasmid (effektor plasmid) som innehåller transgenens under kontroll av en regulatoriska DNA-region som tillåter åtkomst av elementet inducerare-bunden tillsyn. Den största nackdelen med det binära systemet är att det kräver samtidig införandet av två vektorer (inducerare och effektor) i målcellen. I övergående transgenens uttryck experiment producerar den samtidiga transfection av två plasmider oundvikligen en population av celler som ensamma transfekterade med antingen induceraren eller effektor eller samtidig transfekterade ojämnt. Det binära systemet kräver dessutom minst två rundor av antibiotika urval att upprätta stabila cellinjer, vilket är tidskrävande och mödosam. Alltså att kombinera alla komponenter krävs för transgenens uttryck och förordning i en enda vektor skulle vara perfekt att garantera samtidig uttryck för alla element som krävs i en enda cell och möjliggöra reglering av transgenens uttryck genom behandling med liten molekyl inducerare.

För att övervinna bristerna i binärt gen växlar, utvecklade vi nyligen en singular gen switch, med en Drosophila melanogaster REG-baserade gen inducerbara system15. Ecdysone förmedlar genuttryck när det binder till den REG/ultraspiracle (USP) heterodimer, som i sin tur inducerar bindande REG till DNA reglerande element3,11. Ryggradsdjur retinoid X receptorn (RXR), en ortholog av insekt USP, rekryterar REG för att bilda en aktiv transkriptionell aktivator16. Således av riktade uttryck för en transgen i ryggradsdjur celler eller vävnad, REG och RXR skall vara co uttryckt samtidigt innan stimuleras av ecdysone eller dess agonister. Eftersom funktionen heterodimeriskt av växeln REG-baserade genen kan påverkas av den endogena RXR nivå, Padidam et al. ersatte de REG DNA-bindning och aktivering domänerna med heterologt GAL4 DNA-bindande, herpes simplex virus protein vmw65 (VP16) aktiveringen domäner smält till REG ligand-bindande domänen, som sedan blev okänslig för endogena RXR och bildade en homodimer att få transkriptionell aktivitet17. Växeln REG-baserade gen förbättrades ytterligare genom att konstruera en chimär protein består av minimal VP16 aktiveringen domän kombinerat med GvEcR, som bildade en homodimer och lokaliserade i cytosolen i avsaknad av den ecdysone agonist, Teb16, 18. Genom bindning till Teb, GvEcR ändrade dess subcellulär lokalisering från cytosolen till kärnan att känna igen en hybrid promotor består av zebrafisk E1b minimal arrangören kombinerat med en tio tandem upprepade uppströms aktiveringen sekvenser (högskolor) att inleda det transkription av genen mål16.

För att förenkla den tidigare rapporterade REG-baserade genen växlar16,18, vi kombinerat binära funktioner i systemet i en enda vektor utrustad med alla element som krävs för stimulerande transgenens uttryck, och sedan designerat den nyligen genererade vektorn, pEUI(+) (GenBank anslutningen nummer: KP123436, figur 1A)15. De effektor som svarar på den GvEcR drivrutinen (nedan) består av tio tandem UAS upprepar bredvid en E1b minimal arrangören följt av en flera kloning site (MCS) med mina, PmlI, NheI, BmtI, AfeI och AflII erkännande sekvenser (figur 1B). Dessutom att underlätta urvalet av transfekterade celler, en SV40 arrangören-driven puromycin N-acetyl-transferas (PAC) genen placerades mellan regionerna driver och effektor att upprätthålla stabil cellinjer (figur 1).

Vi beskriver ett detaljerat protokoll för övergående och stabil moduleringen av transgenens uttryck med pEUI(+). Dessutom, tillhandahåller vi detaljerade instruktioner för en framgångsrik användning av Teb som ecdysone agonist.

Protocol

1. transgenens subkloning Välj en lämplig restriktionsenzym erkännande webbplats (eller webbplatser) i MCS av pEUI(+) och subclone genen sevärdheter i önskad riktning (figur 1).Obs: Den andra eller flagga epitop-taggade ankyrin upprepa domän 13A (ANKRD13A) transgenens var subcloned i mina webbplats pEUI(+) vektorns med T4 DNA polymeras i en sekvens – och ligation-oberoende kloning metod19. Linjär pEUI(+) med mina för 1…

Representative Results

GvEcR-baserade singular gen växeln avbildas i figur 1A. PEUI(+) vector var optimerad för reglerade transgenens uttryck genom behandling med Teb. Effector regionen av pEUI(+) består av en 10xUAS och en E1b minimal arrangören följt av en MCS-server som innehåller mina, PmlI, NheI, BmtI, AfeI och AflII restriktionsenzym erkännande platser. En SV40 poly(A) signal lades bakom MCS (figur 1B). En PAC -gen sattes in mella…

Discussion

Den största nackdelen med binära gen uttryck växel är behovet att samtidigt leverera två separata plasmider (föraren och effektor) i målcellen. Detta kan leda till en ojämlik fördelning av plasmider och leda till en inkonsekvent svar av växeln till inducerare1,2,3. En annan brist i två-vector-systemet är att minst två rundor av antibiotika urval krävs att identifiera lovande cellinjer. En gen-inducerbara kassett so…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka S-Y Choi (Chonnam National University) för värdefulla kommentarer och grundlig läsning av våra manuskript. Detta arbete stöds av en forskningsfond för 남도 National University.

Materials

pEUI(+) TransLab The patent license was transferred to TransLab Inc. 
Gene-Fect Transfection Reagent TransLab TLC-001
HEK293 ATCC CRL-1573
Tebufenozide Fluka 31652
Cloning cylinder Sigma CLS31668
Puromycin Corning 58-58-2
Antibiotics Gibco 15240-062
Trypsin-EDTA Welgene LS015-01
DMEM Welgene LM001-05
Fetal Bovine Serum Welgene S001-01
Cell culture dish SPL life science 11090
mouse FLAG M2 Sigma F3165
anti-alpha tubulin antibody Calbiochem CP06
Cloning cylinder Sigma CLS31668
NucleoBond Xtra Midi Macherey-Nagel 740410.1
M-PER Mammalian Protein
Extraction Reagent
Thermo Fisher 78505
100X Protease inhibitor Cock. III T&I BPI-9200

Riferimenti

  1. Rossi, F. M., Blau, H. M. Recent advances in inducible gene expression systems. Curr. Opin. Biotechnol. 9 (5), 451-456 (1998).
  2. Clackson, T. Regulated gene expression systems. Gene Ther. 7 (2), 120-125 (2000).
  3. Suzuki, Y., Suzuki, Y., Xu, K. Gene regulatable lentiviral system. Viral Gene Therapy. , 285-309 (2011).
  4. Gossen, M., Bujard, H. Tight control of gene expression in mammalian cells by tetracycline-responsive promoters. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 89 (12), 5547-5551 (1992).
  5. Baron, U., Bujard, H. Tet repressor-based system for regulated gene expression in eukaryotic cells: principles and advances. Methods Enzymol. 327, 401-421 (2000).
  6. Hentges, K. E., et al. FRAP/mTOR is required for proliferation and patterning during embryonic development in the mouse. Proc Natl Acad Sci U S A. 98 (24), 13796-13801 (2001).
  7. Banaszynski, L. A., Liu, C. W., Wandless, T. J. Characterization of the FKBP.rapamycin.FRB ternary complex. J Am Chem Soc. 127 (13), 4715-4721 (2005).
  8. Seto, B. Rapamycin and mTOR: a serendipitous discovery and implications for breast cancer. Clin Transl Med. 1 (1), 29 (2012).
  9. Ulmann, A., Peyron, R., Silvestre, L. Clinical uses of mifepristone (MFP). Ann N Y Acad Sci. 761, 248-260 (1995).
  10. Sitruk-Ware, R., Spitz, I. M. Pharmacological properties of mifepristone: toxicology and safety in animal and human studies. Contraception. 68 (6), 409-420 (2003).
  11. Yao, T. P., et al. Functional ecdysone receptor is the product of EcR and ultraspiracle genes. Nature. 366 (6454), 476-479 (1993).
  12. Riddiford, L. M., Cherbas, P., Truman, J. W. Ecdysone receptors and their biological actions. Vitam Horm. 60 (2000), 1-73 (2000).
  13. Saez, E., Nelson, M. C., Eshelman, B., Banayo, E., Koder, A., Cho, G. J. Identification of ligands and coligands for the ecdysone-regulated gene switch. Proc Natl Acad Sci USA. 97 (26), 14512-14517 (2000).
  14. Karzenowski, D., Potter, D. W., Padidam, M. Inducible control of transgene expression with ecdysone receptor: gene switches with high sensitivity robust expression, and reduced size. Biotechniques. 39 (2), 191-200 (2005).
  15. Lee, S., et al. Ecdysone receptor-based singular gene switches for regulated transgene expression in cells and adult rodent tissues. Mol. Ther. Nucleic Acids. 5 (9), e367 (2016).
  16. Esengil, H., Chang, V., Mich, J. K., Chen, J. K. Small-molecule regulation of zebrafish gene expression. Nat Chem Biol. 3 (3), 154-155 (2007).
  17. Padidam, M., Gore, M., Lu, D. L., Smirnova, O. Chemical-inducible, ecdysone receptor-based gene expression system for plants. Transgenic Res. 12 (1), 101-109 (2003).
  18. Knopf, F., Schnabel, K., Haase, C., Pfeifer, K., Anastassiadis, K., Weidinger, G. Dually inducible TetOn systems for tissue-specific conditional gene expression in zebrafish. Proc Natl Acad Sci USA. 107 (46), 19933-19938 (2010).
  19. Jeong, J. Y., et al. One-step sequence- and ligation-independent cloning as a rapid and versatile cloning method for functional genomics studies. Appl Environ Microbiol. 78 (15), 5440-5443 (2012).
  20. Zhu, B., Cai, G., Hall, E. O., Freeman, G. J. In-fusion assembly: seamless engineering of multidomain fusion proteins, modular vectors, and mutations. Biotechniques. 43 (3), 354-359 (2007).
  21. No, D., Yao, T. P., Evans, R. M. Ecdysone-inducible gene expression in mammalian cells and transgenic mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 93 (8), 3346-3351 (1996).
  22. Sawada, Y., et al. Synthesis and insecticidal activity of benzoheterocyclic analogues of N’-benzoyl-N-(tert-butyl)benzohydrazide: Part 1. Design of benzoheterocyclic analogues. Pest Manag Sci. 59 (1), 25-35 (2003).
  23. Lafont, R., Girault, J. P., Kerb, U. Excretion and metabolism of injected ecdysone in the white mouse. Biochem Pharmacol. 37 (6), 1174-1177 (1988).
  24. Carlson, G. R., et al. The chemical and biological properties of methoxyfenozide, a new insecticidal ecdysteroid agonist. Pest Manag Sci. 57 (2), 115-119 (2001).
  25. McConnell, M. J., Imperiale, M. J. Biology of adenovirus and its use as a vector for gene therapy. Hum Gene Ther. 15 (11), 1022-1033 (2004).
  26. Gorell, E., Nguyen, N., Lane, A., Siprashvili, Z. Gene therapy for skin diseases. Cold Spring Harb Perspect Med. 4 (4), a015149 (2014).
  27. Kotterman, M. A., Chalberg, T. W., Schaffer, D. V. Viral Vectors for Gene Therapy: Translational and Clinical Outlook. Annu Rev Biomed Eng. 17, 63-89 (2015).
  28. Matsumoto, T., Yamaguchi, M., Kuzume, M., Matsumiya, A., Kumada, K. Insulin gene transfer with adenovirus vector via the spleen safely and effectively improves posthepatectomized conditions in diabetic rats. J Surg Res. 110 (1), 228-234 (2003).
  29. Han, J., McLane, B., Kim, E. H., Yoon, J. W., Jun, H. S. Remission of diabetes by insulin gene therapy using a hepatocyte-specific and glucose-responsive synthetic promoter. Mol Ther. 19 (3), 470-478 (2011).
check_url/it/57494?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Lee, S., Won, M., Hwang, R. H., Hur, G. M., Ro, H. An Ecdysone Receptor-based Singular Gene Switch for Deliberate Expression of Transgene with Robustness, Reversibility, and Negligible Leakiness. J. Vis. Exp. (135), e57494, doi:10.3791/57494 (2018).

View Video