Geliştirme ve tavşan VX2 modeli anjiyografik kullanımı karaciğer kanseri için
Summary
Bu makalenin amacı kalkınma ve karaciğer kanseri için VX2 Karsinomu tavşan modeli kullanımını bir astar sağlamaktır.
Abstract
Tavşan VX2 hepatosellüler karsinom (HCC) girişimsel radyoloji alanında ilgili translasyonel araştırma için yaygın olarak kullanılan bir hayvan modeli tümördür. Bu model bir Anaplastik Skuamöz Hücre Karsinomu kolayca ve güvenle nihai hasat ve homogreft implantasyonu karaciğer içine saf alıcılar için donör tavşan iskelet kas yayılır kullanır. Bu tümör greft alıcı tavşan karaciğer içinde uygun hypervascular kapsül tarafından çevrili nekrotik bir çekirdek ile karakterize bir angiographically olarak tanımlanabilir tümör içine hızla büyür. Tavşan anatomisi fiziksel boyutunu uygulama için izin ve çeşitli girişimsel teknikleri test vasküler araçları kolaylaştırmak yeterlidir. Bu avantajlar rağmen bir model ile çalışan araştırmacılar için somut bir referans olarak hareket etmek teknik kaynaklar yetersizliği bulunmaktadır. Burada, biz geliştirme, büyüme, yayma ve Anjiyografik kullanımı acemi ve tecrübeli araştırmacılar hem için tavşan VX2 tümör modelinin teknik özellikleri için kapsamlı bir görsel taslak mevcut.
Introduction
Tavşan VX2 tümör model gelişimi 19351,2beri deneysel Onkoloji bir rol oynamıştır. Bu bir virüs kaynaklı Anaplastik skuamöz hücreli hypervascularity, hızlı büyüme ve kolay yayılma iskelet kas3,4ile karakterize karsinom tümördür. Tavşan VX2 tümör modeli çok sayıda kanser5,6,7,8araştırmak için kullanılan süre; Bu yazının odak karaciğer kanseri9‘ dur.
Açıklanan yöntemin amacı primer karaciğer kanseri veya girişimsel radyologlar tarafından translasyonel araştırma için kullanılabilir hepatosellüler karsinom (HCC), için bir model sunmaktır. Farmakokinetik çalışmaları, terapötik araştırmalar ve ablatif yöntemi10,11,12,13,14,15test için kullanılabilir.
Burada ayrıntılı yöntemi diğer modelleri fareler gibi kemirgen modelleri gibi aynı küre içinde birden çok avantajlar verimleri fareler ve dağ sıçanları veya daha büyük modelleri primatlar16gibi. Araştırmacılar ilk hind uzuv yayılma17bir ay içinde bir aktif tümör hattı kurmayı sağlayan hızlı ve güvenilir tümör büyüme birincil yararları biridir. Ayrıca, bu tümör basit ultrasonografik görünürlük ve transarterial lokal tedaviler ve ablatif tedaviler için izin veren bir hypervascular çevre var. Son olarak ve en önemlisi, tavşan damarlara boyutunu vasküler araçları18mümkün ve teknik olarak kolay kullanımı izin verir.
Protocol
Representative Results
Discussion
İlk kritik adım VX2 tümör yöntembilim başarılı bir donör tavşan hind bacak bir tümör yayılması olduğunu. Bu adım hakkında daha fazla bilgi için “Temsilcisi sonuçlar” bölümünde ilk paragrafa bakın.
Sonraki kritik adım uygun tümör kapsülü düzgün tespit garanti etmektedir. Sadece bu tümör süspansiyon hazırlama için gerekli olacaktır, ama seçmek ve hepatik implantasyon için tümör adet üreten için önemlidir. Canlı tümör ve çevresindeki kas dokusu aras?…
Divulgazioni
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
-Chicago’nun biyolojik kaynakların laboratuvar Illinois Üniversitesi’nde Veterinerlik personel kabul etmek istiyoruz.
Materials
| MethoCult (Methycellulose) | Stemcell Technologies | M3134 | |
| VX2 Cell Line | NCI | VX-2 | |
| 5 mL Syringe | BD | 309646 | |
| 16-Gauge Needle | BD | 305197 | |
| 22-Gauge Needle | BD | 305155 | |
| Hair Clippers | Wahl | 41870-0438 | |
| Foam Insulated Box | Mr. Box Online | 10 x 10 x 4 | |
| Acepromazine | Henry Schein | 003845 | |
| Buprenorphine | Par | 42023-179-05 | |
| Meloxicam | Henry Schein | 049755 | |
| Alcohol Pads | Covidien | 5033 | |
| Ketamine | Henry Schein | 056344 | |
| Xylazine | Akorn | 59399-110-20 | |
| Pentobarbital (Fatal-Plus) | Vortech | 9373 | |
| Sterile Petri Dish | Thermo Fisher | 172931 | |
| DMEM | Gibco | 11965092 | |
| Saline | Baxter | 2F7124 | |
| 15-Blade | Steris | 02-050-015 | |
| Scalpel Handle x 2 | Steris | 22-2381 | |
| Curved Hemostat | WPI | 501288 | |
| Atraumatic Forceps | Sklar | 52-5077 | |
| Gauze | Medline | NON21430LF | |
| 11-Blade | Steris | 02-050-011 | |
| Surgicel | Ethicon | 1951 | |
| 3-0 PDS / Taper | Ethicon | Z305H | |
| 4 – 0 Vicryl / Cutting | Ethicon | J392H | |
| 40 micron strainer | BD | 352340 | |
| 50 mL conical tube | Thermo Fisher | 339652 | |
| plastic pipette | Thomas Scientific | HS206371B | |
| Centrifuge | Sorvall | 75004240 | |
| 1.40mL Tubes (Internal Thread) | Micronic | MP32131-Z20 | |
| 3-F VSI Micro-HV Introducer Kit | Vascular Solutions | Custom Order (P15180391) | |
| .018 45-degree angle glidewire | Terumo | RG*GA1818SA | |
| Direxion bern-shape microcatheter | Boston Scientific | M001195230 | |
| Omnipaque | GE | Y510 |
Riferimenti
- Rous, P., Beard, J. W. The Progression To Carcinoma of Virus-Induced Rabbit Papillomas (Shope). The Journal of Experimental Medicine. 62 (4), 523-548 (1935).
- Kidd, J. G., Rous, P. A transplantable rabbit carcinoma originating in a virus-induced papilloma and containing the virus in masked or altered form. The Journal of Experimental Medicine. 71 (6), 813-838 (1940).
- Galasko, C. S. B., Muckle, D. S. Intrasarcolemmal proliferation of the vx2 carcinoma. British Journal of Cancer. 29 (1), 59-65 (1974).
- Maruyama, H., et al. Sonographic shift of hypervascular liver tumor on blood pool harmonic images with definity: Time-related changes of contrast-enhanced appearance in rabbit VX2 tumor under extra-low acoustic power. European Journal of Radiology. 56 (1), 60-65 (2005).
- Horkan, C., et al. Radiofrequency Ablation: Effect of Pharmacologic Modulation of Hepatic and Renal Blood Flow on Coagulation Diameter in a VX2 Tumor Model. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 15 (3), 269-274 (2004).
- Bimonte, S., et al. Induction of VX2 para-renal carcinoma in rabbits: generation of animal model for loco-regional treatments of solid tumors. Infectious Agents and Cancer. 11 (1), 1-8 (2016).
- Goldberg, S. N., Gazelle, G. S., Compton, C. C., Mueller, P. R., McLoud, T. C. Radio-frequency tissue ablation of VX2 tumor nodules in the rabbit lung. Academic Radiology. 3 (11), 929-935 (1996).
- Rhee, T. K., et al. Rabbit VX2 Tumors as an Animal Model of Uterine Fibroids and for Uterine Artery Embolization. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 18 (3), 411-418 (2007).
- Parvinian, A., Casadaban, L. C., Gaba, R. C. Development, growth, propagation, and angiographic utilization of the rabbit VX2 model of liver cancer: A pictorial primer and "how to" guide. Diagnostic and Interventional Radiology. 20 (4), 335-340 (2014).
- Xia, X., et al. Intra-arterial interleukin-12 gene delivery combined with chemoembolization: Anti-tumor effect in a rabbit hepatocellular carcinoma (HCC) model. Acta Radiologica. 54 (6), 684-689 (2013).
- Gaba, R. C., et al. Ethiodized oil uptake does not predict doxorubicin drug delivery after chemoembolization in VX2 liver tumors. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 23 (2), 265-273 (2012).
- Choi, Y. H., et al. Novel Intraarterial Therapy for Liver Cancer Using Ethylbromopyruvate Dissolved in an Iodized Oil. Academic Radiology. 18 (4), 471-478 (2011).
- Ma, H. L., Xu, Y. F., Qi, X. R., Maitani, Y., Nagai, T. Superparamagnetic iron oxide nanoparticles stabilized by alginate: Pharmacokinetics, tissue distribution, and applications in detecting liver cancers. International Journal of Pharmaceutics. 354 (1-2), 217-226 (2008).
- Wang, D., et al. Liver tumors: Monitoring embolization in rabbits with VX2 tumors -Transcatheter intraarterial first-pass perfusion MR imaging. Radiology. 245 (1), 130-139 (2007).
- Bimonte, S., et al. Radio-frequency ablation-based studies on VX2rabbit models for HCC treatment. Infectious Agents and Cancer. 11 (1), (2016).
- Gaba, R., Obeid, M., Khabbaz, R., Garcia, K., Schachtschneider, K. Translational Animal Models for Liver Cancer. American Journal of Interventional Radiology. 2 (2), 1-8 (2018).
- Kuszyk, B. S., et al. Local tumor recurrence following hepatic cryoablation: radiologic-histopathologic correlation in a rabbit model. Radiology. 217 (2), 477-486 (2000).
- Geschwind, J., et al. Chemoembolization of Liver Tumor in a Rabbit Model Assessment of Tumor Cell Death with Diffusion-Weighted MR Imaging and Histologic Analysis. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 11 (10), 1245-1255 (2000).
- Virmani, S., et al. Comparison of Two Different Methods for Inoculating VX2 Tumors in Rabbit Livers and Hind Limbs. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 19 (6), 931-936 (2008).
- Seldinger, S. I. Catheter replacement of the needle in percutaneous arteriography: A new technique. Acta Radiologica. 49 (SUPPL 434), 47-52 (2008).
- Schook, L. B., et al. A genetic porcine model of cancer. PLoS One. 10 (7), e0128864 (2015).
