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Articolo metodologico

Iniezione diretta di un vettore lentivirale evidenzia più vie motorie del midollo spinale del ratto

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DOI:

10.3791/59160

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15 marzo 2019

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In questo articolo

Sommario

Questo protocollo dimostra iniezione di un vettore virale retrogradely trasportabile nel tessuto del midollo spinale del ratto. Il vettore è preso alla sinapsi e trasportato al corpo cellulare dei neuroni bersaglio. Questo modello è adatto per l'analisi retrograda di importanti vie spinali o cellule targeting per applicazioni di terapia genica.

Abstract

L'introduzione di proteine di interesse nella cellule nel sistema nervoso è impegnativo a causa delle barriere biologiche innate che limitano l'accesso alla maggior parte delle molecole. Iniezione direttamente nel tessuto del midollo spinale ignora queste barriere, fornendo accesso ai corpi cellulari o sinapsi dove molecole possono essere incorporati. Combinando la tecnologia di vettore virale con questo metodo consente di introduzione di geni bersaglio in tessuto nervoso ai fini della terapia genica o la traccia del tratto. Qui un virus progettato per trasporto retrogrado altamente efficiente (HiRet) è stato introdotto alle sinapsi di interneuroni propriospinal (PNs) per incoraggiare il trasporto specifico ai neuroni nel midollo spinale e dei nuclei del tronco cerebrale. Targeting PNs sfrutta le numerose connessioni che ricevono da vie del motore come i tratti nucleo e reticulospinal, nonché la loro interconnessione con a vicenda durante segmenti del midollo spinale. Rappresentante l'analisi utilizzando il vettore HiRet con dettagli di alta fedeltà spettacoli costitutivamente attiva proteina fluorescente verde (GFP) di corpi cellulari, assoni e pergole dendritiche in PNs toracica e in neuroni di reticulospinal nella formazione reticolare di Pontina. HiRet incorpora bene nella vie del tronco cerebrale e PNs ma mostra età dipendente integrazione nei neuroni del tratto corticospinale. In sintesi, l'iniezione del midollo spinale usando vettori virali è un metodo adatto per introduzione di proteine di interesse in neuroni dei tratti mirati.

Introduzione

Vettori virali sono importanti strumenti biologici che possono introdurre materiale genetico nelle cellule al fine di compensare i geni difettosi, proteine di sovraregolare l'importante crescita o fabbricare proteine marker che mettono in risalto la struttura e le connessioni sinaptiche del loro obiettivi. Questo articolo si concentra su iniezione diretta di un vettore lentivirale retrogradely trasportabile altamente efficiente nel midollo spinale del ratto al fine di evidenziare le principali vie del motore con l'analisi fluorescente.  Questo metodo è anche molto adatto per studi di rigenerazione e la ricrescita assonali per introdurre le proteine di interesse in div....

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Protocollo

Tutte le seguenti procedure di cura chirurgica e animale sono state approvate dalla cura degli animali e uso Comitato della Temple University.

1. pre-operatoria preparazioni

  1. Preparare il vetro tirato aghi per iniezione virale pochi giorni prima dell'intervento chirurgico utilizzando pipette capillari 3,5 in vetro nanolitro progettati per nanolitro iniettori. Tirare ogni pipetta un estrattore di ago in due fasi secondo le istruzioni del produttore per creare due modelli di aghi.
  2. Affinare la punta dei modelli dell'ago con il taglio da circa 1-2 mm di vetro in eccesso con microforbici. Misura approssimativa apertura dimensi....

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Risultati

Iniezione di successo e di trasporto del vettore virale dovrebbe comportare di trasduzione di una popolazione robusta dei neuroni unilaterale nel midollo spinale ed in alcuni nuclei del tronco cerebrale. Figura 1 di seguito viene illustrato l'etichettatura stereotipata dei neuroni ed assoni nel midollo spinale toracico e nella formazione reticolare Pontina del tronco cerebrale ad post-iniezione quattro settimane. Espressione significativa di GFP è visto in neuroni in mate.......

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Discussione

Manipolazione genetica dei neuroni nel cervello e nel midollo spinale è servito ad evidenziare sensoriali, motorie e autonomiche vie tramite l'analisi fluorescente e di esplorare il potenziale di ricrescita dei tratti neuronale dopo lesione27,28, 29 , 30 , 31 , 32 , 33. diretto iniezione di .......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Ringraziamenti

Quest'opera è stata finanziata da una sovvenzione dal Istituto nazionale dei disordini neurologici e colpo R01 R01NS103481 e Shriners Hospital per la ricerca pediatrica concede SHC 84051 e SHC 86000 e il dipartimento della difesa (SC140089).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
#10 Lame per bisturiRobozRS-9801-10Da utilizzare con il bisturi.
Siringhe da 1 ml Becton, Dickinson and CompanyPer l'iniezione di IP anestetico, potenziali richiami anestetici e iniezioni di antibiotici.
Siringhe da 10 ml Becton, Dickinson and Company309604Per l'iniezione di soluzione salina nell'animale, dopo l'intervento chirurgico.
Sutura cromica 4.0 CatgutDemeTECHNN374-16Per rilegare il muscolo durante la chiusura.
48000 Smussatrice per micropipetteWorld Precision Instruments32416Utilizzato per smussare le punte dei tubi capillari di vetro tirati per formare aghi di vetro funzionali.
Soluzione di iodio al 5%Purdue Products L.P.L01020-08Per l'uso nella sterilizzazione del sito chirurgico.
70% EtanoloN/AN/APer la sterilizzazione di aghi di vetro appena preparati, modelli animali durante la preparazione chirurgica e mani del chirurgo durante l'intervento chirurgico, nonché per tutti gli altri piccoli mantenuti di sterilità.
Anestetico (soluzione di ketamina/xilazina)Zoetis240048Per mantenere l'animale nel corretto piano di coscienza durante l'intervento chirurgico.
Antibiotico (Cefazolina)West-Ward PharmaceuticalsNPC 0143-9924-90Da iniettare per via sottocutanea per prevenire l'infezione post-operatoria.
Sterilizzatore di perlineCellPoint5-1450Per sterilizzare a caldo gli strumenti chirurgici.
BonewaxFine Science Tools19009-00Per sigillare l'osso in caso di sanguinamento osseo.
CauterizzatoreFine Science Tools18010-00Per sigillare eventuali arterie o vene recise durante l'intervento chirurgico per prevenire un'eccessiva perdita di sangue.
Bilancia digitaleOkausREV.005Per pesare l'animale durante la preparazione chirurgica.
Attacco flessibile dell'agoWorld Precision InstrumentsMF34G-5Per la pulizia degli aghi di vetro e il caricamento di olio rosso negli aghi di vetro.
GelfoamPfizerH68079Per sigillare l'osso in caso di sanguinamento osseo.
Tubi capillari in vetroWorld Precision Instruments4878Per aghi in vetro tirati - dovrebbe essere progettato per iniettori di nanolitri.
TagliacapelliOster111038-060-000Per liberare il sito chirurgico dai capelli.
EmostaticiRobozRS-7231Per uso generale in chirurgia.
KimwipesKimtech34155Per uso generale in chirurgia.
Pinze curve a punta mediaRobozRS-5136Per uso generale in chirurgia.
Micromanipolatore con scala a corsoioKanetecN/APer un puntamento preciso durante l'intervento chirurgico.
MicroforbiciRobozRS-5621Per tagliare i fili di vetro dai tubi capillari di vetro appena tirati.
Microscopio con luce e scala a corsoio Oculare LeitzWetzlarN/AUtilizzato per visualizzare e misurare la smussatura di tubi capillari di vetro tirati in aghi di vetro funzionali.
Controller per pompe a microsiringaWorld Precision Instruments62403Per controllare la velocità di iniezione.
Iniettore della testa della pompa Nanoliter 2000World Precision Instruments500150Per caricare e iniettare virus in modo controllato.
Estrattore per aghiNarishigePC-100Per riscaldare e separare i tubi capillari di vetro per formare aghi di vetro.
Unguento oftalamicoDechra Veterinary ProductsRAC 0119Per proteggere gli occhi dell'animale durante l'intervento chirurgico.
ParafilmBemisPM-996Per aiutare a caricare il virus nel nanoiniettore.
Aghi PrecisionGlide (25G x 5/8)Becton, Dickinson and Company305122Da utilizzare con le siringhe da 1 ml e 10 ml per consentire l'iniezione del modello animale.
Pinze per denti di rattoRobozRS-5152Per la presa di processi spinosi.
Red OilN/AN/APer fornire un fronte per la visualizzazione del virus che entra nel tessuto durante l'iniezione.
DivaricatoriRobozRS-6510Per tenere aperta la ferita chirurgica.
Rimadyl CompresseBio ServMP275-050Per la gestione del dolore post-operatorio.
RongeursRobozRS-8300Per rimuovere il muscolo dalla colonna vertebrale durante l'intervento chirurgico.
Manico a lama di bisturiRobozRS-9843Per affettare la pelle aperta e il cuscinetto adiposo di un modello animale durante l'intervento chirurgico.
ForbiciRobozRS-5980Per uso generale in chirurgia.
Clip per ferite in acciaio inossidabileCellPoint201-1000Per legare la pelle della ferita chirurgica durante la chiusura.
Pinze per la rimozione delle graffetteKent ScientificINS750347Per rimuovere le graffette, se applicate in modo errato.
Panno sterilePhenix Research ProductsBP-989Per fornire una superficie sterile per l'operazione.
Applicatori sterili con punta in cotonePuritan806-WCPer assorbire il sangue nella ferita chirurgica mantenendo la sterilità.
Garza SterileCovidien2146Per pulire l'area chirurgica e gli strumenti chirurgici mantenendo la sterilità.
Soluzione salina sterileBaxter Healthcare Corporation281324Per l'uso nella pulizia del sangue e per la sostituzione dei liquidi dopo l'intervento chirurgico.
Guanti chirurgiciN/AN/APer l'uso da parte del chirurgo per mantenere il campo sterile durante l'intervento chirurgico.
Cuscinetto riscaldante chirurgicoN/AN/APer mantenere la temperatura corporea del modello animale durante l'intervento chirurgico.
Microscopio operatorioN/AN/APer una migliore visualizzazione della ferita chirurgica.
Suturatrice chirurgicaKent ScientificINS750546Per applicare le graffette.
Pompa dell'acqua per terapia del calore T / PumpGaymarTP500CPer pompare acqua calda nel cuscinetto riscaldante per convezione dell'acqua.
Cuscinetto riscaldante a convezione d'acquaBaxter Healthcare CorporationL1K018Per l'uso nell'area di recupero post-operatoria per mantenere la temperatura corporea dell'animale incosciente.
Ganci ponderatiN/AN/APer tenere aperta la ferita chirurgica.
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Riferimenti

  1. Wang, X., et al. Deconstruction of corticospinal circuits for goal-directed motor skills. Cell. 171 (2), 440-455 (2017).
  2. Kinoshita, M., et al. Genetic dissection of the circuit for hand dexterity in primates. Nature. 487 (7406), 235-238 (2012).

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Ristampe e permessi

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