Summary

Opprette svært spesifikke kjemisk indusert protein Dimerization Systems av trinnvis Phage utvalg av Kombinatorisk single-Domain antistoff bibliotek

Published: January 14, 2020
doi:

Summary

Opprette kjemisk indusert protein dimerization systemer med ønsket affinitet og spesifisitet for et gitt lite molekyl ligand ville ha mange biologiske sensing og aktivering applikasjoner. Her beskriver vi en effektiv, generaliserings metode for de Novo engineering kjemisk indusert dimerization systemer via trinnvis utvalg av en phage Kombinatorisk ett domene antistoff bibliotek.

Abstract

Protein dimerization hendelser som forekommer bare i nærvær av et lite molekyl ligand muliggjøre utvikling av små molekyl biosensors for disseksjon og manipulering av biologiske veier. Foreløpig bare et begrenset antall kjemisk indusert dimerization (CID) systemer eksisterer og engineering nye med ønsket følsomhet og selektivitet for bestemte små-molekylet ligander fortsatt en utfordring innen protein engineering. Vi her beskriver en høy gjennomstrømming screening metode, combinatorial binders-eYLL svalg av Cid (kombinerer-CID), for de Novo engineering av Cid-systemer som gjelder for et stort utvalg av ligander. Denne metoden bruker to-trinns valg av et phage-viste Kombinatorisk nanobody bibliotek for å få 1) “anker bindemidler” som først binder til en ligand av interesse og deretter 2) “dimerization bindemidler” som bare binder til anker bindemiddel-ligand komplekser. For å velge anker bindemidler er et Kombinatorisk bibliotek med over 109 komplementaritet-fastsettelse (CDR)-randomisert nanobodies vist med en biotinylated ligand og treff valideres med umerkede ligand av bio-Layer LABORATORIEFASILITETER (bli). For å få dimerization bindemidler, nanobody biblioteket er vist med anker bindemiddel-ligand komplekser som mål for positiv screening og de ubundne anker bindemidler for negativ screening. KOMBINERER-CID er grovt aktuelt å velge CID-bindemidler med andre immunglobulin, ikke-immunglobulin eller beregningsmessig utformet stillaser for å skape biosensors for in vitro-og in vivo-deteksjon av legemidler, metabolitter, signalmolekyler osv.

Introduction

CID-systemer, der to proteiner dimerize bare i nærvær av et lite molekyl ligand (figur 1), tilbyr allsidige verktøy for dissekere og manipulere metabolske, signalering, og andre biologiske trasé1. De har vist potensialet i biologisk aktivering, som for eksempel stoff-kontrollerte T celle aktivering2 og apoptose,for å forbedre sikkerheten og effekten avadoptiv-tcelle terapi. I tillegg gir de en ny metodikk for in vivo eller in vitro deteksjon av små molekyl mål. For eksempel kan CID proteiner være genetisk smeltet sammen med fluorescens reporter systemer (f. eks, fluorescens resonans energi overføring (bånd)5 og sirkulært permuted fluorescerende proteiner)6 for sanntids in vivo målinger, eller tjene som affinitet reagenser for sandwich enzym-knyttet immunosorbentanalyse analysen (Elisa)-lignende analyser.

Til tross for deres brede bruksområder, har det å skape nye CID-systemer som kan styres av et gitt lite molekyl ligand store utfordringer. Etablert protein binder engineering metoder inkludert dyr immunisering7, in vitro utvalg8,9, og beregningsorientert protein design10 kan generere ligand bindende proteiner som fungerer via binære protein-ligand interaksjoner. Disse metodene har imidlertid vanskeligheter med å skape et ligand-indusert trefoldig CID-kompleks. Noen metoder skaper Cid av kjemisk linking av to ligander som uavhengig binder til samme eller forskjellige proteiner11,12,13,14,15,16 eller stole på å velge bindemiddel proteiner som antistoffer rettet mot eksisterende små molekyl-protein komplekser17,18, og dermed har et begrenset utvalg av ligander.

Vi har nylig utviklet en combinatorial binders-eYLL svalg av Cid (kombinerer-CID) metode for de Novo engineering av Cid systemer19. Denne metoden kan få den høye spesifisitet av ligand-indusert dimerization (f. eks en anker-dimerization bindemiddel dissosiasjon konstant, Kd (uten ligand)/Kd (med ligand) > 1 000). Den dimerization spesifisitet oppnås ved hjelp av anker bindemidler med fleksible bindende nettsteder som kan innføre conformational endringer ved ligand binding, noe som gir grunnlag for valg av conformationally selektive bindemidler bare erkjenner ligand-bundet anker bindemidler. Vi demonstrerte et proof-of-prinsipp ved å skape cannabidiol (CBD)-indusert heterodimerer av nanobodies, en 12-15 KDA funksjonelt antistoff fragment fra Kamelid bestående av et universelt stillas og tre fleksible CDR løkker (figur 2)20, som kan danne en bindende lomme med tilpasningsdyktige størrelser for små-molekyl epitopes21,22. Spesielt, in vitro utvalg av et Kombinatorisk protein bibliotek bør være kostnadseffektiv og generaliserings for CID engineering fordi det samme høykvalitets biblioteket kan brukes på ulike ligander.

I denne protokollen og video, fokuserer vi på å beskrive de to-trinns in vitro utvalg og validering av anker (Figur 3A) og Dimerization bindemidler (Figur 3B) ved screening Kombinatorisk nanobody biblioteket med et mangfold høyere enn 109 bruker CBD som et mål, men protokollen bør være gjeldende for andre protein biblioteker eller små-molekylet mål. Screening av CID bindemidler tar vanligvis 6 – 10 uker (Figur 4).

Protocol

1. bibliotek konstruksjon Bruk et syntetisk Kombinatorisk antistoff bibliotek med et mangfold av ~ 1.23 – 7.14 x 109, som tidligere beskrevet19. Selv om denne protokollen ikke inkluderer biblioteket konstruksjon, kan det brukes til andre Kombinatorisk bindemiddel biblioteker. 2. Biotinylation av ligand mål eller ligand Biotinylate den valgte ligand, for eksempel CBD og tetrahydrocannabinol (THC)19, via ulik…

Representative Results

Vi beskriver de to-trinns in vitro valg og validering av anker og dimerization bindemidler ved screening Kombinatorisk nanobody biblioteket med et mangfold høyere enn 109 bruker CBD som et mål. Vurdere berikelse av phage biopanning under suksessive runder av utvalget for både anker og dimerization bindemidler er viktig. Typiske berikelse resultater etter 4-6 runder av utvalget som vist i figur 5 er en god indikasjon på at det er en høy andel av potensielle treff i sublibrarie…

Discussion

Det er viktig å velge riktig konsentrasjoner av input phage biblioteker for ulike runder av biopanning. Vi vanligvis startet fra en input bibliotek av ~ 1012-1013 phage partikler med et mangfold > 109, slik at ~ 100-1000 eksemplarer av hver phage klone skal presenteres i pull-Down analysen. Hvis phage konsentrasjon i en bindende analysen er for høy eller lav, vil sannsynligheten for uspesifisert binding eller tap av positive kloner øke. Ankeret eller dimerization binder utvalget bestå…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av University of Washington Innovation Award (til L.G.), et stipend fra US National Institutes of Health (1R35GM128918 til L.G.), og en oppstart fondet av University of Washington (til L.G.). H.J. ble støttet av en Washington Research Foundation Undergraduate fellesskap. KW ble støttet av et universitets stipend fra University of Washington Institute for protein design.

Materials

1-Step Ultra TMB ELISA substrate solution Thermo Fisher Scientific 34029
Agar Thermo Fisher Scientific BP1423-2
Amicon Ultra-15 Centrifugal Filter unit (3 kDa cutoff) Millipore UFC900324
Ampicillin Thermo Fisher Scientific BP1760-25
Bio-Rad Protein Assay Kit II Bio-Rad 5000002
BirA biotin-protein ligase standard reaction kit Avidity BirA500
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma-Aldrich A2153-50G
Casein Sigma-Aldrich C7078-1KG
CM13 Helper phage Antibody Design Labs PH020L
D-(+)-Glucose monohydrate Alfa Aesar A11090
Dynabeads M-280 Streptavidin Thermo Fisher Scientific 11205D
DynaMag-2 Magnet Thermo Fisher Scientific 12321D
EDTA Thermo Fisher Scientific BP120-1
Fast DNA Ladder New England Biolabs N3238S
FastDigest BglI Thermo Fisher Scientific FD0074
Glycerol Thermo Fisher Scientific BP229-1
HiLoad 16/600 Superdex 200 pg GE Healthcare 28989335
HiPrep 26/10 Desalting Column GE Healthcare 17508701
HisTrap-FF-1ml GE Healthcare 11000458
Imidazole Alfa Aesar 161-0718
IPTG Thermo Fisher Scientific 34060
Kanamycin Thermo Fisher Scientific BP906-5
M13 Major Coat Protein Antibody Santa Cruz Biotechnology sc-53004
NaCl Sigma-Aldrich S3014-500G
NanoDrop 2000/2000c Spectrophotometers Thermo Fisher Scientific ND-2000
Nunc 96-Well Polypropylene DeepWell Storage Plates Thermo Fisher Scientific 260251
Nunc MaxiSorp Thermo Fisher Scientific 44-2404-21
Octet RED96 ForteBio N/A
pADL-23c Phagemid Vector Antibody Design Labs PD0111
PEG-6000 Sigma-Aldrich 81260-1KG
Platinum SuperFi DNA Polymerase Invitrogen 12351010
PureLink PCR Purification Kit Thermo Fisher Scientific K310001
QIAprep Spin M13 Kit Qiagen 27704
Recovery Medium Lucigen 80026-1
SpectraMax Plus 384 Molecular Devices N/A
Sucrose Sigma-Aldrich S0389-1KG
Super Streptavidin (SSA) Biosensors ForteBio 18-5057
Superdex 75 increase 10/300 GL Column GE Healthcare 28-9909-44
T4 DNA Ligase Thermo Fisher Scientific 15224-025
TG1 Electrocompetent Cells Lucigen 60502-1
Triethylamine Sigma-Aldrich 471283-100mL
Trizma Base Sigma-Aldrich T1503
Tryptone Thermo Fisher Scientific BP9726-5
Tween 20 Thermo Fisher Scientific BP337-500
Yeast Extract Thermo Fisher Scientific BP1422-2
Zeba Spin Desalting Column Thermo Fisher Scientific 89882

Riferimenti

  1. Stanton, B. Z., Chory, E. J., Crabtree, G. R. Chemically induced proximity in biology and medicine. Science. 359 (6380), (2018).
  2. Wu, C. Y., Roybal, K. T., Puchner, E. M., Onuffer, J., Lim, W. A. Remote control of therapeutic T cells through a small molecule-gated chimeric receptor. Science. 350 (6258), (2015).
  3. Straathof, K. C., et al. An inducible caspase 9 safety switch for T-cell therapy. Blood. 105 (11), 4247-4254 (2005).
  4. Di Stasi, A., et al. Inducible apoptosis as a safety switch for adoptive cell therapy. The New England Journal of Medicine. 365 (18), 1673-1683 (2011).
  5. Mank, M., et al. A FRET-based calcium biosensor with fast signal kinetics and high fluorescence change. Biophysical Journal. 90 (5), 1790-1796 (2006).
  6. Nagai, T., Sawano, A., Park, E. S., Miyawaki, A. Circularly permuted green fluorescent proteins engineered to sense Ca2+. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (6), 3197-3202 (2001).
  7. Hunter, M. M., Margolies, M. N., Ju, A., Haber, E. High-affinity monoclonal antibodies to the cardiac glycoside, digoxin. Journal of Immunology. 129 (3), 1165-1172 (1982).
  8. Bradbury, A. R. M., Sidhu, S., Dubel, S., McCafferty, J. Beyond natural antibodies: the power of in vitro display technologies. Nature Biotechnology. 29 (3), 245-254 (2011).
  9. Chen, G., et al. Isolation of high-affinity ligand-binding proteins by periplasmic expression with cytometric screening (PECS). Nature. Biotechnology. 19 (6), 537-542 (2001).
  10. Tinberg, C. E., et al. Computational design of ligand-binding proteins with high affinity and selectivity. Nature. 501 (7466), 212-216 (2013).
  11. Spencer, D. M., Wandless, T. J., Schreiber, S. L., Crabtree, G. R. Controlling signal transduction with synthetic ligands. Science. 262 (5136), 1019-1024 (1993).
  12. Ho, S. N., Biggar, S. R., Spencer, D. M., Schreiber, S. L., Crabtree, G. R. Dimeric ligands define a role for transcriptional activation domains in reinitiation. Nature. 382 (6594), 822-826 (1996).
  13. Belshaw, P. J., Ho, S. N., Crabtree, G. R., Schreiber, S. L. Controlling protein association and subcellular localization with a synthetic ligand that induces heterodimerization of proteins. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 93 (10), 4604-4607 (1996).
  14. Farrar, M. A., AlberolaIla, J., Perlmutter, R. M. Activation of the Raf-1 kinase cascade by coumermycin-induced dimerization. Nature. 383 (6596), 178-181 (1996).
  15. Erhart, D., et al. Chemical Development of Intracellular Protein Heterodimerizers. Chemistry & Biology. 20 (4), 549-557 (2013).
  16. Ballister, E. R., Aonbangkhen, C., Mayo, A. M., Lampson, M. A., Chenoweth, D. M. Localized light-induced protein dimerization in living cells using a photocaged dimerizer. Nature Communications. 17 (5), 5475 (2014).
  17. Hill, Z. B., Martinko, A. J., Nguyen, D. P., Wells, J. A. Human antibody-based chemically induced dimerizers for cell therapeutic applications. Nature Chemical Biology. 14 (2), 112-117 (2018).
  18. Foight, G. W., et al. Multi-input chemical control of protein dimerization for programming graded cellular responses. Nature Biotechnology. 37 (10), 1209-1216 (2019).
  19. Kang, S., et al. COMBINES-CID: An efficient method for de novo engineering of highly specific chemically induced protein dimerization systems. Journal of the American Chemical Society. 141 (28), 10948-10952 (2019).
  20. Muyldermans, S. Nanobodies: natural single-domain antibodies. Annual Review of Biochemistry. 82, 775-797 (2013).
  21. Fanning, S. W., Horn, J. R. An anti-hapten camelid antibody reveals a cryptic binding site with significant energetic contributions from a nonhypervariable loop. Protein Science. 20 (7), 1196-1207 (2011).
  22. Zavrtanik, U., Luken, J., Loris, R., Lah, J., Hadzi, S. Structural basis of epitope recognition by heavy-chain camelid antibodies. Journal of Molecular Biology. 430 (21), 4369-4386 (2018).
  23. Denhardt, D. T., Dressler, D., Ray, D. S. . The Single-Stranded DNA Phages. , 605-625 (1978).
  24. Virnekas, B., et al. Trinucleotide phosphoramidites: ideal reagents for the synthesis of mixed oligonucleotides for random mutagenesis. Nucleic Acids Research. 22 (25), 5600-5607 (1994).
  25. Gu, L., et al. Multiplex single-molecule interaction profiling of DNA-barcoded proteins. Nature. 515 (7528), 554-557 (2014).
check_url/it/60738?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Gomez-Castillo, L., Watanabe, K., Jiang, H., Kang, S., Gu, L. Creating Highly Specific Chemically Induced Protein Dimerization Systems by Stepwise Phage Selection of a Combinatorial Single-Domain Antibody Library. J. Vis. Exp. (155), e60738, doi:10.3791/60738 (2020).

View Video