Hier presenteren we een ex-vivo gemengd monolaag cultuur systeem voor de studie van Human glioom Cell (HGC) migratie in real-time. Dit model biedt de mogelijkheid om interacties tussen Hgc’s en zowel myelinehoudende als niet-myelinehoudende axonen in een gecompartimenteerde kamer te observeren.
Glioblastoma is een van de meest agressieve menselijke kankers als gevolg van uitgebreide cellulaire heterogeniteit en de migratie-eigenschappen van hGCs. Om de moleculaire mechanismen voor de onderliggende glioom Cell migratie beter te begrijpen, is een vermogen om de interactie tussen Hgc’s en axonen binnen de tumor micro omgeving te bestuderen essentieel. Om deze cellulaire interactie te modelleren, ontwikkelden we een gemengd cultuur systeem bestaande uit hGCs en dorsale wortel ganglia (DRG) axon-oligodendrocyte co-culturen. DRG-culturen werden geselecteerd omdat ze efficiënt geïsoleerd kunnen worden en de lange, uitgebreide projecties kunnen vormen die ideaal zijn voor migratie studies van deze aard. Gezuiverde rat oligodendrocyten werden vervolgens toegevoegd aan gezuiverde rat DRG axonen en geïnduceerd aan myelinaat. Na het bevestigen van de vorming van compacte myeline, werden Hgc’s uiteindelijk toegevoegd aan de co-cultuur en hun interacties met DRG axonen en oligodendrocyten werd in real-time gemonitord met behulp van timelapse-microscopie. Onder deze omstandigheden vormen Hgc’s tumor-achtige geaggregeerde structuren die GFAP en Ki67 uitdrukken, migreren langs zowel myelgefluoreerde als niet-myelotische axonale tracks en communiceren met deze axonen door de vorming van pseudopodia. Ons ex vivo-co-cultuur systeem kan worden gebruikt om nieuwe cellulaire en moleculaire mechanismen van hGC-migratie te identificeren en kan mogelijk worden gebruikt voor in-vitro geneesmiddelen werkzaamheids testen.
Glioblastoma is een van de meest agressieve en dodelijke tumoren van het menselijk brein. De huidige standaard voorzorg omvat chirurgische resectie van de tumor gevolgd door straling1 plus gelijktijdige en adjuvante toediening van temozolomide2. Zelfs met deze multi-therapeutische aanpak, tumor herhaling is onvermijdelijk3. Dit is deels te wijten aan de uitgebreide migratie aard van de tumorcellen, die de hersen parenchym het creëren van meerdere vinger-achtige projecties binnen de hersenen4 die volledige resectie onwaarschijnlijk maken.
In de afgelopen jaren is het duidelijk geworden dat de agressiviteit van multiform glioblastoom deels te wijten is aan de aanwezigheid van een populatie van kanker stamcellen binnen de tumor massa6,5, dieeen hoog migratie potentieel vertonen7,8, resistentietegen chemotherapie en straling9,10 en de mogelijkheid om secundaire tumoren te vormen11. GSCs zijn geschikt voor het recapituleren van originele polyklonale tumoren bij xenografted aan naakte muizen5.
Ondanks de rijkdom aan kennis met betrekking tot de genetische achtergrond van glioblastomas, worden studies over glioom Cell (GC) migratie momenteel gehinderd door een gebrek aan efficiënte in vitro of in vivo migratie modellen. Met name, terwijl glioom Cell-axonale interacties gemoduleerd door cellulaire en omgevingsfactoren zijn een kerncomponent van glioom invasie, naar onze kennis is er momenteel geen experimenteel systeem met de mogelijkheid om het model van deze interacties12,13,14. Om dit gebrek aan te pakken, ontwikkelden we een ex vivo cultuur systeem van primaire hGCs co-gekweekt met gezuiverde DRG axon-oligodendrocyten die resulteert in verhoogde expressie van gedifferentieerde tumormarkers evenals uitgebreide migratie en interactie van Hgc’s met myelfluoren niet-myelgefluoreerde vezels. Dit ex vivo platform, vanwege zijn gecompartimengd lay-out, is geschikt voor het testen van de effecten van nieuwe Therapeutics op hGC-migratiepatronen.
Migratie studies voor Hgc’s kunnen worden uitgevoerd met behulp van Boyden Chamber Systems of Scratch assays. Echter, terwijl deze experimenten niet om enige informatie met betrekking tot de interacties van tumorcellen met andere omringende weefsels geven, het huidige systeem kan GC interacties met myelineerde en niet-myelinehoudende vezels recapituleren. Bovendien, om tumorvorming en eindpunt migratie te bestuderen, zijn organotypische segment culturen van het knaagdier brein of in vivo implantatie van glioom cellen in …
The authors have nothing to disclose.
Dit werk werd ondersteund door interne fondsen van het Department of neuro Surgery, Brown University to N.T.
100 mm Suspension Culture Dish | Corning | 430591 | |
2.5S NGF | ENVIGO | B.5025 | |
60 mm Suspension Culture Dish | Corning | 430589 | |
ACK Lysing Buffer | Thermo Fisher | A1049201 | |
Ammonium Hydroxide Solution | Fisher Scientific | A669-500 | Concentrated |
Animal-Free Recombinant Human EGF | Peprotech | AF-100-15 | |
Animal-Free Recombinant Human FGF-basic (154 a.a.) | Peprotech | AF-100-18B | |
Anti-A2B5 MicroBeads, human, mouse, rat | Miltenyi Biotec | 130-093-392 | |
Antibiotic-Antimycotic (100X) | Thermo Fisher | 15240062 | |
AutoMACS Rinsing Solution (PBS, pH 7.2) | Miltenyi Biotec | 130-091-222 | |
B27 Supplement | Thermo Fisher | 17504044 | |
B27 Supplement, minus vitamin A | Thermo Fisher | 12587001 | |
Bacteriological Plate | BD Falcon | 351029 | |
Biotin | Sigma | B4639 | |
BSA | Sigma | A9418 | |
Campenot Chamber | Tyler Research | CAMP-10 | |
Cell Culture Dish | Corning | 430165 | 35mm X 10mm |
Cell Strainer | BD Falcon | 352350 | 70 uM, Nylon |
Cell Strainer | BD Falcon | 352340 | 30 uM, Nylon |
Collagenase/Dispase | Roche | 11097113001 | |
Cultrex Rat Collagen I | Trevigen | 3440-100-01 | |
D-Glucose | Sigma | G5146 | |
DMEM | Thermo Fisher | 10313021 | |
DNase I | Sigma | D7291 | |
Dow Corning High-Vacuum Grease | Fisher Scientific | 14-635-5D | |
Dumont #5 Forceps | Roboz | RS-5045 | |
E16 Timed Pregnant Sprague Dawley Rat | |||
EBSS | Sigma | E7510 | |
EGTA | Sigma | E3889 | |
FBS | Hyclone | SH30070.02 | |
FUDR | Sigma | F0503 | |
GlutaMAX Supplement | Thermo Fisher | 35050061 | |
Ham's F-12 Nutrient Mix | Thermo Fisher | 11765054 | |
HBSS | Thermo Fisher | 14175095 | |
Hemostatic Forceps | Roboz | RS-7035 | |
Heparin Sodium Salt, 0.2% in PBS | Stem Cell Technologies | 07980 | |
Hypodermic Needle, 18G | BD | 511097 | |
Insulin-Transferrin-Selenium G | Thermo Fisher | 41400045 | |
L-Cysteine | Sigma | C7477 | |
L-Glutamine | Thermo Fisher | 25030081 | |
Leibovitz's L-15 Medium | Thermo Fisher | 11415064 | |
MACS BSA Stock Solution | Miltenyi Biotec | 130-091-376 | |
MACS MultiStand | Miltenyi Biotec | 130-042-303 | |
MEM | Thermo Fisher | 1190081 | |
Mg2SO4 | Sigma | M2643 | |
MiniMACS Separator | Miltenyi Biotec | 130-042-102 | |
MS Columns plus tubes | Miltenyi Biotec | 130-041-301 | |
NAC | Sigma | A8199 | |
NaHCO3 | Sigma | S5761 | |
Neurobasal Medium | Thermo Fisher | 21103049 | |
Neurobasal-A Medium | Thermo Fisher | 10888022 | |
Ordinary forceps | |||
P2 Sprague Dawley Rat Pups | |||
Papain | Worthington | LS003126 | |
Penicillin-Streptomycin | Thermo Fisher | 15140148 | |
Pin Rake | Tyler Research | CAMP-PR | |
Progesterone | Sigma | P8783 | |
StemPro Accutase Cell Dissociation Reagent | Thermo Fisher | A1110501 | |
Syrine Grease Applicator | Tyler Research | CAMP-GLSS | |
Transferrin | Sigma | T2036 | |
Uridine | Sigma | U3003 |