Summary

تطوير واستخدام Angiographic من طراز VX2 أرنب لسرطان الكبد

Published: January 07, 2019
doi:

Summary

والهدف من هذه المادة توفير تمهيدي لتطوير واستخدام نموذج أرنب سرطان VX2 لسرطان الكبد.

Abstract

ورم VX2 الأرنب نموذج حيوانية المستخدمة عادة للبحوث متعدية الجنسيات فيما يتعلق بسرطانه الخلية الكبدية (HCC) في مجال “الأشعة التداخلية”. ويستخدم هذا النموذج المتحولة الخلايا الحرشفية التي يتم نشرها بسهولة وبشكل موثوق في العضلات الهيكلية من الأرانب المانحة لزرع الحصاد و allograft في نهاية المطاف في الكبد من السذاجة المستلمين. سرعة ينمو هذا الاختلاس الورم داخل كبد الأرانب المتلقية في ورم أنجيوجرافيكالي شخصية تتميز بنواة نخرية محاطة بكبسولة هايبرفاسكولار قابلة للحياة. الحجم الفعلي لتشريح الأرنب غير كافية لتيسير الأجهزة والأوعية الدموية يسمح بتطبيق واختبار مختلف التقنيات التداخلية. وعلى الرغم من هذه الفوائد، هناك ندرة في الموارد التقنية بمثابة إشارة ملموسة للباحثين العاملين مع النموذج. وهنا، نقدم مخطط بصرية شاملة للجوانب التقنية للتنمية والنمو، ونشر، واستخدام angiographic من طراز الورم VX2 أرنب للاستخدام من قبل المبتدئين والباحثين ذوي الخبرة على حد سواء.

Introduction

نموذج الورم VX2 أرنب لعبت دوراً في علاج الأورام التجريبية منذ تطويره في عام 19351،2. هذا الورم هو التي يسببها فيروس المتحولة الخلايا الحرشفية تتميز هايبرفاسكولاريتي، والنمو السريع، ونشر سهلة في الهيكل العظمى والعضلات3،4. وفي حين استخدمت نموذج الورم الأرنب VX2 للتحقيق في عدد كبير من أنواع السرطان5،6،،من78؛ تركز هذه الورقة هو سرطان الكبد9.

وغرض الأسلوب الموصوفة هو تقديم نموذج لسرطان الكبد الأولية، أو سرطانه الخلية الكبدية (HCC)، التي يمكن أن يستخدمها “الأشعة التداخلية” للبحوث متعدية الجنسيات. يمكن استخدامه لدراسات الحرائك الدوائية والعلاجية التحقيقات والجر أسلوب اختبار10،11،،من1213،،من1415.

الطريقة بالتفصيل هنا غلة مزايا متعددة على نماذج أخرى داخل نفس المجال مثل نماذج القوارض مثل الفئران، الفئران، ووودتشوكس، أو نماذج أكبر مثل الرئيسات16. إحدى الفوائد الرئيسية هي نمو الورم السريع والموثوق بها التي يسمح للباحثين بإنشاء خط ورم نشط في غضون شهر من أطرافهم هند أول نشر17. بالإضافة إلى ذلك، يحتوي هذا الورم واضحة الرؤية سونوجرافيك وهامش هايبرفاسكولار الذي يسمح لكل من ترانسارتيريال لوكوريجيونال العلاجات والعلاجات الجر. وأخيراً، والأهم من ذلك، يسمح حجم المفرج أرنب استخدام مجدية وسهلة من الناحية التقنية للأجهزة والأوعية الدموية18.

Protocol

ويتبع البروتوكول التالي جميع المتطلبات والمبادئ التوجيهية التي أقرتها جامعة إلينوي-شيكاغو. أنه تم استعراض وموافقة المحلية رعاية الحيوان المؤسسية واستخدام اللجنة قبل التنفيذ. 1-VX2 أطرافهم هند الورم التنمية شراء خط خلية الورم VX2 من الوطنية سرطان معهد شعبة لتشخيص مرض ال?…

Representative Results

عند النظر إلى الشكل 1، فمن الواضح أن كوادريسيب الأرنب هو الموسع. بالإضافة إلى ذلك، متعددة العقيدات الصغيرة المنفصلة، ربط عادة مع نمو الورم عن طريق اللفافة، مرئية. عند ملامسة، يجب أن تظهر أطرافهم حقن من أطرافهم غير مدخلة. إذا كان باحث يتطلب تأكيد نهائي أكثر…

Discussion

الخطوة الأولى الحاسمة في منهجية الورم VX2 نشر ناجحة لورم في أطرافهم هند أرنب المانحين. الرجوع إلى الفقرة الأولى في المقطع “النتائج ممثلة” لمزيد من المعلومات بشأن هذه الخطوة.

الخطوة الحاسمة التالية، هو ضمان أن الكبسولة الورم قابلة للتطبيق يتم التعرف بشكل صحيح. سوف يكون هذا ضرو…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

ونود أن نعترف بموظفي الطب البيطري في جامعة إيلينوي-“مختبر” شيكاغو الموارد البيولوجية.

Materials

MethoCult (Methycellulose) Stemcell Technologies M3134
VX2 Cell Line NCI VX-2
5 mL Syringe BD 309646
16-Gauge Needle BD 305197
22-Gauge Needle BD 305155
Hair Clippers Wahl 41870-0438
Foam Insulated Box Mr. Box Online 10 x 10 x 4
Acepromazine Henry Schein 003845
Buprenorphine Par 42023-179-05
Meloxicam Henry Schein 049755
Alcohol Pads Covidien 5033
Ketamine Henry Schein 056344
Xylazine Akorn 59399-110-20
Pentobarbital (Fatal-Plus) Vortech 9373
Sterile Petri Dish Thermo Fisher 172931
DMEM Gibco 11965092
Saline Baxter 2F7124
15-Blade Steris 02-050-015
Scalpel Handle x 2 Steris 22-2381
Curved Hemostat WPI 501288
Atraumatic Forceps Sklar 52-5077
Gauze Medline NON21430LF
11-Blade Steris 02-050-011
Surgicel Ethicon 1951
3-0 PDS / Taper Ethicon Z305H
4 – 0 Vicryl / Cutting Ethicon J392H
40 micron strainer BD 352340
50 mL conical tube Thermo Fisher 339652
plastic pipette Thomas Scientific HS206371B
Centrifuge Sorvall 75004240
1.40mL Tubes (Internal Thread) Micronic MP32131-Z20
3-F VSI Micro-HV Introducer Kit Vascular Solutions Custom Order (P15180391)
.018 45-degree angle glidewire Terumo RG*GA1818SA
Direxion bern-shape microcatheter Boston Scientific M001195230
Omnipaque GE Y510

Riferimenti

  1. Rous, P., Beard, J. W. The Progression To Carcinoma of Virus-Induced Rabbit Papillomas (Shope). The Journal of Experimental Medicine. 62 (4), 523-548 (1935).
  2. Kidd, J. G., Rous, P. A transplantable rabbit carcinoma originating in a virus-induced papilloma and containing the virus in masked or altered form. The Journal of Experimental Medicine. 71 (6), 813-838 (1940).
  3. Galasko, C. S. B., Muckle, D. S. Intrasarcolemmal proliferation of the vx2 carcinoma. British Journal of Cancer. 29 (1), 59-65 (1974).
  4. Maruyama, H., et al. Sonographic shift of hypervascular liver tumor on blood pool harmonic images with definity: Time-related changes of contrast-enhanced appearance in rabbit VX2 tumor under extra-low acoustic power. European Journal of Radiology. 56 (1), 60-65 (2005).
  5. Horkan, C., et al. Radiofrequency Ablation: Effect of Pharmacologic Modulation of Hepatic and Renal Blood Flow on Coagulation Diameter in a VX2 Tumor Model. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 15 (3), 269-274 (2004).
  6. Bimonte, S., et al. Induction of VX2 para-renal carcinoma in rabbits: generation of animal model for loco-regional treatments of solid tumors. Infectious Agents and Cancer. 11 (1), 1-8 (2016).
  7. Goldberg, S. N., Gazelle, G. S., Compton, C. C., Mueller, P. R., McLoud, T. C. Radio-frequency tissue ablation of VX2 tumor nodules in the rabbit lung. Academic Radiology. 3 (11), 929-935 (1996).
  8. Rhee, T. K., et al. Rabbit VX2 Tumors as an Animal Model of Uterine Fibroids and for Uterine Artery Embolization. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 18 (3), 411-418 (2007).
  9. Parvinian, A., Casadaban, L. C., Gaba, R. C. Development, growth, propagation, and angiographic utilization of the rabbit VX2 model of liver cancer: A pictorial primer and "how to" guide. Diagnostic and Interventional Radiology. 20 (4), 335-340 (2014).
  10. Xia, X., et al. Intra-arterial interleukin-12 gene delivery combined with chemoembolization: Anti-tumor effect in a rabbit hepatocellular carcinoma (HCC) model. Acta Radiologica. 54 (6), 684-689 (2013).
  11. Gaba, R. C., et al. Ethiodized oil uptake does not predict doxorubicin drug delivery after chemoembolization in VX2 liver tumors. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 23 (2), 265-273 (2012).
  12. Choi, Y. H., et al. Novel Intraarterial Therapy for Liver Cancer Using Ethylbromopyruvate Dissolved in an Iodized Oil. Academic Radiology. 18 (4), 471-478 (2011).
  13. Ma, H. L., Xu, Y. F., Qi, X. R., Maitani, Y., Nagai, T. Superparamagnetic iron oxide nanoparticles stabilized by alginate: Pharmacokinetics, tissue distribution, and applications in detecting liver cancers. International Journal of Pharmaceutics. 354 (1-2), 217-226 (2008).
  14. Wang, D., et al. Liver tumors: Monitoring embolization in rabbits with VX2 tumors -Transcatheter intraarterial first-pass perfusion MR imaging. Radiology. 245 (1), 130-139 (2007).
  15. Bimonte, S., et al. Radio-frequency ablation-based studies on VX2rabbit models for HCC treatment. Infectious Agents and Cancer. 11 (1), (2016).
  16. Gaba, R., Obeid, M., Khabbaz, R., Garcia, K., Schachtschneider, K. Translational Animal Models for Liver Cancer. American Journal of Interventional Radiology. 2 (2), 1-8 (2018).
  17. Kuszyk, B. S., et al. Local tumor recurrence following hepatic cryoablation: radiologic-histopathologic correlation in a rabbit model. Radiology. 217 (2), 477-486 (2000).
  18. Geschwind, J., et al. Chemoembolization of Liver Tumor in a Rabbit Model Assessment of Tumor Cell Death with Diffusion-Weighted MR Imaging and Histologic Analysis. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 11 (10), 1245-1255 (2000).
  19. Virmani, S., et al. Comparison of Two Different Methods for Inoculating VX2 Tumors in Rabbit Livers and Hind Limbs. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 19 (6), 931-936 (2008).
  20. Seldinger, S. I. Catheter replacement of the needle in percutaneous arteriography: A new technique. Acta Radiologica. 49 (SUPPL 434), 47-52 (2008).
  21. Schook, L. B., et al. A genetic porcine model of cancer. PLoS One. 10 (7), e0128864 (2015).

Play Video

Citazione di questo articolo
Khabbaz, R. C., Huang, Y., Smith, A. A., Garcia, K. D., Lokken, R. P., Gaba, R. C. Development and Angiographic Use of the Rabbit VX2 Model for Liver Cancer. J. Vis. Exp. (143), e58600, doi:10.3791/58600 (2019).

View Video