Summary

In situ övervakning av transitivt bildade molekylär Chaperone församlingar i bakterier, jäst, och mänskliga celler

Published: September 02, 2019
doi:

Summary

Cognate J-Domain proteiner samarbetar med Hsp70 förkläde för att hjälpa till i en myriad av biologiska processer som sträcker sig från proteinvikning till nedbrytning. Här beskriver vi en in situ närhet ligering assay, som gör det möjligt att övervaka dessa transitivt bildade förkläde maskiner i bakteriell, jäst och mänskliga celler.

Abstract

J-Domain proteiner (JDPs) utgör den största och mest varierande Co-Chaperone familjen i eukaryotiska celler. De senaste rönen visar att specifika medlemmar av JDP-familjen kan bilda transienta heterokomplex hos Eukaryoter för att finjustera substrat valet för 70 kDa-värmechockprotein (HSP70) chaperonbaserat protein disaggregas. Den JDP komplex mål akut/kronisk stress inducerade aggregerade proteiner och förmodligen hjälpa till att montera disaggregas genom att rekrytera flera Hsp70s till ytan av protein aggregat. Omfattningen av den protein Quality Control (PQC) nätverk som bildas av dessa fysiskt samverkande JDPs fortfarande i stort sett okarakteriserad in vivo. Här beskriver vi en mikroskopi-baserad in situ protein interaktionsanalys som heter Proximity ligering assay (PLA), som kan kraftfullt fånga dessa transitivt bildade förkläde komplex i olika cellulära avdelningar av eukaryota celler. Vårt arbete utökar sysselsättningen av PLA från mänskliga celler till jäst (Saccharomyces cerevisiae) och bakterier (Escherichia coli), vilket gör ett viktigt verktyg för att övervaka dynamiken i transitivt bildade protein sammansättningar i både prokaryotika och eukaryotiska celler.

Introduction

En stor mängd genomisk information förblir oöversättliga på grund av vår ofullständiga förståelse av cellulära interactomes. Konventionella protein-protein interaktion detektionsmetoder såsom protein Co-immunoprecipitation med/utan kemisk tvärbindning och protein Co-lokalisering, men ofta används, utgör en rad nackdelar. Några av de största nackdelarna är dålig kvantifiering av interaktioner och potentiella införandet av icke-Native bindande händelser. I jämförelse, framväxande närhets-baserade tekniker ger ett alternativ och en kraftfull metod för att fånga proteininteraktioner i celler. Proximity ligering assay (PLA)1, som nu finns som ett egenutvecklat kit, använder antikroppar för att specifikt rikta proteinkomplex baserat på närheten av de samverkande subenheterna.

PLA initieras av bildandet av en byggnadsställning bestående av primära och sekundära antikroppar med små DNA-Taggar (PLA sonder) på ytan av det riktade protein komplexet (figur 1, steg 1-3). Nästa, bestäms av närheten av DNA-taggar, en cirkulär DNA-molekyl genereras via hybridisering med kontakt oligonukleotides (figur 1, steg 4). Bildandet av cirkulär DNA kompletteras av ett DNA ligeringsteg. Den nybildade cirkulära bit av DNA fungerar som en mall för den efterföljande rullande cirkel amplifiering (RCA)-baserade polymeras kedjereaktion (PCR) Primas av en av de konjugerade oligonukleotide taggar. Detta genererar en enkelsträngad concatemeric DNA-molekyl fäst vid protein komplexet via antikropps ställningen (figur 1, steg 6). Den concatemeric DNA-molekylen visualiseras med hjälp av fluorescerande märkta oligonukleotides som hybridiserar till flera unika sekvenser spridda över det förstärkta DNA (figur 1, steg 7)2. Den genererade PLA-signalen, som visas som en fluorescerande punkt (figur 1, steg 7), motsvarar placeringen av det riktade protein komplexet i cellen. Som ett resultat, analysen kunde upptäcka proteinkomplex med hög spatial noggrannhet. Tekniken är inte begränsad till att helt enkelt fånga proteininteraktioner, men kan också utnyttjas för att upptäcka enstaka molekyler eller proteinmodifieringar på proteiner med hög känslighet1,2.

Hsp70 bildar en mycket mångsidig förkläde system fundamentalt viktigt för att upprätthålla cellulära protein homeostas genom att delta i en rad hushållning och stressrelaterade funktioner. Housekeeping aktiviteter av Hsp70 förkläde systemet inkluderar de Novo proteinvikning, protein flyttning över cellulära membran, montering och demontering av proteinkomplex, reglering av protein aktivitet och länka olika protein Folding/ kvalitetskontroll maskiner3. Samma förkläde systemet refolds också felvikt/vecklade proteiner, förhindrar protein aggregation, främjar protein uppdelning och samarbetar med cellulära proteaser för att försämra oboskt missvecklade/skadade proteiner för att underlätta cellulära reparation efter proteotoxiska spänningar4,5. För att uppnå denna funktionella mångfald, den Hsp70 förkläde förlitar sig på samarbetar Co-Chaperones av JDP familjen och nukleotid utbyta faktorer (Nefs) att finjustera Hsp70’s ATP-beroende Alloster kontroll av substrat bindning och release3, 6. Vidare, JDP Co-Chaperones spela en viktig roll i valet av substrat för denna mångsidiga förkläde systemet. Medlemmarna i denna familj är indelade i tre klasser (A, B och C) baserat på deras strukturella homologi till prototypen JDP, E. coli dnaj. Klass A JDPs innehåller en N-Terminal J-domän, som samverkar med Hsp70, en glycin-fenylalanin rik region, ett substrat bindande region bestående av en zink finger-liknande region (ZFLR) och två β-Barrel domäner, och en C-Terminal Dimerization domän. JDPs med en N-Terminal J-domän och en glycin-fenylalanin rik region, men saknar ZFLR, falla i klass B. I allmänhet är medlemmar i dessa två klasser inblandade i chaperoning funktioner. Medlemmar som omfattas av catchall klass C, som innehåller JDPs att endast dela J-domän4, rekrytera Hsp70s att utföra en mängd icke-chaperoning funktioner. Den viktiga roll JDPs som utbytbara substrat erkännande “adaptrar” av Hsp70 systemet återspeglas av en utvidgning av familjemedlemmar under evolutionen. Till exempel har människor över 42 distinkta JDP medlemmar4. Dessa jdps fungerar som monomerer, homodimers och/eller homo/hetero oligomerer4,5. Nyligen, ett funktionellt samarbete via övergående komplex formation mellan klass A (t. ex., H. sapiens DNAJA2; S. cerevisiae Ydj1) och klass B (t. ex., H. sapiens DNAJB1; S. cerevisiae Sis1) eukaryotisk jdps rapporterades att främja ett effektivt erkännande av amorfa protein aggregat in vitro-7,8. Dessa blandade klass JDP komplex förmodligen samlas på ytan av aggregerade proteiner för att underlätta bildandet av Hsp70-och Hsp70 + Hsp100-baserade protein disaggregas7,8,9, 10. den kritiska bevisningen för att stödja förekomsten av dessa transitivt bildade blandad klass JDP-komplex i eukaryota celler TILLHANDAHÖLLS med PLA8.

PLA är alltmer anställd för att bedöma proteininteraktioner i Metazoa, främst i däggdjursceller. Här rapporterar vi en lyckad expansion av denna teknik för att övervaka transitivt bildade förkläde komplex i eukaryota och prokaryota encelliga organismer som spirande jäst S. cerevisiae och bakterien E. coli. Viktigt, denna expansion belyser den potentiella användningen av PLA att upptäcka och analysera mikrober som infekterar mänskliga och animaliska celler.

Protocol

1. HeLa cell förberedelse Förbered följande material: PBS (137 mM NaCl, 2,7 mM KCl, 10 mM na2HPO4, 1,8 mm KH2Po4), pH 7,4; DMEM, kompletterat med 10% FCS och 1% Pen-STREP; 4% PARAFORMALDEHYD i PBS; 0,5% Triton-X100 i PBS; TBS-T (150 mM NaCl, 20 mM Tris, 0,05% Tween), pH 7,4; 0,0001% steril Poly-L-lysin lösning; 10-Tja diagnostiska diabilder; en fuktig kammare; mjukpapper; och Coplin Slide-färgning burkar.Anmärkning: För att säkerställa op…

Representative Results

Våra tidigare in vitro-studier med renade proteiner visade att en delmängd av Human klass A och klass B JDPs bildar övergående blandade klass JDP-komplex för att effektivt kunna rikta ett brett spektrum av aggregerade proteiner och möjligen underlätta monteringen av Hsp70-baserade protein disaggregas7. Vi använde PLA för att avgöra om blandad klass (A + B) JDP komplex förekommer i mänskliga livmoderhalscancer celler (HeLa). Human JDPs DNAJA2 (klass A) och DNAJB1 (klass B) riktades mot …

Discussion

Co-immunoprecipitation och co-lokalisering baserade metoder har använts som långvariga metoder för att karakterisera protein assembler. Upptäckten av transitivt bildade specifika förkläde komplex är en stor utmaning med sådana konventionella metoder, och som ett resultat, tidigare fynd är till stor del begränsad till kvalitativa tolkningar. Den cell lysis-baserade Co-immunoprecipitation tekniker kräver ofta cross-linking att stabilisera protein-protein interaktioner. Cell Lys ökar risken för att störa tran…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

NBN stöds av ett särskilt rekryterings bidrag från Monash University medicinska omvårdnad och hälsovetenskaper med finansiering från delstatsregeringen i Victoria och den australiska regeringen. Vi tackar Bernd Bukau (ZMBH, Heidelberg University, Tyskland) och harm H. Kampinga (Institutionen för biomedicinsk vetenskap av celler & Systems, University of Groningen, Nederländerna) för deras ovärderliga stöd och utbyte av reagenser, Holger Lorenz (ZMBH Imaging Facility, Heidelbergs universitet, Tyskland) för sitt stöd med konfokalmikroskopi och bildbehandling, och Claire Hirst (ARMI, Monash University, Australien) för kritisk läsning av manuskriptet.

Materials

37% Formaldehyde Merck 103999
Acetone Sigma-Aldrich 32201
anti-DNAJA2 antibody Abcam ab157216
anti-DNAJB1 Antibody Enzo Life Sciences ADI-SPA-450
anti-DnaK antibody In house
anti-mCherry antibody Abcam ab125096
anti-Sis1 Antibody Cosmo Bio Corp COP-080051
anti-Ydj1 antibody StressMarq Biosciences  SMC-150,
anti-YFP antibody In house
Coplin slide-staining jar Sigma-Aldrich S5516
Diagnostic slides Marienfeld 1216530
DMEM Thermo-Fischer 31966021
DuoLink In Situ Detection Reagents Orange Sigma-Aldrich DUO92007
DuoLink In Situ Mounting Medium + DAPI Sigma-Aldrich DUO82040
DuoLink In Situ PLA Probe Anti-Mouse MINUS Sigma-Aldrich DUO92004
DuoLink In Situ PLA Probe Anti-Rabbit PLUS Sigma-Aldrich DUO92002
DuoLink In Situ Wash Buffers, Fluorescence Sigma-Aldrich DUO82049
Fetal Calf Serum Thermo-Fischer 10082147
Lysozyme Sigma-Aldrich 62971
Methanol Sigma-Aldrich 32213
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148
Penicillin/Streptomycin Thermo-Fischer 15070063
Poly-L-Lysine Sigma-Aldrich P47-07
Sorbitol Sigma-Aldrich S7547
Triton-X100 Merck 108643
Trypsin Thermo-Fischer 25300096
Tween-20 Sigma-Aldrich P1379
Zymolase 100T / / Lyticase United States Biological Z1004

References

  1. Soderberg, O., et al. Direct observation of individual endogenous protein complexes in situ by proximity ligation. Nature Methods. 3 (12), 995-1000 (2006).
  2. Weibrecht, I., et al. Proximity ligation assays: a recent addition to the proteomics toolbox. Expert Review of Proteomics. 7 (3), 401-409 (2010).
  3. Mayer, M. P., Gierasch, L. M. Recent advances in the structural and mechanistic aspects of Hsp70 molecular chaperones. Journal of Biological Chemistry. 294 (6), 2085-2097 (2019).
  4. Kampinga, H. H., Craig, E. A. The HSP70 chaperone machinery: J proteins as drivers of functional specificity. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 11 (8), 579-592 (2010).
  5. Nillegoda, N. B., Bukau, B. Metazoan Hsp70-based protein disaggregases: emergence and mechanisms. Frontiers in Molecular Biosciences. 2, (2015).
  6. Bracher, A., Verghese, J. The nucleotide exchange factors of Hsp70 molecular chaperones. Frontiers in Molecular Biosciences. 2, (2015).
  7. Nillegoda, N. B., et al. Crucial HSP70 co-chaperone complex unlocks metazoan protein disaggregation. Nature. 524 (7564), 247-251 (2015).
  8. Nillegoda, N. B., et al. Evolution of an intricate J-protein network driving protein disaggregation in eukaryotes. Elife. 6, (2017).
  9. Kirstein, J., et al. In vivo properties of the disaggregase function of J-proteins and Hsc70 in Caenorhabditis elegans stress and aging. Aging Cell. 16 (6), 1414-1424 (2017).
  10. Nillegoda, N. B., Wentink, A. S., Bukau, B. Protein Disaggregation in multicellular organisms. Trends in Biochemical Sciences. 43 (4), 285-300 (2018).
  11. Chae, C., Sharma, S., Hoskins, J. R., Wickner, S. CbpA, a DnaJ homolog, is a DnaK co-chaperone, and its activity is modulated by CbpM. Journal of Biological Chemistry. 279 (32), 33147-33153 (2004).
  12. Kityk, R., Kopp, J., Mayer, M. P. Molecular Mechanism of J-domain-Triggered ATP Hydrolysis by Hsp70 Chaperones. Molecular Cell. 69 (2), 227-237 (2018).
  13. Söderberg, O., et al. Characterizing proteins and their interactions in cells and tissues using the in situ proximity ligation assay. Methods. 45 (3), 227-232 (2008).
  14. Benschop, J. J., et al. A consensus of core protein complex compositions for Saccharomyces cerevisiae. Molecular Cell. 38 (6), 916-928 (2010).
  15. Jung, J., et al. Quantifying RNA-protein interactions in situ using modified-MTRIPs and proximity ligation. Nucleic Acids Research. 41 (1), (2013).
  16. Mocanu, M. M., Váradi, T., Szöllosi, J., Nagy, P. Comparative analysis of fluorescence resonance energy transfer (FRET) and proximity ligation assay (PLA). Proteomics. 11 (10), 2063-2070 (2011).
  17. Sekar, R. B., Periasamy, A. Fluorescence resonance energy transfer (FRET) microscopy imaging of live cell protein localizations. Journal of Cell Biology. 160 (5), 629-633 (2003).
  18. Deriziotis, P., Graham, S. A., Estruch, S. B., Fisher, S. E. Investigating protein-protein interactions in live cells using bioluminescence resonance energy transfer. Journal of Visualized Experiments. 87, (2014).
  19. Nagy, P., Szöllosi, J. Proximity or no proximity: that is the question – but the answer is more complex. Cytometry. 75 (10), 813-815 (2009).
  20. Hoetelmans, R. W., et al. Effects of acetone, methanol, or paraformaldehyde on cellular structure, visualized by reflection contrast microscopy and transmission and scanning electron microscopy. Applied Immunohistochemistry & Molecular Morphology. 9 (4), 346-351 (2001).
  21. Schnell, U., Dijk, F., Sjollema, K. A., Giepmans, B. N. Immunolabeling artifacts and the need for live-cell imaging. Nature Methods. 9 (2), 152-158 (2012).
  22. Stadler, C., Skogs, M., Brismar, H., Uhlen, M., Lundberg, E. A single fixation protocol for proteome-wide immunofluorescence localization studies. Journal of Proteomics. 73 (6), 1067-1078 (2010).
  23. Goldenthal, K. L., Hedman, K., Chen, J. W., August, J. T., Willingham, M. C. Postfixation detergent treatment for immunofluorescence suppresses localization of some integral membrane proteins. Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 33 (8), 813-820 (1985).
  24. Schrader, M., Almeida, M., Grille, S. Postfixation detergent treatment liberates the membrane modelling protein Pex11beta from peroxisomal membranes. Histochemistry & Cell Biology. 138 (3), 541-547 (2012).
  25. Willingham, M. C., Yamada, S. S., Pastan, I. Ultrastructural antibody localization of alpha2-macroglobulin in membrane-limited vesicles in cultured cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 75 (9), 4359-4363 (1978).
  26. Aguilar-Uscanga, B., Francois, J. M. A study of the yeast cell wall composition and structure in response to growth conditions and mode of cultivation. Letters in Applied Microbiology. 37 (3), 268-274 (2003).
  27. Romaniuk, J. A., Cegelski, L. Bacterial cell wall composition and the influence of antibiotics by cell-wall and whole-cell NMR. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 370, 1679 (2015).
  28. Salazar, O., Asenjo, J. A. Enzymatic lysis of microbial cells. Biotechnology Letters. 29 (7), 985-994 (2007).
  29. Cunningham, A. F., Spreadbury, C. L. Mycobacterial stationary phase induced by low oxygen tension: cell wall thickening and localization of the 16-kilodalton alpha-crystallin homolog. Journal of Bacteriology. 180 (4), 801-808 (1998).
  30. Werner-Washburne, M., Braun, E., Johnston, G. C., Singer, R. A. Stationary phase in the yeast Saccharomyces cerevisiae. Microbiological Reviews. 57 (2), 383-401 (1993).
check_url/60172?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Alberts, N., Mathangasinghe, Y., Nillegoda, N. B. In Situ Monitoring of Transiently Formed Molecular Chaperone Assemblies in Bacteria, Yeast, and Human Cells. J. Vis. Exp. (151), e60172, doi:10.3791/60172 (2019).

View Video