Summary

올레산의 Tripeptide 안정 Nanoemulsion

Published: February 27, 2019
doi:

Summary

이 프로토콜 lysine-티로신-페닐알라닌 (KYF) tripeptide로 안정 된 올레 acids-platinum(II) 공액 nanoemulsion 합성 하는 효율적인 방법을 설명 합니다. 된 KYF는 공액의 자기 조립을 통해 가벼운 합성 조건에서 nanoemulsion 양식.

Abstract

Nanoemulsion 올레 acids-Pt(II) 코어와 리-티로신-페닐알라닌 (KYF) 코팅 (KYF-Pt-네브라스카)를 생산 하는 방법을 설명 합니다. KYF-Pt-NE Pt(II) 10 wt. %에 캡슐화, 107 ± 27 및 부정적인 표면 충전의 직경. KYF-Pt-NE 안정적인 물과 혈 청, 이며 생물학적으로 활성. KYF에 fluorophore의 활용 생물 학적 영상에 적합 한 형광 nanoemulsion의 합성을 허용 한다. nanoemulsion의 합성 수성 환경, 그리고 짧은 KYF 펩타이드와 올레 acids-platinum(II) 공액의 자기 조립을 통해 KYF-Pt-NE 형태에서 수행 됩니다. 자기 집합 프로세스 솔루션의 온도, 기판의 어 금 니 비율 및 기판 추가의 흐름 속도에 따라 다릅니다. 중요 한 단계 등 합성 중 최적의 교 반 속도 유지, 자기 조립, 충분 한 시간을 허용 미리 원심 집중 장치에는 nanoemulsion 점차적으로 집중.

Introduction

최근 몇 년 동안, 나노 약물 전달 및 bioimaging1,2,,34이러한 생물 의학 응용 프로그램에 대 한의 공학에 관심을 증가 되었습니다. 나노 기반 시스템의 많은 자주 통합 한 배합 내의 여러 구성 요소를 필요로 합니다. 종종 지질 또는 고분자에 기반한 빌딩 블록 다 그들의 물리 화학적 특성으로 그들의 생체 적합성 및 biodegradability, 궁극적으로 nanostructure1, 의 기능에 영향을 미칠 수 있습니다 5,6. 단백질 및 펩 티 드, 등 생물학 파생된 자료 오래 그들의 시퀀스 유연성7,8인 다기능 nanostructures의 유망 부품으로 인정 되었습니다. 높은 순서 supramolecular 아키텍처 헬리컬 형성으로 자기 조립 하는 펩 티 드 리본9,10, 섬유 건설 기계11,12, 그리고 더 많은, 따라서 건물에 방법을 포장 하단-최대를 사용 하 여 biomolecule 기반 하이브리드 nanostructures13접근.

의학 및 생명 공학, 특히 항 암 제 치료14 와 심혈 관 질환15 뿐만 서 항생제 개발16,17, 대사에 대 한 응용 프로그램에 대 한 펩 티 드 탐험 되어 장애18, 그리고 감염19. 작은 펩 티 드 치료제 임상 시험20받고 백 이상 있다. 펩 티 드 들 수정 하 고 저렴 한 비용에 합성 빠른 있습니다. 또한, 그들은 생 분해성는 크게 그들의 생물 학적 및 제약 응용 프로그램21,22를 용이 하 게. 구조 부품으로 펩 티 드를 사용 하 여 포함 반응, 펩타이드 기반 나노 입자의 제어 릴리스23,,2425,26 히드로 플랫폼 공학 , 27, 펩타이드 기반 바이오 센서28,,2930,31또는 바이오 전자 장치32,,3334. 중요 한 것은, 페닐알라닌을 포함 하는 2 개 또는 3 개의 아미노 산 성 잔류물을 가진 조차 짧은 펩 티 드 가이드 발견 됐다는 자기 조립35,,3637 를 처리 하 고 안정 된 유화38 만들 .

혼자와 함께 다른 에이전트39,40백 금 기반의 약물, 그들의 높은 효 험 때문 많은 암 치료 regimens에 사용 됩니다. 백 금 화합물 monoadducts 및 intrastrand 또는 interstrand 크로스 링크를 형성 하 여 DNA 손상 유도. Pt-DNA 병 변 세포 기계 장치에 의해 인식 되 고, 복구 하지 세포 apoptosis. Pt(II) 암 세포 죽음에 기여 하는 가장 중요 한 메커니즘은 DNA 전사41,42의 억제. 그러나, 백 금 치료의 혜택은 심각한 부작용을 유발 하는 Pt(II)의 조직의 독성에 의해 점감 된다. Pt(II)43, DNA에 도달 플래티넘의 하위 치료 농도 수시로 귀착되는의 낮은 임상 투약을이 끈다. 결과적으로 DNA 수리 Pt(II) 저항을 취득 하 고 암 세포 생존에 기여 한다. 플래티넘 항 암 치료 저항 항 암 제 치료와 치료 실패44,45의 주요 원인에 중요 한 문제입니다.

우리 조직의 순환에 차폐 효과 제공 하 고 Pt II 유발 부작용을 줄이기 위해 Pt(II) 에이전트를 캡슐화 하는 안정적인 nanosystem를 개발 했습니다. 시스템은 KYF tripeptide nanoemulsion (KYF-Pt-네브라스카)46를 가진 안정 된 올레 acids-Pt(II) 코어를 기반으로 합니다. KYF-Pt-네브라스카, 올레산는 tripeptide의 아미노산의 구성 요소는 식품 및 의약품 안전 청 (FDA) 일반적으로 인정으로 안전 (그 라) 상태. KYF-Pt-NE47nanoprecipitation 메서드 사용 하 여 준비가 되어 있습니다. 즉, 올레 acids-Pt(II) 공액 유기 용 매에 녹아 있는 고 dropwise KYF 용액 (그림 1) 37 ° c.에 추가 솔루션은 KYF-Pt-니의 자기 조립을 허용 몇 시간 동안 흔들 nanoemulsion 10 kDa 원심 집중 장치에 집중 하 고 물으로 세 번 세척. fluorophore와 KYF의 화학 수정 형광 FITC-KYF-Pt-NE의 합성을 바이오 메디컬 이미징에 대 한 적합 한 수 있습니다.

Protocol

1입니다. 올레산 Acids–Platinum(II) 공액의 합성 Cisplatin의 활성화 60 ° c.에 물 (예를들면, nanopure)의 4 ml cisplatin의 50 밀리 그램 (0.167 mmol)을 일시 중단 Cisplatin의 솔루션을 물 0.5 ml에서 AgNO3 dropwise 55.2 mg (0.325 mmol)을 추가 하 고 60 ° c.에 적어도 2 시간에 대 한 반응을 저 어 AgCl의 흰색 침전 반응의 진행을 나타내는 형성할 것 이다. 10%와 테스트를 수행 하는 경우 활성?…

Representative Results

KYF-Pt-NE이이 프로토콜을 사용 하 여 준비의 가장 대표 이미지는 그림 2A에 표시 됩니다. KYF-Pt-NEs 형태학, 잘 분산에 구형 하 고 균일 한 크기에 있습니다. KYF-Pt-NEs, 200 측정, 최소 3 편 이미지에서 직접 측정의 핵심 직경 107 ± 27 nm 이다. KYF-Pt-네브라스카, 동적 빛 분광학 (DL)을 사용 하 여 분석의 유체역학 직경 240 발견 되었다 0.156의 증가할수록 인덱스 nm….

Discussion

Nanoemulsion 합성에 중요 한 단계는 기판의 어 금 니 비율 조정, 등 올레 acids–Pt(II) 추가 중 온도 흐름 속도 제어를 유지, 자기 조립, 충분 한 시간을 제공 하는 제품을 사용 하 여 정화를 원심 농축 기 열입니다. 이러한 매개 변수는 크기 KYF-Pt-NE;의 형태에 영향 따라서, 특히 적절 한 어 금 니 비율을 유지 하 고 합성 상태를 올바르게 조정 하는 것이 중요 하다.

Nanoemulsion 합성 (3 단?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

우리는 기꺼이 SC2CA206194 부여 국립 암 연구소에서 재정 지원을 인정 합니다. 아니 경쟁 금융 관심 선언 됩니다.

Materials

2-(1H-benzotriazole-1-yl)-1,1,3,3-tetramethyluronium
tetrafluoroborate (TBTU)
ANASPEC INC.: AS-20376 SPPS
4-well chamber confocal dish Lab-Tek II, Thermo Fisher Scientific 154526 For imaging
6-bromohexanoic acid Chem-Impex INT’L INC. 24477 Click modification for peptide
A2780 Generously doanted by professor John Martignetti from The Mount Sinai Hospital Ovarian cancer cell line
Barnstead Nanopure Thermo Fisher D11901 water filtration system
BUCHI rotavapor R-3 Buchi Z568090 For solvent removal and sample drying
Centrifuge 5810 R eppendorf 5811F For platinum complex separation
Cis-dichlorodiamineplatinum (II) 99% Acros Organics 19376-0050 in vitro tests
CP70 Generously doanted by professor John Martignetti from The Mount Sinai Hospital Ovarian cancer cell line
Digital water bath VWR 97025-134 For warming up media for cell culture
Dynamic Light Scattering (DLS) Brookhaven Instrument Corporation For nanoparticle size measurments
ES-2 ATCC CRL-1978 ovarian cancer cell line
Fmoc-L-Lys(Boc)-OH 99.79% Chem-Impex INT’L INC. 00493 SPPS
Fmoc-L-Phe 4-alkoxybenzyl alcohol resin (0.382 meq/g), Chem-Impex INT’L INC. 01914 SPPS
Fmoc-LTyr(tBu)-OH 98% Alfa Aesar H59730 SPPS
HERACELL 150i CO2 incubator Thermo Scientific Fisher incubator
High pressure syringe pump New Era 1010-US For platinum complex addition in nanoparticle synthesis
Hotplate/stirrer VWR 12365-382 For sample stirring and heating
LAMP-1 Antibody(cojugated with Alexa Fluor 647) Santa Cruz Biotechnology sc-18821 AF647 For imaging
N,N-diisopropylethylamine (DIPEA) Oakwood Chemical 005027 SPPS
Ninhydrin 99% Alfa Aesar A10409 Kaiser test
Oleic acid Chem-Impex INT’L INC. 01421 For platinum complex synthesis
OV90 ATCC CRL-11732 Ovarian cancer cell line
PBS Corning 21-031-CV For cell wash
Permount mounting medium Fisher Chemical SP15-100 For imaging
Phenol Fisher Chemical A92500 Kaiser test
Phosphotungstic acid Fisher Chemical A248-25 negative stain for TEM
Piperidine 99% BTC 219260-2.5L SPPS
Platinum AAS standard soultion Alfa Aesar 88086 1000ug/ml for calibration curve
Propargyl bromide 97% Alfa Aesar L10595 For alkyne modification of fluoresceine
Scientific biological cabinet Thermo Scientific Fisher 1385 Bio-hood for cell culture
Self-Cleaning Vacuum System Welch 2028 Vacuum pump for rotavapor
Silver nitrate Acros Organics 19768-0250 Cisplatin activation
SKOV3 ATCC HTB-77 Ovarian cancer cell line
Sodium hydroxide Fisher Scientific S313-1 For platinum complex synthesis
Tin (II) chloride Sigma Aldrich 208256 Test for Platinum presence
TOV21G ATCC CRL-11730 Ovarian cancer cell line
Trifluoroacetic acid 99% (TFA) Alfa Aesar L06374 SPPS
Triisopropylsilane (TIPS) Chem-Impex INT’L INC. 01966 SPPS
Triton-X Sigma Aldrich T8787-100ML For imaging
Uranine powder 40% Fisher Scientific S25328A For alkyne modification of fluoresceine
Vivaspin 20 (10000 MWCO) Sartorious VS2001 For Nanoparticle wash and condensation
VWR Inverted Microscope VWR 89404-462 For cell culture monitoring

Riferimenti

  1. Agrahari, V., Agrahari, V., Mitra, A. K. Nanocarrier fabrication and macromolecule drug delivery: challenges and opportunities. Therapeutic Delivery. 7 (4), 257-278 (2016).
  2. Anselmo, A. C., Mitragotri, S. Nanoparticles in the clinic. Bioengineering & Translational Medicine. 1 (1), 10-29 (2016).
  3. Peer, D., Karp, J. M., Hong, S., Farokhzad, O. C., Margalit, R., Langer, R. Nanocarriers as an emerging platform for cancer therapy. Nature Nanotechnology. 2 (12), 751-760 (2007).
  4. Roy Chowdhury, M., Schumann, C., Bhakta-Guha, D., Guha, G. Cancer nanotheranostics: Strategies, promises and impediments. Biomedicine & Pharmacotherapy. 84, 291-304 (2016).
  5. Jeevanandam, J., Chan, Y. S., Danquah, M. K. Nano-formulations of drugs: Recent developments, impact and challenges. Biochimie. , 99-112 (2016).
  6. Meerum Terwogt, J. M., Groenewegen, G., Pluim, D., Maliepaard, M., Tibben, M. M., Huisman, A., ten Bokkel Huinink, W. W., Schot, M., Welbank, H., Voest, E. E., Beijnen, J. H., Schellens, J. M. Phase I and pharmacokinetic study of SPI-77, a liposomal encapsulated dosage form of cisplatin. Cancer Chemotherapy and Pharmacology. 49 (3), 201-210 (2002).
  7. Fan, Z., Sun, L., Huang, Y., Wang, Y., Zhang, M. Bioinspired fluorescent dipeptide nanoparticles for targeted cancer cell imaging and real-time monitoring of drug release. Nature Nanotechnology. 11 (4), 388-394 (2016).
  8. Jeong, Y., et al. Enzymatically degradable temperature-sensitive polypeptide as a new in-situ gelling biomaterial. Journal of Controlled Release. 137 (1), 25-30 (2009).
  9. Uesaka, A., et al. Morphology control between twisted ribbon, helical ribbon, and nanotube self-assemblies with his-containing helical peptides in response to pH change. Langmuir. 30 (4), 1022-1028 (2014).
  10. Hwang, W., Marini, D. M., Kamm, R. D., Zhang, S. Supramolecular structure of helical ribbons self-assembled from a B-sheet peptide. Journal of Chemical Physics. 118 (1), 389-397 (2003).
  11. Svobodova, J., et al. Poly(amino acid)-based fibrous scaffolds modified with surface-pendant peptides for cartilage tissue engineering. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 11 (3), 831-842 (2017).
  12. Kumar, V. A., et al. Highly angiogenic peptide nanofibers. ACS Nano. 9 (1), 860-868 (2015).
  13. Romera, D., Couleaud, P., Mejias, S. H., Aires, A., Cortajarena, A. L. Biomolecular templating of functional hybrid nanostructures using repeat protein scaffolds. Biochemical Society Transactions. 43 (5), 825-831 (2015).
  14. Medina, S. H., Schneider, J. P. Cancer cell surface induced peptide folding allows intracellular translocation of drug. Journal of Controlled Release. 209, 317-326 (2015).
  15. Recio, C., Maione, F., Iqbal, A. J., Mascolo, N., De Feo, V. The Potential Therapeutic Application of Peptides and Peptidomimetics in Cardiovascular Disease. Frontiers in Pharmacology. 7, 526 (2016).
  16. McCarthy, K. A., et al. Phage Display of Dynamic Covalent Binding Motifs Enables Facile Development of Targeted Antibiotics. Journal of the American Chemical Society. 140 (19), 6137-6145 (2018).
  17. Lazar, V., et al. Antibiotic-resistant bacteria show widespread collateral sensitivity to antimicrobial peptides. Nature Microbiology. 3 (6), 718-731 (2018).
  18. Czeczor, J. K., McGee, S. L. Emerging roles for the amyloid precursor protein and derived peptides in the regulation of cellular and systemic metabolism. Journal of Neuroendocrinology. 29 (5), (2017).
  19. Branco, M. C., Sigano, D. M., Schneider, J. P. Materials from peptide assembly: towards the treatment of cancer and transmittable disease. Current Opinion in Chemical Biology. 15 (3), 427-434 (2011).
  20. Cheetham, A. G., et al. Targeting Tumors with Small Molecule Peptides. Current Cancer Drug Targets. 16 (6), 489-508 (2016).
  21. Ndinguri, M. W., Solipuram, R., Gambrell, R. P., Aggarwal, S., Hammer, R. P. Peptide targeting of platinum anti-cancer drugs. Bioconjugate Chemistry. 20 (10), 1869-1878 (2009).
  22. Eskandari, S., Guerin, T., Toth, I., Stephenson, R. J. Recent advances in self-assembled peptides: Implications for targeted drug delivery and vaccine engineering. Advanced Drug Delivery Reviews. 110, 169-187 (2017).
  23. Zhou, J., Du, X., Yamagata, N., Xu, B. Enzyme-Instructed Self-Assembly of Small D-Peptides as a Multiple-Step Process for Selectively Killing Cancer Cells. Journal of the American Chemical Society. 138 (11), 3813-3823 (2016).
  24. Sun, J. E., et al. Sustained release of active chemotherapeutics from injectable-solid beta-hairpin peptide hydrogel. Biomaterials Science. 4 (5), 839-848 (2016).
  25. Lock, L. L., Reyes, C. D., Zhang, P., Cui, H. Tuning Cellular Uptake of Molecular Probes by Rational Design of Their Assembly into Supramolecular Nanoprobes. Journal of the American Chemical Society. 138 (10), 3533-3540 (2016).
  26. Kalafatovic, D., Nobis, M., Son, J., Anderson, K. I., Ulijn, R. V. MMP-9 triggered self-assembly of doxorubicin nanofiber depots halts tumor growth. Biomaterials. 98, 192-202 (2016).
  27. Frederix, P. W., et al. Exploring the sequence space for (tri-)peptide self-assembly to design and discover new hydrogels. Nature Chemistry. 7 (1), 30-37 (2015).
  28. Horsley, J. R., et al. Photoswitchable peptide-based ‘on-off’ biosensor for electrochemical detection and control of protein-protein interactions. Biosensors and Bioelectronics. 118, 188-194 (2018).
  29. Hoyos-Nogues, M., Gil, F. J., Mas-Moruno, C. Antimicrobial Peptides: Powerful Biorecognition Elements to Detect Bacteria in Biosensing Technologies. Molecules. 23 (7), 1683 (2018).
  30. Xiao, X., et al. Advancing Peptide-Based Biorecognition Elements for Biosensors Using in-Silico Evolution. ACS Sensors. 3 (5), 1024-1031 (2018).
  31. Puiu, M., Bala, C. Peptide-based biosensors: From self-assembled interfaces to molecular probes in electrochemical assays. Bioelectrochemistry. 120, 66-75 (2018).
  32. Wang, J., et al. Developing a capillary electrophoresis based method for dynamically monitoring enzyme cleavage activity using quantum dots-peptide assembly. Electrophoresis. 38 (19), 2530-2535 (2017).
  33. Etayash, H., Thundat, T., Kaur, K. Bacterial Detection Using Peptide-Based Platform and Impedance Spectroscopy. Methods in Molecular Biology. 1572, 113-124 (2017).
  34. Handelman, A., Apter, B., Shostak, T., Rosenman, G. Peptide Optical waveguides. Journal of Peptide Science. 23 (2), 95-103 (2017).
  35. Chen, C., Liu, K., Li, J., Yan, X. Functional architectures based on self-assembly of bio-inspired dipeptides: Structure modulation and its photoelectronic applications. Advances in Colloid and Interface Science. 225, 177-193 (2015).
  36. Reddy, S. M., Shanmugam, G. Role of Intramolecular Aromatic pi-pi Interactions in the Self-Assembly of Di-l-Phenylalanine Dipeptide Driven by Intermolecular Interactions: Effect of Alanine Substitution. Chemphyschem. 17 (18), 2897-2907 (2016).
  37. Marchesan, S., et al. Unzipping the role of chirality in nanoscale self-assembly of tripeptide hydrogels. Nanoscale. 4 (21), 6752-6760 (2012).
  38. Scott, G. G., McKnight, P. J., Tuttle, T., Ulijn, R. V. Tripeptide Emulsifiers. Advanced Materials. 28 (7), 1381-1386 (2016).
  39. Galanski, M., Jakupec, M. A., Keppler, B. K. Update of the preclinical situation of anticancer platinum complexes: novel design strategies and innovative analytical approaches. Current Medicinal Chemistry. 12 (18), 2075-2094 (2005).
  40. Wheate, N. J., Walker, S., Craig, G. E., Oun, R. The status of platinum anticancer drugs in the clinic and in clinical trials. Dalton Transactions. 39 (35), 8113-8127 (2010).
  41. Oberoi, H. S., Nukolova, N. V., Kabanov, A. V., Bronich, T. K. Nanocarriers for delivery of platinum anticancer drugs. Advanced Drug Delivery Reviews. 65 (13-14), 1667-1685 (2013).
  42. Fichtinger-Schepman, A. M., van Oosterom, A. T., Lohman, P. H., Berends, F. cis-Diamminedichloroplatinum(II)-induced DNA adducts in peripheral leukocytes from seven cancer patients: quantitative immunochemical detection of the adduct induction and removal after a single dose of cis-diamminedichloroplatinum(II). Ricerca sul cancro. 47 (11), 3000-3004 (1987).
  43. Englander, E. W. DNA damage response in peripheral nervous system: coping with cancer therapy-induced DNA lesions. DNA Repair. 12 (8), 685-690 (2013).
  44. Galluzzi, L., et al. Molecular mechanisms of cisplatin resistance. Oncogene. 31 (15), 1869-1883 (2012).
  45. Boeckman, H. J., Trego, K. S., Turchi, J. J. Cisplatin sensitizes cancer cells to ionizing radiation via inhibition of nonhomologous end joining. Molecular Cancer Research. 3 (5), 277-285 (2005).
  46. Dragulska, S. A., et al. Tripeptide-Stabilized Oil-in-Water Nanoemulsion of an Oleic Acids-Platinum(II) Conjugate as an Anticancer Nanomedicine. Bioconjugate Chemistry. 29 (8), 2514-2519 (2018).
  47. Martinez Rivas, ., J, C., et al. Nanoprecipitation process: From encapsulation to drug delivery. International Journal of Pharmaceutics. 532 (1), 66-81 (2017).
  48. Agilent Technologies. . Analytical Methods for Graphite Tube Atomizers, User’s Guide Manual, 8th edition. , (2012).
  49. Park, S. Y., et al. A smart polysaccharide/drug conjugate for photodynamic therapy. Angewandte Chemie. 50 (7), 1644-1647 (2011).
  50. Canton, I., Battaglia, G. Endocytosis at the nanoscale. Chemical Society Reviews. 41 (7), 2718-2739 (2012).
  51. Lokich, J., Anderson, N. Carboplatin versus cisplatin in solid tumors: an analysis of the literature. Annals of Oncology. 9 (1), 13-21 (1998).
check_url/it/59034?article_type=t

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Citazione di questo articolo
Dragulska, S. A., Wlodarczyk, M. T., Poursharifi, M., Martignetti, J. A., Mieszawska, A. J. A Tripeptide-Stabilized Nanoemulsion of Oleic Acid. J. Vis. Exp. (144), e59034, doi:10.3791/59034 (2019).

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