Summary

Non distruttive monitoraggio dello sviluppo del vaso sanguigno tessutale basati su Scaffold degradabile usando la tomografia a coerenza ottica

Published: October 03, 2018
doi:

Summary

Un protocollo di passo dopo passo per controlli non distruttivi e di lungo periodo monitoraggio del processo di rimodellamento vascolare e la degradazione di impalcatura nella cultura in tempo reale di biodegradabili polimerici basati su impalcatura tessutale vasi sanguigni con stimolazione pulsatile usando la tomografia ottica di coerenza è descritto qui.

Abstract

Gli innesti vascolari ingegnerizzati con proprietà strutturali e meccaniche simili ai vasi sanguigni naturali sono tenuti a soddisfare la crescente domanda per bypass arterioso. Caratterizzazione della dinamica di crescita e il processo di rimodellamento dei polimeri biodegradabili basate su impalcatura tessutale vasi sanguigni (TEBVs) con stimolazione pulsatile è cruciale per l’ingegneria del tessuto vascolare. Tecniche di imaging ottici si distinguono come potenti strumenti per il monitoraggio di vascolarizzazione del tessuto ingegnerizzato abilitazione imaging ad alta risoluzione in tempo reale cultura. Questa carta dimostra un non distruttivo e veloce in tempo reale strategia per monitorare la crescita di imaging e rimodellamento del TEBVs in coltura a lungo termine mediante tomografia a coerenza ottica (OCT). Morfologia geometrica viene valutata, tra cui il processo di rimodellamento vascolare, spessore della parete e confronto di spessore TEBV in intervalli di tempo di diversa cultura e presenza di stimolazione pulsatile. Infine, OCT fornisce possibilità pratiche per l’osservazione in tempo reale della degradazione del polimero nei tessuti ricostruzione sotto stimolazione pulsatile o non e in ogni segmento di vaso, di rispetto con la valutazione dell’utilizzo di degradazione polimerica scanning electron microscopic(SEM) e microscopio polarizzato.

Introduction

Tessutale di vasi sanguigni (TEBVs) è il materiale più promettenti come un innesto vascolare ideale1. Al fine di sviluppare gli innesti per essere clinicamente utile con le simili proprietà strutturali e funzionali come vasi nativi, tecniche multiple sono state progettate per mantenere la funzione vascolare2,3. Anche se ci sono stati derivati dal vasi con tassi di pervietà accettabile durante l’impianto e in studio clinico di fase III4, coltura a lungo termine e l’alto costo mostrano anche la necessità di monitoraggio dell’evoluzione della TEBVs. Comprensione dei processi di crescita, rimodellamento e adattamento matrix(ECM) extracellulare in TEBVs nell’ambiente di chemio-meccanica di biomimetica può fornire informazioni cruciali per lo sviluppo dell’ingegneria di tessuto vascolare.

La strategia ideale per seguire l’evoluzione delle navi derivati dal piccolo diametro5 dovrebbe essere non distruttivo, sterile, longitudinale, tridimensionale e quantitativa. Questa modalità di formazione immagine, tra cui anche cambiamenti prima e dopo trapianto vascolare potrebbe essere valutato TEBVs sotto differenti condizioni di coltura. Sono necessarie strategie per descrivere le caratteristiche dei vasi vivente ingegnerizzato. Tecniche di imaging ottici consentono la visualizzazione e quantificazione di deposizione tissutale e biomateriali. Altri vantaggi sono la possibilità di abilitare imaging dei tessuti profondi e privo di etichetta con alta risoluzione6,7. Tuttavia, immagine specifiche molecole e apparecchiature ottiche meno facilmente accessibile per il monitoraggio in tempo reale è un ostacolo pratico significativo, che ha limitato l’applicazione estesa della microscopia ottica non lineare. Tomografia a coerenza ottica (OCT) è un approccio ottico con modalità di formazione immagine intravascolare come strumento clinico ampiamente usato per guidare la terapia interventistica cardiaca8. Nella letteratura il metodo dell’OCT è stato segnalato come un modo per valutare lo spessore della parete di TEBVs9,10, accoppiato con modalità di imaging affermativa per ricerca di ingegneria del tessuto vascolare. Considerando che, le dinamiche di engineered vascolare crescita ed il ritocco non è stata osservata.

In questo manoscritto, dettagliamo la preparazione del TEBVs basato su scaffold polimerici biodegradabili per la cultura di quattro settimane. Cellule muscolari lisce vascolari arterie ombelicali umane (HUASMCs) sono espanse e teste di serie un impalcature di acido (PGA) poroso poliglicolico degradabile nel bioreattore. Polimeri biodegradabili il ruolo in un substrato temporaneo per l’ingegneria tissutale e hanno un certo degrado tasso11. Al fine di garantire una corrispondenza appropriata tra degrado dell’impalcatura e formazione di neo-tessuto, ECM e PGA ponteggi sono fattori cruciali per il rimodellamento vascolare efficace. Il sistema di perfusione simula il microambiente biomeccanico dei vasi nativi e mantiene una deformazione costante sotto stimolazione di pressione.

L’obiettivo del protocollo presentato è quello di descrivere una strategia relativamente semplice e non distruttiva per TEBVs di imaging e monitoraggio a lungo termine della cultura. Questo protocollo può essere utilizzato per la visualizzazione dei cambiamenti morfologici e misure di spessore dei derivati dal vasi sotto differenti condizioni di coltura. Inoltre, l’analisi del degrado di materiali polimerici nel tessuto impalcature di ingegneria possono essere eseguite per l’identificazione. Combinando metodi di scansione elettrone microscopio polarizzato utilizzati in questo protocollo, la correlazione e la quantificazione di distribuzione di matrice extracellulare e la degradazione di PGA e microscopic(SEM) può essere fatto, che può facilitare la valutazione dell’impalcatura degradazione combinato con formazione immagine OCT.

Protocol

1. degradabile PGA impalcatura basato tessutale vasi cultura Fabbricazione di Scaffold PGA Cucire le maglie di PGA (diametro 19 mm e 1 mm di spessore) nei dintorni di tubazione del silicone sterilizzata con ossido di etilene (17 centimetri di lunghezza, diametro 5,0 mm e 0,3 mm di spessore) usando il 5-0 suturare. Cucire il politetrafluoroetilene (ePTFE, 1cm di lunghezza) con il 4-0 suturare su ciascuna estremità della maglia di PGA e sovrapposta da 2 mm. Immergere ponteggi PGA co…

Representative Results

Il sistema tridimensionale cultura consisteva di una camera di coltura in bioreattore e il sistema di perfusione con un ciclo fluido chiuso10,13 (Figura 1). Il catetere di imaging OCT è stato inserito nell’estremità distale della Y-giunzione e tirato indietro nel tubo in silicone per l’imaging. Formazione immagine OCT fu usata per delineare la caratterizzazione strutturale di TEBVs basati su scaffol…

Discussion

Per generare ingegnerizzato vasi con strutturali e proprietà meccaniche simili a quelle dei vasi sanguigni nativi può condurre per accorciare i tempi per l’uso clinico ed è l’obiettivo finale di ingegneria vascolare. Tecniche di imaging ottici consentono la visualizzazione di tessuti ingegnerizzati vascolare componenti specifici, che non è possibile monitorare diversi costrutti in tutto gli innesti di cultura e l’esposizione a un ambiente di cultura senza compromettere la sterilità7. In quest…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vorremmo riconoscere la scienza e la tecnologia pianificazione progetto della provincia di Guangdong (2016B070701007) per sostenere questo lavoro.

Materials

PGA mesh Synthecon
silicone tube Cole Parmer
connector Cole Parmer
intravascular OCT system St. Jude Medical, Inc ILUMIEN™ OPTIS™ SYSTEM
scanning electron microscopic Philips  FEI Philips XL-30
polarized microscope Olympus Olympus BX51
sutures Johnson & Johnson
pulsatile pump Guangdong Cardiovascular Institute
LightLab Imaging software St. Jude Medical, Inc

Riferimenti

  1. Chan-Park, M. B., et al. Biomimetic control of vascular smooth muscle cell morphology and phenotype for functional tissue-engineered small-diameter blood vessels. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 88, 1104-1121 (2009).
  2. Ballyns, J. J., Bonassar, L. J. Image-guided tissue engineering. Journal of Cellular & Molecular Medicine. 13, 1428-1436 (2009).
  3. Smith, L. E., et al. A comparison of imaging methodologies for 3D tissue engineering. Microscopy Research & Technique. 73, 1123-1133 (2010).
  4. Chang, W. G., Niklason, L. E. A short discourse on vascular tissue engineering. NPJ Regenerative Medicine. 2, (2017).
  5. Appel, A. A., Anastasio, M. A., Larson, J. C., Brey, E. M. Imaging challenges in biomaterials and tissue engineering. Biomaterials. 34, 6615-6630 (2013).
  6. Rice, W. L., et al. Non-invasive characterization of structure and morphology of silk fibroin biomaterials using non-linear microscopy. Biomaterials. 29, 2015-2024 (2008).
  7. Niklason, L. E., et al. Enabling tools for engineering collagenous tissues integrating bioreactors, intravital imaging, and biomechanical modeling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. , 3335-3339 (2010).
  8. Zheng, K., Rupnick, M. A., Liu, B., Brezinski, M. E. Three Dimensional OCT in the Engineering of Tissue Constructs: A Potentially Powerful Tool for Assessing Optimal Scaffold Structure. Open Tissue Engineering & Regenerative Medicine Journal. 2, 8-13 (2009).
  9. Gurjarpadhye, A. A., et al. Imaging and characterization of bioengineered blood vessels within a bioreactor using free-space and catheter-based OCT. Lasers in Surgery and Medicine. 45, 391-400 (2013).
  10. Chen, W., et al. In vitro remodeling and structural characterization of degradable polymer scaffold-based tissue-engineered vascular grafts using optical coherence tomography. Cell & Tissue Research. 370, 417-426 (2017).
  11. Naito, Y., et al. Characterization of the natural history of extracellular matrix production in tissue-engineered vascular grafts during neovessel formation. Cells Tissues Organs. 195, 60-72 (2012).
  12. Ye, C., et al. The design conception and realization of pulsatile ventricular assist devices-from Spiral-Vortex pump to Luo-Ye pump. Chinese Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 9, 35-40 (2002).
  13. Chen, W., et al. Application of optical coherence tomography in tissue engineered blood vessel culture based on Luo-Ye pump. Chinese Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 31, 687-690 (2015).
  14. Pickering, J. G., Boughner, D. R., et al. Quantitative assessment of the age of fibrotic lesions using polarized light microscopy and digital image analysis. American Journal of Pathology. 138, 1225-1231 (1991).
  15. Martinho, J. A., et al. Dependence of optical attenuation coefficient and mechanical tension of irradiated human cartilage measured by optical coherence tomography. Cell Tissue Bank. 16, 47-53 (2015).
  16. Poirierquinot, M., et al. High-resolution 1.5-Tesla magnetic resonance imaging for tissue-engineered constructs: a noninvasive tool to assess three-dimensional scaffold architecture and cell seeding. Tissue Engineering Part C Methods. 16, 185-200 (2010).
  17. Naito, Y., et al. Beyond burst pressure: initial evaluation of the natural history of the biaxial mechanical properties of tissue-engineered vascular grafts in the venous circulation using a murine model. Tissue Engineering Part A. 20, 346-355 (2014).
  18. Smart, N., Dube, K. N., Riley, P. R. Coronary vessel development and insight towards neovascular therapy. International Journal of Clinical and Experimental Pathology. 90, 262-283 (2009).

Play Video

Citazione di questo articolo
Chen, W., Liu, S., Yang, J., Wu, Y., Ma, W., Lin, Z. Nondestructive Monitoring of Degradable Scaffold-Based Tissue-Engineered Blood Vessel Development Using Optical Coherence Tomography. J. Vis. Exp. (140), e58040, doi:10.3791/58040 (2018).

View Video