Summary

Homochronic trasplante de precursores de interneurona en cerebros de ratón Postnatal temprana

Published: June 08, 2018
doi:

Summary

Desafiando las neuronas jóvenes en nuevas regiones del cerebro puede revelar penetraciones importantes en cómo el entorno esculpe maduración y destino neuronal. Este protocolo describe un procedimiento para cosechar precursores interneurona de regiones específicas del cerebro y transplantarlas o homotopically o heterotopically en el cerebro de crías de postnatales.

Abstract

Maduración y la determinación de destino neuronal requiere una interacción intrincada entre señales ambientales y programas genéticos. Sin embargo, desenmarañar los papeles de intrínseca vs extrínsecos mecanismos que regulan este proceso de diferenciación es un enigma para los neurobiólogos del desarrollo. Este problema se magnifica por interneuronas GABAérgicas, una población celular muy heterogénea que nace de las estructuras embrionarias transitorias y se someten a una prolongada fase migratoria para dispersar en el telencéfalo. Para explorar cómo diferentes cerebro entornos afectan interneurona suerte y maduración, desarrollamos un protocolo para recolección de precursores de fluorescencia etiquetada interneurona inmaduros de regiones específicas del cerebro de ratones recién nacidos (P0-P2). A esta edad, la migración de interneurona es casi completa y estas células residen en sus entornos descanso finales con relativamente poca integración sináptica. Siguiendo la colección de unicelular mediante citometría de flujo, estos precursores de la interneurona se trasplantan en P0 P2 cachorros postnatales de tipo salvaje. Realizando ambos homotópicas (por ejemplo, corteza a corteza) o heterotópico (por ejemplo, corteza a hipocampo) trasplantes, uno puede evaluación cómo desafiante interneuronas inmaduros en los nuevos entornos del cerebro afecta a su destino, la maduración y la integración del circuito. Cerebro puede ser cosechado en ratones adultos y ensayaron con una amplia variedad de análisis posthoc de las células injertadas, incluyendo inmunohistoquímica, electrofisiológicos y transcripcional de perfiles. Este planteamiento general proporciona a los investigadores con una estrategia de análisis cómo distintos ambientes de cerebro pueden influir en numerosos aspectos del desarrollo de la neurona e identificar si características neuronales específicas son conducidas principalmente por programas genéticos de cableado o señales ambientales.

Introduction

Función cortical adecuada requiere un equilibrio entre las neuronas excitatory de la proyección e inhibitorios interneurons de GABAérgico, una población muy heterogénea con morfologías distintas, propiedades electrofisiológicas, conectividad y neuroquímicos marcadores. Función de interneuronas (y subgrupos específicos interneurona) y desarrollo anormal se ha relacionado con la Patobiología de trastornos psiquiátricos como la esquizofrenia, autismo y epilepsia1,2,3. Además, muchos genes implicados en estos trastornos cerebrales se enriquecen fuertemente en interneuronas joven4. Por lo tanto, una mayor comprensión de los mecanismos que regulan la maduración y la determinación del destino de interneurona es necesario para comprender el desarrollo normal y las posibles etiologías de numerosas enfermedades del cerebro.

Interneuronas de forebrain nacen principalmente de dos estructuras embrionarias transitorias, las eminencias ganglionares mediales y caudales (MGE y CGE, respectivamente). Estas células postmitotic (precursores de la interneurona) luego pasar por una fase prolongada migración tangencial para dispersar en el telencéfalo donde se integran en una gran variedad de circuitos. Interneurons MGE derivados consisten en tres subgrupos en gran parte no superpuestos, neuroquímicamente definidos: fast spiking interneurons parvalbúmina (PV+), no-fast spiking interneuronas de la somatostatina (SST+) y tarde clavando neuronal nítrico interneuronas de sintasa (nNOS+) de óxido que constituyen las células hippocampal de neurogliaform y hiedra. Numerosos laboratorios han identificado varios mecanismos dentro de la MGE que regulan las decisiones de destino inicial en PV+ o SST + interneurons, incluyendo gradientes espaciales de morfógenos, fecha de nacimiento de los precursores de la interneurona y el modo de división neurogénica 5 , 6 , 7 , 8 , 9 , 10. se ha propuesto que interneuronas distinguen inicialmente en ‘cardenal clases’ y luego progresivamente maduran hasta convertirse en ‘clases definitivas’ al interactuar con su medio ambiente11. La evidencia reciente indica que algunos subtipos de interneurona maduro pueden ser genéticamente cableado como estas células se convierten en postmitotic en las eminencias ganglionares, indicando que programas genéticos intrínsecos definidos principios pueden desempeñar un papel más grande que antes apreciada12,13. Sin embargo, la cuestión clave de cómo los programas genéticos intrínsecos interactúan con señales ambientales a la diferenciación de la unidad en subtipos distintos interneurona sigue siendo en gran parte inexplorada.

Numerosos estudios han trasplantado células embrionarias MGE directamente en una variedad de regiones del cerebro, con los resultados del consenso que injertaron células maduras y liberan GABA para inhibir generalmente los circuitos endógeno local14,15, 16,17,18,19. Estos prometedores observaciones han generado un interés significativo en el uso de células pluripotentes inducidas humanas (hIPSC)-derivado de interneuronas para tratar una variedad de enfermedades del cerebro. Sin embargo, muy pocos de estos estudios determinar si estas células injertadas maduran en los tipos esperados de interneuronas maduras, un componente esencial cuando uno piensa en enfoques traslacionales.

Para abordar cómo el entorno influye interneurona diferenciación y maduración, una estrategia fue ideada para trasplante precursores inmaduros interneurona en nuevos entornos de cerebro para examinar si interneuronas injertados adoptan características del anfitrión medio ambiente o conservar características de las donantes medio ambiente20. MGE trasplantes no son adecuados para abordar esta cuestión porque el MGE contiene una población mixta de células de proyección de GABAérgico que dispersan a lo largo de numerosas regiones de cerebro21e interneurona. Sin saber donde estas células MGE habría emigrado, uno puede no evaluar completamente cómo estos trasplantes son afectadas por el entorno del cerebro. Por cosecha de precursores del mesencéfalo en los puntos de tiempo postnatales tempranos, este problema es burlado por la obtención de células inmaduras que han completado su migración y alcanzaron su objetivo región del cerebro pero tienen mínima interacción con el medio ambiente. Al centrarse en las características específicas de interneuronas que se expresan diferencialmente entre regiones distintas del cerebro, entonces uno puede determinar cómo el entorno de host cambia propiedades interneurona. El enfoque general que se describe en este Protocolo debería ser aplicable a cualquier investigador que quiere examinar las neuronas jóvenes cómo comportarse cuando desafió en un nuevo entorno.

Protocol

Todos los procedimientos experimentales se llevaron a cabo con arreglo a las pautas de los institutos nacionales de salud y fueron aprobados por el NICHD Animal Care y el Comité uso (ACUC). El protocolo descrito a continuación utiliza Nkx2.1 CreC / +; Ai9+- cachorros para cosechar precursores derivados de MGE interneurona, pero puede realizarse en cualquier línea de ratón reportero fluorescente deseada. Machos y hembras ratones postnatales tempranos (P0-P2) fueron utilizados indiscrimi…

Representative Results

Este protocolo muestra cómo cosechar las regiones específicas del cerebro de cerebro postnatal temprano (figura 1-2), recoger dissociations unicelular de los precursores de la interneurona y transplante de estas células en varias regiones del cerebro en ingenuo WT cachorros postnatales (figura 3). Para el análisis posthoc, cerebros que recibieron injertos de interneurona precursor fueron cosechados entre P30-…

Discussion

Un aspecto fundamental de este protocolo es maximizar la supervivencia de las células. Asegurar que el tejido y las células siempre están en sACSF de carboxygenated de hielo frío es necesario para promover la supervivencia celular. Esto requiere una disección eficiente y una estrategia de disociación para reducir al mínimo la longitud de tiempo que pasan de las células en solución diferentes y fuera del entorno del cerebro. Dependiendo del número de regiones del cerebro disecado y trasplantados, puede ser benef…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Esta investigación fue apoyada por los institutos nacionales de salud (K99MH104595) y el programa de investigación intramuros del NICHD para T.J.P. Agradecemos a ERGE Fishell, en cuyo laboratorio fue establecido originalmente este enfoque.

Materials

Sodium chloride Sigma S7653
Sodium bicarbonate Sigma S6297
Potassium chloride Sigma P9541
Sodium phosphate monobasic Sigma S0751
Calcium chloride Sigma C5080
Magnesium chloride Sigma M2670
Glucose Sigma G7528
Sucrose Sigma S7903
Brain Matrices Roboz SA-2165 Only needed if harvesting striatum
Fine point Dumont Forceps Roboz RS-4978
Microdissecting scissors Roboz RS-5940
Razor blades ThermoFisher 12-640
Pasteur pipettes ThermoFisher 1367820C
Nanoject III Drummond 3-000-207
Manual Manipulator w/ stand World Precision Instruments  M3301R/M10
5 ml round bottom plastic tubes ThermoFisher 149591A
60 mm Petri dishes ThermoFisher 12556001
100 mm Petri dishes ThermoFisher 12565100
Pronase Sigma 10165921001
Fetal Bovine Serum (FBS) ThermoFisher 16140063
DNase I Sigma 4716728001
Celltrics 50um filters Sysmex 04-0042327
Trypan blue ThermoFisher 15-250-061
Hemocytometer ThermoFisher 02-671-6

Riferimenti

  1. Bozzi, Y., Casarosa, S., Caleo, M. Epilepsy as a neurodevelopmental disorder. Front Psychiatry. 3 (19), (2012).
  2. Takano, T. Interneuron Dysfunction in Syndromic Autism: Recent Advances. Dev Neurosci. , (2015).
  3. Inan, M., Petros, T. J., Anderson, S. A. Losing your inhibition: linking cortical GABAergic interneurons to schizophrenia. Neurobiol Dis. 53, 36-48 (2013).
  4. Batista-Brito, R., Machold, R., Klein, C., Fishell, G. Gene expression in cortical interneuron precursors is prescient of their mature function. Cereb Cortex. 18 (10), 2306-2317 (2008).
  5. Flames, N., et al. Delineation of multiple subpallial progenitor domains by the combinatorial expression of transcriptional codes. J Neurosci. 27 (36), 9682-9695 (2007).
  6. Wonders, C. P., et al. A spatial bias for the origins of interneuron subgroups within the medial ganglionic eminence. Dev Biol. 314 (1), 127-136 (2008).
  7. Inan, M., Welagen, J., Anderson, S. A. Spatial and temporal bias in the mitotic origins of somatostatin- and parvalbumin-expressing interneuron subgroups and the chandelier subtype in the medial ganglionic eminence. Cereb Cortex. 22 (4), 820-827 (2012).
  8. Petros, T. J., Bultje, R. S., Ross, M. E., Fishell, G., Anderson, S. A. Apical versus Basal Neurogenesis Directs Cortical Interneuron Subclass Fate. Cell Rep. 13 (6), 1090-1095 (2015).
  9. Taniguchi, H., Lu, J., Huang, Z. J. The spatial and temporal origin of chandelier cells in mouse neocortex. Science. 339 (6115), 70-74 (2013).
  10. Bandler, R. C., Mayer, C., Fishell, G. Cortical interneuron specification: the juncture of genes, time and geometry. Curr Opin Neurobiol. 42, 17-24 (2017).
  11. Kepecs, A., Fishell, G. Interneuron cell types are fit to function. Nature. 505 (7483), 318-326 (2014).
  12. Mayer, C., et al. Developmental diversification of cortical inhibitory interneurons. Nature. 555 (7697), 457-462 (2018).
  13. Mi, D., et al. Early emergence of cortical interneuron diversity in the mouse embryo. Science. 360 (6384), 81-85 (2018).
  14. Alvarez-Dolado, M., et al. Cortical inhibition modified by embryonic neural precursors grafted into the postnatal brain. J Neurosci. 26 (28), 7380-7389 (2006).
  15. Baraban, S. C., et al. Reduction of seizures by transplantation of cortical GABAergic interneuron precursors into Kv1.1 mutant mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (36), 15472-15477 (2009).
  16. De la Cruz, E., et al. Interneuron progenitors attenuate the power of acute focal ictal discharges. Neurotherapeutics. 8 (4), 763-773 (2011).
  17. Gilani, A. I., et al. Interneuron precursor transplants in adult hippocampus reverse psychosis-relevant features in a mouse model of hippocampal disinhibition. Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (20), 7450-7455 (2014).
  18. Larimer, P., et al. Caudal Ganglionic Eminence Precursor Transplants Disperse and Integrate as Lineage-Specific Interneurons but Do Not Induce Cortical Plasticity. Cell Rep. 16 (5), 1391-1404 (2016).
  19. Martinez-Cerdeno, V., et al. Embryonic MGE precursor cells grafted into adult rat striatum integrate and ameliorate motor symptoms in 6-OHDA-lesioned rats. Cell Stem Cell. 6 (3), 238-250 (2010).
  20. Quattrocolo, G., Fishell, G., Petros, T. J. Heterotopic Transplantations Reveal Environmental Influences on Interneuron Diversity and Maturation. Cell Rep. 21 (3), 721-731 (2017).
  21. Xu, Q., Tam, M., Anderson, S. A. Fate mapping Nkx2.1-lineage cells in the mouse telencephalon. J Comp Neurol. 506 (1), 16-29 (2008).
  22. Thompson, L., Bjorklund, A. Survival, differentiation, and connectivity of ventral mesencephalic dopamine neurons following transplantation. Prog Brain Res. 200, 61-95 (2012).
  23. Liang, Y., Agren, L., Lyczek, A., Walczak, P., Bulte, J. W. Neural progenitor cell survival in mouse brain can be improved by co-transplantation of helper cells expressing bFGF under doxycycline control. Exp Neurol. 247, 73-79 (2013).

Play Video

Citazione di questo articolo
Quattrocolo, G., Isaac, M., Zhang, Y., Petros, T. J. Homochronic Transplantation of Interneuron Precursors into Early Postnatal Mouse Brains. J. Vis. Exp. (136), e57723, doi:10.3791/57723 (2018).

View Video