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Engineering

双频激励下驻面声波的微粒操纵

Published: August 21, 2018 doi: 10.3791/58085
Automatic Translation
1, 1
1School of Mechanical and Aerospace Engineering, Nanyang Technological University

Summary

提出了一种用双频励磁微流控通道处理微粒的协议。

Abstract

本文演示了一种提高驻面声波 (螺旋埋弧) 在单片机系统中微粒操作的调谐能力的方法。同时激发的基本频率和它的第三次谐波, 这被称为双频励磁, 对一对交叉传感器 (IDTs) 可以产生一种新的类型的驻声波在微流控通道。改变双频励磁信号中的功率和相位, 可重构应用于微通道内微粒的声辐射力 (例如, 压力节点的数量和位置, 以及在相应的压力节点上的微粒浓度)。本文表明, 微粒子的运动时间只有一个压力节点可以减少2倍的功率比的基本频率大于90%。相比之下, 微通道中有三个压力节点, 如果小于这个阈值。此外, 调整基本频率与第三次谐波之间的初始相位, 会导致三个螺旋埋弧压力节点的不同运动速率, 以及微通道中每个压力节点的微粒百分比。实验观测与数值预测有很好的一致性。这种新颖的励磁方法能够很容易地、无创性地集成到系统中, 具有广泛的可维持, 对实验装置的改动也只有少数。

Introduction

在生物、化学、生物物理学和医学过程中, 中控技术将一个或多个功能集成在微芯片上。通量允许实验室设置的规模小于亚毫米, 快速反应速度, 短响应时间, 高过程控制, 低容量消耗 (减少浪费, 较低的试剂成本, 和较少的样品量), 高吞吐量由于并行化, 在未来大规模生产和经济高效的一次性耗材的低成本, 化学, 放射性, 或生物研究的高安全性, 以及紧凑和便携设备1,2的优势。精确的细胞操作 (即积累和分离) 在基于控制的分析和诊断3,4中是至关重要的。然而, 微粒操纵的准确性和重现性有各种各样的挑战。许多技术, 如电渗透5, 介电泳 (DEP)6, magnetophoresis7, thermophoresis8,9, 光学方法10, 光电方法11, 开发了水动力方法12和 acoustophoresis13、14、15。相比之下, 声学方法是适用于一个应用, 因为理论上, 许多类型的微粒/细胞可以有效地操纵和无创性与足够高的对比度 (密度和压缩性) 比较周围的液体。因此, 与它们的对应物相比, 声学方法天生符合大多数微粒和生物物体的条件, 不管它们的光学、电学和磁性特性16。

根据斯内尔定律17, IDTs 的表面声波 (锯) 主要传播在压电基底的表面, 在几个波长的厚度上, 然后在瑞利角向微通道中的流体泄漏. 18,19,20,21,22。由于其能量的定位, 在高频率下具有很好的设计灵活性, 具有良好的微流控通道和小型化的系统集成, 使其在表面上具有高能量效率的技术优势。微电子-机械系统 (MEMS) 技术, 具有很高的大批量生产潜力23。在这个协议中, 锯是由一对相同的 IDTs 产生的, 并以相反的方向传播, 在微通道中产生驻波, 或螺旋弧, 悬浮微粒被推到压力节点, 主要由应用的声学辐射力24。这种合力的振幅由激发频率、微粒大小和声学对比系数22、25决定。

这样的 acoustophoresis 限制了预先设定的操作模式, 而这些方式不易调整。IDTs 的激发频率由它们的周期距离决定, 因此带宽相当有限。为了提高调谐和操纵能力, 开发了一些策略。在微通道的不同部位应用的声驻波的第一和第二模态, 可以根据不同的运动速度将微粒更有效地分离到节点线26。这两种模式也可应用于微通道的整个部分, 并交替切换27、28、29。然而, 为此, 需要大量的设备 (即三个函数发生器、两个阻抗匹配单元和一个电磁继电器), 由于不同的实验装置的成本和控制复杂性的增加,电阻抗在压电陶瓷板的基本频率和第三次谐波30。此外, 倾斜手指叉指变换器 (SFITs) 可以用来调整细胞和微粒模式的刺激一段时间的倾斜手指为某一共振20,31。然而, 带宽与倾斜的手指的数量成反比。与传统的螺旋型磁粉分离器的单节线相比, 多压力节线具有较高的分离效率和灵敏度。另外, 压力节点的位置也可以通过调整在设计32,33中应用到两个 IDTs 的相位差来改变。

IDTs 的基本频率和第三次谐波具有相似的频率响应, 使它们能够同时激发, 为微粒操作34提供了更多的调谐。与传统的单频励磁相比, 调整双频励磁的声压和两者之间的相位提供了技术的唯一性, 例如高达2倍的缩短运动时间到压力节点线或中心的微通道, 不同数量和位置的压力节点线, 和微粒浓度。

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Protocol

1. 微流控通道的制备

  1. 混合甲基 () 与弹性体基础的比例为10:1。
  2. 将混合物放入真空烤箱中, 将其倒在硅晶片上, 上面有一个负色调的光刻胶图案。
  3. 再次德加的图案硅晶片, 并加热它在70°c 3 小时, 在一个孵化器凝固。

2. 叉指变换器的制作

  1. 在吴林波3晶片上沉积 20 nm 铬和 400 nm 的铝;图案20条, 宽度为150µm, 在塑料面罩上的光圈为2厘米, 通过将正光刻胶沉积在基板上进行光刻。
  2. 用丙酮去除未暴露区域的 Cr 铝层。
  3. 用氧等离子体 (氮气和氧比为 2:1) 将其表面处理为六十年代的 30 W 的功率。
  4. 将该微通道对准, 并将其与吴林波3基板结合, 用拇指按压几秒钟。
  5. 将集成设备放置在加热室中, 温度为60摄氏度, 为3小时。

3. 双频励磁

  1. 同时应用两个频率分量 (f1 和f3, 其基本频率及其三次谐波分别) 与相差φ之间的 IDTs 对对, 使所生产的锯子可表示如下。
    Equation 1
    这里
    Equation 2和Equation 3 = 声学压力。
  2. 利用 ArbExpress 应用软件的方程编辑器在100毫秒/秒的采样频率上合成双频波形, 然后将其存储到函数发生器中, 作为任意输入的 SAW 励磁实验通过USB 电缆。
  3. 改变基本频率的力量到总发射的力量Equation 4从 100% (励磁在纯粹基本的频率) 到 0% (励磁在纯粹第三谐波);为了一个好的比较, 改变, 但保持总功率相同。
  4. 将双频励磁的相位差改变为360°。

4. 数值模拟

  1. 描述低雷诺 (即 Re 0.55) 和马赫数的不可压缩层流流的运动, 如下所示35。
    Equation 5
    Equation 6
    这里
    Equation 7= 流体速度,
    Equation 8= 动态粘度,
    Equation 9= 流体密度,
    Equation 10= 流体的压力,
    Equation 11= 标识矩阵和
    Equation 12= 外力。
  2. 描述在物体上产生的斯托克城拖曳力, 如下所示36。
    Equation 13
    这里
    Equation 14= 微粒的半径,
    Equation 15= 流体的速度和
    Equation 16= 微粒的速度。
  3. 在x轴 (横跨微通道宽度) 的微通道中, 根据16的频率推导出适用于所述微粒的声辐射力。
    Equation 17
    这里
    Equation 18= 微粒的容量,
    Equation 19= 微粒的密度,
    Equation 20= 介质的密度,
    Equation 21= 微粒的压缩性, 和
    Equation 22= 介质的压缩性。
  4. 推导了双频励磁产生的声辐射力如下。
    Equation 23
  5. 在声波辐射力和由牛顿第二定律所控制的斯托克斯拖曳力的情况下, 在通道宽度 (沿y轴) 上表达横向运动, 如下所示。
    Equation 24
  6. 在个人计算机上使用第四阶的朗格-库塔方法求解上述常微分方程。分别将时间步长和总工期设置为1µs 和二十年代。

5. 实验观察

  1. 旋转溶液集中 5.9 x 107与4µm 绿色荧光聚苯乙烯珠每1毫升的漩涡约 2-3 分钟, 然后浸泡在超声波 sonicator 10 分钟, 以扰乱任何团聚之前, 每次测试。
  2. 将混合物装入3毫升注射器, 然后用注射器泵驱动, 流速为 3-5 µL/分钟。
  3. 驱动与双频信号从一个功能发生器后跟功率放大器。
  4. 在40X 放大的光镜下观察下游微通道中的稳定微粒, 并用数码相机记录图像。
  5. 用 ImageJ 和建立的尺度测量捕获数字图像中累积微粒的位置, 然后用规范化的荧光亮度定量测定累积微粒的浓度。每个压力节点。

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Representative Results

在双频励磁 (6.2 和18.6 兆赫) 下, 螺旋埋弧焊的声压和声辐射力分布在图 1中。在这里, 双频励磁发生在聚苯乙烯微粒 (直径4µm) 在微通道, 宽度为300µm 在一个声学功率146兆瓦。在P1 > 90% 的情况下, 产生的声学压力总是处于阶段, 因此只有一个压力节点存在于y = 150 µm。相比之下, 三压力节点存在于y = 75, 150, 225 µm 在p1 = 90%, 并在y = 50, 150, 250 µm 在p1 = 0%。在所有测试条件中, P1= 90% 的阈值几乎是恒定的, 如微粒直径为 4-10 µm, 总声学功率为 73-648 兆瓦, 并且驱动频率为 6.2-18.6 兆赫。

在P1 = 90%, 该地区的微粒在75µm < y < 255 µm 和0µm ≤ 75 µm 向中心和下压节点分别移动。相比之下, 在P1 = 0%, 中心和较低压力节点的区域分别改为100µm < y < 200 µm 和0µm ≤100µm. 随后, 下部节点的微粒浓度从25% 到33.3% 不等, 中心节点从50% 到 33.3%, 分别减少P1 , 从90% 到 0% (见图 2a)。微粒的运动时间往压力节点减少从大约 1.95 s 在p1 = 100% 到 0.97 s 在p1 = 95% (参见图 2b)。实验测量了压力节点位置和微粒浓度对P1的依赖性, 与数值预测有很好的相关性 (R2 = 0.85,图 2c和R2 = 0.83 在图 2d)。测试了大量的功率比 (n > 31), 累积微粒 (6.8-10.6%) 位置的变化远小于压力节点 (6.7-31.4%) 中粒子浓度的差异, 这可能是由于微粒积累过程中团聚的发生。

双频励磁中三次谐波的初始相位影响合成驱动波形、对微粒产生的声辐射力和压力节点的位置 (见图 3)。随着φ从0°到180°的增加, 三压力节点 (y = 63.5、150和236.5 µm) 将逐渐在微通道上向下移动。当P1 固定在 85%, 较低的压力节点位于y = 49.5 µm, 33.5 µm, 17 µm, 0 µm 和在φ = 45°, 90°, 135°和180°分别。从f1 和f3 的声波辐射力是在φ =, 而在φ = 180°阶段。例如, 在y = 75 µm 和φ = 0°, f1 和f3 的最大声辐射力分别为 37.68 pn 和-47.49 pn。在φ = 180°时, 在同一位置的f1 和f3 的最大声辐射力分别为 37.68 pN 和47.49pN。随着φ的增加, 所有压力节点以线性方式向下跨微通道向下移动.注意到, 较低的压力节点比中心和上部压力节点的速度要快得多 (即从63.5 到0µm, 从150到110.6 µm, 从236.5 µm 到190.1 µm, φ由180°转变为)。在φ = 180°, 有4压力节点。之后, 在下边界的压力节点 (y = 0 µm) 消失, 并且在上部边界 (y = 300 µm) 转移向下以同一个率作为低压力节点与φ的变动从从180°的从。在φ = 360°, 压力节点取代相邻的一个 (即, 在φ = 360°的上压节点, 它的位置与中央压力节点在φ = 0°)。实验结果与数值预报有很好的一致性, 特别是在不同阶段的压力节点位置。

Figure 1
图 1.(a) 实验设置的示意图和 (b) IDTs 和聚甲基微通道的照片 (300 µm 的比例)。(c) 压力波形和 (d) 相应的声辐射力应用于 4-µm 微球在300µm 微流控通道的双频励磁在不同功率比的 P1 = 100% (纯基本频率), 95%, 91%, 90%, 85%, 并且 0% (纯第三谐波) 在总声学力量146兆瓦。微粒的运动最初在 y = 0 µm (e) 以4µm 的直径在不同的功率比率 (88-91%) 和总声学力量 (73-648 兆瓦) 和 (f) 以不同的直径 4, 6, 8, 和10µm 在总声学功率73兆瓦。这个数字已经从 Sriphutkiat, Y. 34.请点击这里查看这个数字的更大版本.

Figure 2
图 2.(a) 微粒的位置和浓度, (b) 微粒的运动最初在y0 = 0 微米和微粒积累时间使用双重频率励磁在总声学功率146兆瓦以不同的功率比率。模拟和实验结果 (平均标准偏差) 的比较 (c) 压力节点的位置 (r2 = 0.85, n = 37) 和 (d) 微通道中每个压力节点的微粒浓度 (r2 = 0.83, n = 31) 在不同的功率比率P1。这个数字已经从 Sriphutkiat, Y. 34.请点击这里查看这个数字的更大版本.

Figure 3
图 3.(a) 在双频励磁作用下合成的波形, (b) 在 300-µm 微通道上, 在不同的初始相位上, 在85% 的功率比下, 将所产生的声波辐射力分布于从0°到180°。在双频激励下的初始相位对 (c) 模拟和 (e) 实验中压力节点位置的影响 (均为标准偏差) 和在 (d) 各压力节点累积的微粒百分比模拟和 (f) 实验。请单击此处查看此图的较大版本.

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Discussion

本文研究了双频激励下的螺旋埋弧焊微通道中的微粒运动, 并对双频励磁信号进行了有效的可调谐图形技术的开发和测试。这种波形的产生很容易由大多数函数发生器实现, 调整方法非常方便。12和 s 的11频率响应的捏造 IDTs 说明了几个共振模式34。测量的基本频率为6.1 兆赫和17.8 兆赫的第三次谐波接近那些被设计的价值 (6.2 和18.6 兆赫) 以相似的传输系数,-8.34 db 对-9.75 db, 分别。因此, 在这两个分量上的一个类似的声能量输出, 在双频励磁使用单分频器预期。这样的组件组合不仅限于f1和f3。其他, 如f1和f5, f3和f5, 也适用。虽然陶瓷也可以产生不同的谐波的体积声学, 同时激发他们是不可能的。切换声场可以提高微粒分类29 , 但成本更高的设备和较高的控制复杂性。

双频励磁在不改变其它部件的情况下, 可以方便、有效地调节微通道中压力节点的数量和位置以及相应的微粒浓度。只有一个压力节点在P1 > 90% 是相同的, 因为它产生的基本频率。然而, 有三个压力节点有不同的位置和微粒浓度低于这个门槛。这里的所有测试参数都有这个阈值, 如驱动频率、声学功率和微粒直径。实验结果与理论预测有很好的相关性。利用这一策略, 可以将微粒的运动时间减少到2倍以上, 这意味着更高的吞吐量。

双频相位调制提供了对压力节点位置的灵活控制。将其他压力节点移开或调整内部的声辐射力方向可能是增加特定压力节点上微粒数量的简单方法。在φ ≥ 180°, 微通道底部的压力节点将消失, 但顶部的一个将出现。在φ = 360°, 更换压力节点发生。因此, 压力节点线连续移动与不同的阶段在两个频率组分之间。

在这项研究中, 仍然存在一些局限性。当锯材通过厚的37微通道进行传播时, 可以引入更多的声衰减和粘性加热。在墙上的寄生波激发, 如从一大块声波, 也可能在微通道中驱动流体。使用生物细胞的实验非常需要临床使用。

这种声学控制是固有的非侵入性的, 这种新的励磁策略可以增强可维持和操纵性, 在许多应用中具有很大的潜力。双频励磁在生物诊断中, 如隔离循环肿瘤细胞 (CTCs), 可提供有关转移发生的信息, 并随后要求立即治疗。

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Disclosures

作者没有什么可透露的。

Acknowledgments

这项工作由新加坡教育部学术研究基金 (AcRF) 1 层 (RG171/15) 主办。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
poly-dimethylsiloxane Dow Corning Sylgard 184
poly-dimethylsiloxane elastomer base Dow Corning Sylgard 184
silicon wafer Bonda Technology SI8PSPD
negative tone photoresist Microchem SU-8
double-side polished LiNbO3 wafer University Wafer Y-128°
positive photoresist Nicolaus-Otto-Straße AZ 9260
oxygen plasma Harrick Plasma
plastic mask Infinite Graphics

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References

  1. Chin, C. D., Linder, V., Sia, S. K. Commercialization of microfluidic point-of-care diagnostic devices. Lab on a Chip. 12 (12), 2118-2134 (2012).
  2. Figeys, D., Pinto, D. Lab-on-a-chip: a revolution in biological and medical sciences. Analytical Chemistry. 72 (9), 330 A-335 A (2000).
  3. den Toonder, J. Circulating tumor cells: the Grand Challenge. Lab on a Chip. 11 (3), 375-377 (2011).
  4. Yu, L., et al. Advances of lab-on-a-chip in isolation, detection and post-processing of circulating tumour cells. Lab on a Chip. 13 (16), 3163-3182 (2013).
  5. Jorgenson, J. W., Lukacs, K. D. High-resolution separations based on electrophoresis and electroosmosis. Journal of Chromatography A. 218, 209-216 (1981).
  6. Gascoyne, P. R., Vykoukal, J. Particle separation by dielectrophoresis. Electrophoresis. 23 (13), 1973 (1973).
  7. Xia, N., et al. Combined microfluidic-micromagnetic separation of living cells in continuous flow. Biomedical Microdevices. 8 (4), 299-308 (2006).
  8. Garcés-Chávez, V., et al. Extended organization of colloidal microparticles by surface plasmon polariton excitation. Physical Review B. 73 (8), 085417 (2006).
  9. Zhu, T., Ye, W. Origin of Knudsen forces on heated microbeams. Physical Review E. 82 (3), 036308 (2010).
  10. Ashkin, A., Dziedzic, J., Yamane, T. Optical trapping and manipulation of single cells using infrared laser beams. Nature. 330 (6150), 769-771 (1987).
  11. Chiou, P. Y., Ohta, A. T., Wu, M. C. Massively parallel manipulation of single cells and microparticles using optical images. Nature. 436 (7049), 370-372 (2005).
  12. Yamada, M., Seki, M. Hydrodynamic filtration for on-chip particle concentration and classification utilizing microfluidics. Lab on a Chip. 5 (11), 1233-1239 (2005).
  13. Burguillos, M. A., et al. Microchannel acoustophoresis does not impact survival or function of microglia, leukocytes or tumor cells. PLoS One. 8 (5), e64233 (2013).
  14. Lin, S. -C. S., Mao, X., Huang, T. J. Surface acoustic wave (SAW) acoustophoresis: now and beyond. Lab on a Chip. 12 (16), 2766-2770 (2012).
  15. Petersson, F., Åberg, L., Swärd-Nilsson, A. -M., Laurell, T. Free flow acoustophoresis: microfluidic-based mode of particle and cell separation. Analytical Chemistry. 79 (14), 5117-5123 (2007).
  16. Ding, X., et al. On-chip manipulation of single microparticles, cells, and organisms using surface acoustic waves. Proceedings of the National Academy of Sciences. 109 (28), 11105-11109 (2012).
  17. Friend, J., Yeo, L. Y. Microscale acoustofluidics: Microfluidics driven via acoustics and ultrasonics. Reviews of Modern Physics. 83 (2), 647 (2011).
  18. Destgeer, G., Lee, K. H., Jung, J. H., Alazzam, A., Sung, H. J. Continuous separation of particles in a PDMS microfluidic channel via travelling surface acoustic waves (TSAW). Lab on a Chip. 13 (21), 4210-4216 (2013).
  19. Guo, F., et al. Controlling cell-cell interactions using surface acoustic waves. Proceedings of the National Academy of Sciences. 112 (1), 43-48 (2015).
  20. Ding, X., et al. Cell separation using tilted-angle standing surface acoustic waves. Proceedings of the National Academy of Sciences. 111 (36), 12992-12997 (2014).
  21. Roshchupkin, D., et al. X-ray diffraction by standing surface acoustic waves. Nuclear Instruments and Methods in Physics Research Section B: Beam Interactions with Materials and Atoms. 142 (3), 432-436 (1998).
  22. Shi, J., Mao, X., Ahmed, D., Colletti, A., Huang, T. J. Focusing microparticles in a microfluidic channel with standing surface acoustic waves (SSAW). Lab on a Chip. 8 (2), 221-223 (2008).
  23. Ding, X., et al. Surface acoustic wave microfluidics. Lab on a Chip. 13 (18), 3626-3649 (2013).
  24. King, L. V. On the acoustic radiation pressure on spheres. Proceedings of the Royal Society of London A: Mathematical, Physical and Engineering Sciences. , The Royal Society. 212-240 (1934).
  25. Yosioka, K., Kawasima, Y. Acoustic radiation pressure on a compressible sphere. Acta Acustica United with Acustica. 5 (3), 167-173 (1955).
  26. Ratier, C., Hoyos, M. Acoustic programming in step-split-flow lateral-transport thin fractionation. Analytical Chemistry. 82 (4), 1318-1325 (2010).
  27. Mandralis, Z., Feke, D., Bolek, W., Burger, W., Benes, E. Enhanced synchronized ultrasonic and flow-field fractionation of suspensions. Ultrasonics. 32 (2), 113-122 (1994).
  28. Laurell, T., Petersson, F., Nilsson, A. Chip integrated strategies for acoustic separation and manipulation of cells and particles. Chemical Society Reviews. 36 (3), 492-506 (2007).
  29. Liu, Y., Lim, K. -M. Particle separation in microfluidics using a switching ultrasonic field. Lab on a Chip. 11 (18), 3167-3173 (2011).
  30. Brissaud, M. Characterization of piezoceramics. IEEE Transactions on Ultrasonics, Ferroelectrics, and Frequency Control. 38 (6), 603-617 (1991).
  31. Ding, X., et al. Tunable patterning of microparticles and cells using standing surface acoustic waves. Lab on a Chip. 12 (14), 2491-2497 (2012).
  32. Jo, M. C., Guldiken, R. Particle manipulation by phase-shifting of surface acoustic waves. Sensors and Actuators A: Physical. 207, 39-42 (2014).
  33. Meng, L., et al. Transportation of single cell and microbubbles by phase-shift introduced to standing leaky surface acoustic waves. Biomicrofluidics. 5 (4), 044104 (2011).
  34. Sriphutkiat, Y., Zhou, Y. Particle manipulation using standing surface acoustic waves (SSAW) at dual frequency excitation: effect of power ratio. Sensors and Actuators A: Physical. 263, 521-529 (2017).
  35. Batchelor, G. K. An Introduction to Fluid Dynamics. , Cambridge University Press. Cambridge, UK. (2000).
  36. Glynne-Jones, P., Hill, M. Acoustofluidics 23: acoustic manipulation combined with other force fields. Lab on a Chip. 13 (6), 1003-1010 (2013).
  37. Winkler, A., Brünig, R., Faust, C., Weser, R., Schmidt, H. Towards efficient surface acoustic wave (SAW)-based microfluidic actuators. Sensors and Actuators A: Physical. 247, 259-268 (2016).
  38. Chen, Y., et al. Standing surface acoustic wave (SSAW)-based microfluidic cytometer. Lab on a Chip. 14, 916-923 (2014).
  39. Devendran, C., et al. The importance of travelling wave components in standing surface acoustic wave (SSAW) systems. Lab on a Chip. 16, 3756-3766 (2016).
  40. Destgeer, G., et al. Submicron separation of microspheres via travelling surface acoustic waves. Lab on a Chip. 14, 4665-4672 (2014).
  41. Ding, X., et al. Standing surface acoustic wave (SSAW) based multichannel cell sorting. Lab on a Chip. 12, 4228-4231 (2012).
  42. Chen, Y., et al. Continuous enrichment of low-abundance cell samples using standing surface acoustic waves (SSAW). Lab on a Chip. 14, 924-930 (2014).

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