Summary

Свиная модель инфрагенной абдоминальной аневризмы аорты

Published: November 21, 2019
doi:

Summary

Эта новая модель создает надежные инфрагенные аневризмы брюшной аорты у свиней, используя комбинацию воздушной ангиопластики, эластазной/коллагеназной перфузии, местного применения эластаз, а также перорального соединения – аминопропионитрила, что мешает коллагену перекрестное соединение.

Abstract

Большие модели животных для изучения аневризмы брюшной аорты редки. Целью этой модели является создание воспроизводимых, клинически значимых инфрагенных аневризм брюшной аорты (AAA) у свиней. Для достижения этой цели мы используем комбинацию агиопластики воздушного шара, эластазы и коллагеназы, а также ингибитора оксидазы лисил, называемого «аминопропионитрил» (BAPN), для создания клинически значимых инфрагенных аортальных авризм, аналогичного болезням человека.

Некастые самцы свиней кормят BAPN в течение 7 дней до операции для достижения устойчивого состояния в крови. Проводится лапаротомия средней линии и инфрагенная аорта вокружно расчленяется. Первоначальные измерения регистрируются до индукции аневризмы с сочетанием воздушной ангиопластики, эластазной (500 единиц)/коллагеназы (8000 единиц) перфузии и местного применения эластаза. Свиней кормят BAPN ежедневно до терминальной процедуры либо на послеоперационный день 7, 14 или 28, в это время измеряется аневризма, и ткани закуплены. BaPN и хирургии свиней по сравнению со свиньями, которые прошли операцию в одиночку.

Свинья лечение с BAPN и хирургии было среднее расширение аорты 89,9% и 47,4% на 7-й день, 105,4% и 58,1% в день 14, и 113,5% и 30,2% в день 28. Свиньи, обработанные только хирургическим вмешательством, имели значительно меньшие аневризмы по сравнению с BAPN и хирургическими животными на 28-й день (p qlt; 0.0003). Группа baPN и хирургии была макроскопических и иммуногистохимических доказательств аневризмальной болезни конечной стадии.

Клинически значимый инфрагенный ААА может быть индуцирован с помощью воздушного шара ангиопластики, эластаза / коллагеназы перфузии и актуальное применение, дополненный устные BAPN. Эта модель создает большие, клинически значимые ААА с признаками болезни человека. Это имеет важные последствия для выяснения патогенеза ААА и тестирования новых методов лечения и устройств для лечения ААА. Ограничения модели включают вариации в BAPN попадает свиней, качество перфузии эластаза, и стоимость BAPN.

Introduction

По данным Центра по контролю заболеваний (CDC), аневризмы аорты (АА) являются ведущей причиной смерти в Соединенных Штатах и представляют собой значительное бремя болезни1. Аневризма аорты определяется как расширение дискретной части просвета сосуда более чем на 50%2. Подмножество АА в животе, называется брюшной аневризмы аорты (AAA) являются растущей проблемой. AAA остаются клинически молчать до надвигающегося разрыва или вскрытия, с острым началом, сильные боли в животе, как правило, только представляя симптом3,4. Разрыв ААА почти всегда приводит к летальному исходу со смертностью 90%5. Открытая или эндоваскулярная хирургия является единственным терапевтическим вариантом для пациентов, и может быть очень болезненным процедурой. Важно отметить, что ААА является одним из немногих сердечно-сосудистых заболеваний без медицинской терапии для лечения.

На сегодняшний день большая часть исследований по патогенез AAA была сосредоточена на моделях грызунов, используя эластаза, которая является ферментом, который деградирует эластина, найденного в аортальном носителе, чтобы вызвать аневризмы. 6,7 Однако, клиническая переносимость мелких моделей животных к человеческой аневризмальной болезни ограничена, так как оценка структурных изменений в аорте, и измененная гемодинамика ограничена из-за размера. Из-за анатомического и размера сходства, свиная кровеносная система коррелирует лучше с человеческой биологией, чем грызуны8. Крупные модели животных позволяют более глубоко понять клеточные механизмы процесса заболевания, могут быть использованы разработка новых методов лечения в терапевтических дозах для крупных млекопитающих, а также тестировать механические ремонтные устройства, которые не были бы осуществимы в небольших моделях животных. Кроме того, острый характер моделей грызунов не повторяет хронику и патологические характеристики аневризма заболевания человека.

Сочетание эластази и соединения под названием “аминопропионитрил” (BAPN) произвело революцию в моделях murine AAA, создавая аневризмы, которые крупнее и содержат сиквелы хронической аневризмализальной болезни, включая тромб фрески, рассечение и разрыв9. BAPN является ингибитором лисил оксидазы, которая необходима для коллагена перекрестные, важнейший компонент стенки аорты10,11,12. Активность лисилоксидаза снижается с возрастом и с учетом связи возраста и хронический характер сложных АА, BAPN имеет большой потенциал, чтобы экспериментально имитировать последствия старения9,13,14. Использование BAPN и его способность реплицировать хронические заболевания в подострохи настройки предлагает новое преимущество по сравнению с альтернативными крупными моделями животных AAA. По сравнению с другими установленными свиными моделями AAA, эта модель создает крупнейшие аневризмы с признаками заболевания конечной стадии, и результаты были ранее опубликованы8,11,15.

При предоставлении определенных преимуществ для успешного завершения этой модели требуются значительные ресурсы и инвестиции, которые могут отпугнуть некоторых исследователей. К числу этих ресурсов относятся доступ в операционные, квалифицированных хирургов и анестезиологов, жилье для животных и ветеринарный персонал для оказания помощи в послеоперационном уходе. Кроме того, стоимость BAPN может быть непомерно дорогим для некоторых лабораторий.

Немногие большие модели животных существуют для изучения сложной патофизиологии образования ААА и перевода на болезнь человека. Большие модели животных ААА имеют решающее значение для оценки жизнеспособности новых технологий и методов лечения заболеваний человека. Таким образом, цель этого исследования заключается в создании воспроизводимой модели продвинутой стадии инфрагенных ААА у свиней. Обоснование использования BAPN и эластазы свиной модели заключается в том, чтобы лучше понять патофизиологию ААА, имитируя хронический характер и сиквел ы человеческой аневризмальной болезни в острой или подостройной обстановке, а также проверить новые методы лечения и устройства для ААА Лечения.

Protocol

Протоколы о животных были одобрены Институциональным комитетом по уходу и использованию животных Университета Вирджинии (No 3848). ПРИМЕЧАНИЕ: Эта модель была ранее опубликована Cullen et al. и представляет собой измененный протокол, описанный Hynecek et al.8,<sup class="…

Representative Results

Все статистические анализы были выполнены с использованием Фишер точного теста или chi квадрат тест по мере необходимости. Значения данных регистрируются как среднее расширение аорты (%) и стандартное отклонение (%). Статистическая значимость была установлена P злт; 0.05. Сочетание BAPN и хир?…

Discussion

Новая модель инфрагенного ААА у свиней была создана с использованием комбинации воздушного шара ангиопластики, перфузии и актуальных эластаза, и диетические как BAPN. Используя эту модель, расширение аорты в размере 100% было достигнуто с валовой и гистологических характеристик хроничес?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы благодарим Энтони Херринга и Синди Додсон за их знания и технический опыт.

Источники финансирования:
Финансирование этого исследования было предоставлено Национальным институтом сердца, легких и крови Национального института здравоохранения в соответствии с премией No. T32HL007849 и Грант Нос. R01HL081629-07 (G.R.U.) и R01HL124131-01 (G.R.U.).

Materials

Arrow Ergo Pack System Arrow CDC-21242-X1A Just need 7 Fr dilator
Atlas PTA Balloon dilation catheter Bard AT-120184 16 mm x 4 cm x 120 cm
Bovie electrocautery Bovie Medical A2350
Collagenase Type 1 (5 gm) Worthington LS004196
Crile Needle drviers MFI medical 61-2201
DeBakey Atraumatic Forceps MFI medical 52-4977
DeBakey Peripheral Vascular Clamp Medline MDS1318119
Glidewire Terumo Interventional Systems GS3506 outer Wire diameter 0.035 mm, Length 150 cm
GraphPad Prism 6 GraphPad Software Inc. La Jolla, Calif) statistical software
Metzenbaum Scissors MFI medical 61-0004
Mayo-Hegar Needle Holder tiger medical N407322
Micropuncture Introducer Set Cook G47946
Mixter Forceps, Standard Grade, Right angle Cole-Parmer UX-10818-16
Monocryl suture Ethicon Y496G-BX 4-0 monocryl
PDS II suture Ethicon D8926 Number 1 looped
Porcine Pancreatic Elastase Sigma-Aldrich E0258-50 MG
Satinsky Vascular Clamps Medline MDs5632515
Suction canister Cardinal Health 65651212
Schuco Aspirator MFI medical S430A
Vicryl suture Ethicon J789D-SD 2-0 vicryl
Yankauer Suction tube Sklarcorp 07-1801

Riferimenti

  1. . Leading Causes of Death Reports, National and Regional, 1999 – 2016 Available from: https://webappa.cdc.gov/sasweb/ncipc/leadcause.html (2018)
  2. Erbel, R., et al. Diagnosis and management of aortic dissection. European Heart Journal. 22 (18), 1642-1681 (2001).
  3. Cameron, J., Cameron, J. . Current Surgical Therapy 11th edition. 11, 777-783 (2014).
  4. . Overview of abdominal aortic aneurysm Available from: https://www.uptodate.com/contents/overview-of-abdominal-aortic-aneurysm (2017)
  5. Pearce, W. H., Zarins, C. K., Bacharach, J. M. Atherosclerotic Peripheral Vascular Disease Symposium II: controversies in abdominal aortic aneurysm repair. Circulation. 118 (25), 2860-2863 (2008).
  6. Daugherty, A., Cassis, L. A. Mouse models of abdominal aortic aneurysms. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 24 (3), 429-434 (2004).
  7. Anidjar, S., et al. Elastase-induced experimental aneurysms in rats. Circulation. 82 (3), 973-981 (1990).
  8. Hynecek, R. L., et al. The creation of an infrarenal aneurysm within the native abdominal aorta of swine. Surgery. 142 (2), 143-149 (2007).
  9. Lu, G., et al. A novel chronic advanced stage abdominal aortic aneurysm murine model. Journal of Vascular Surgery. 66 (1), 232-242 (2017).
  10. Barrow, M. V., Simpson, C. F., Miller, E. J. Lathyrism: a review. The Quarterly Review of Biology. 49 (2), 101-128 (1974).
  11. Coulson, W. F., Linker, A., Bottcher, E. Lathyrism in swine. Archives of Pathology & Laboratory Medicine. 87 (4), 411-417 (1969).
  12. McCallum, H. M. Experimental Lathyrism in Mice. The Journal of Pathology and Bacteriology. 89, 625-636 (1965).
  13. Behmoaras, J., et al. Differential expression of lysyl oxidases LOXL1 and LOX during growth and aging suggests specific roles in elastin and collagen fiber remodeling in rat aorta. Rejuvenation Research. 11 (5), 883-889 (2008).
  14. Davies, I., Schofield, J. D. Connective tissue ageing: the influence of a lathyrogen (beta-aminopropionitrile) on the life span of female C57BL/Icrfat mice. Experimental Gerontology. 15 (5), 487-494 (1980).
  15. Cullen, J. M., et al. A novel swine model of abdominal aortic aneurysm. Journal of Vascular Surgery. , (2018).
  16. Marinov, G. R., et al. Can the infusion of elastase in the abdominal aorta of the Yucatan miniature swine consistently produce experimental aneurysms. Journal of Investigative Surgery. 10 (3), 129-150 (1997).
  17. Pope, N. H., et al. Interleukin-6 Receptor Inhibition Prevents Descending Thoracic Aortic Aneurysm Formation. Annals of Thoracic Surgery. 100 (5), 1620-1626 (2015).
  18. Johnston, W. F., et al. Genetic and pharmacologic disruption of interleukin-1beta signaling inhibits experimental aortic aneurysm formation. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 33 (2), 294-304 (2013).
  19. Johnston, W. F., et al. Inhibition of interleukin-1beta decreases aneurysm formation and progression in a novel model of thoracic aortic aneurysms. Circulation. 130 (11), 51-59 (2014).
  20. Ruddy, J. M., Jones, J. A., Spinale, F. G., Ikonomidis, J. S. Regional heterogeneity within the aorta: relevance to aneurysm disease. Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 136 (5), 1123-1130 (2008).
check_url/it/60169?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Shannon, A. H., Cullen, J. M., Dahl, J. J., Scott, E. J., Tyerman, Z., Spinosa, M. D., Montgomery, W. G., Johnston, W. F., Lu, G., Salmon, M., Ailawadi, G., Upchurch Jr., G. R. Porcine Model of Infrarenal Abdominal Aortic Aneurysm. J. Vis. Exp. (153), e60169, doi:10.3791/60169 (2019).

View Video