Summary

Mäta transcellulära interaktioner genom proteinaggregering i ett heterologt cellsystem

Published: May 22, 2020
doi:

Summary

Här presenterar vi ett optimerat protokoll för att snabbt och semiquantitativt mäta ligandreceptorinteraktioner i trans i ett heterologt cellsystem med fluorescensmikroskopi.

Abstract

Proteininteraktioner vid cellulära gränssnitt dikterar en mängd biologiska resultat som sträcker sig från vävnadsutveckling och cancerprogression till synapsbildning och underhåll. Många av dessa grundläggande interaktioner förekommer i trans och induceras vanligtvis av heterofila eller homofila interaktioner mellan celler som uttrycker membranankare bindande par. Att belysa hur sjukdomsrelevanta mutationer stör dessa grundläggande proteininteraktioner kan ge insikt i en myriad av cellbiologiska fält. Många protein-protein interaktion analyser är vanligtvis inte disambiguate mellan CIS och trans interaktioner, vilket potentiellt leder till en överskattning av omfattningen av bindning som förekommer in vivo och innebär arbetsintensiv rening av protein och/eller specialiserad övervakningsutrustning. Här presenterar vi ett optimerat enkelt protokoll som möjliggör observation och kvantifiering av endast transinteraktioner utan behov av långa proteinreningar eller specialiserad utrustning. HEK-cellaggregationsanalysen innebär blandning av två oberoende populationer av HEK-celler, som var och en uttrycker membranbundna konjaksligands. Efter en kort inkubationsperiod avbildas proverna och de resulterande aggregaten kvantifieras.

Introduction

Synaptiska interaktioner som underlättas av synaptiska vidhäftningsmolekyler är grundläggande för utveckling, organisation, specifikation, underhåll och funktion av synapser och generering av neurala nätverk. Identifieringen av dessa transsynaptiska cell vidhäftningsmolekyler ökar snabbt; Därför är det fundamentalt viktigt att identifiera bindande partners och förstå hur dessa nya vidhäftningsmolekyler interagerar med varandra. Dessutom har genomsekvensering identifierat mutationer i många av dessa vidhäftningsmolekyler som ofta är kopplade till en mängd neurodevelopmental, neuropsykiatriska och beroendestörningar1. Mutationer i gener som kodar för synaptiska cell-vidhäftningsmolekyler kan skadligt förändra transinteraktioner och kan bidra till patofysiologiska förändringar i synapsbildning och eller underhåll.

Det finns flera analyser för att kvantitativt bedöma proteinproteininteraktioner som isotermisk kalorimetri, cirkulär diktroism, ytplasmonresonans2 och även om de är kvantitativa till sin natur har de flera begränsningar. För det första kräver de rekombinant protein, ibland kräver långa och tråkiga reningssteg. För det andra kräver de sofistikerad specialiserad utrustning och teknisk expertis. För det tredje kan de överskatta omfattningen av bindningen eftersom de möjliggör både cis och transinteraktioner mellan proteiner som naturligt är bundna till ett membran in vivo. Här föreslår vi en enkel och relativt snabb analys som uteslutande testar transinteraktioner.

För att kringgå många av de komplikationer som är förknippade med renade proteinanalyser har vi optimerat en cellbaserad proteininteraktionsanalys som rekapitulerar transinteraktioner i ett reducerat heterologt cellsystem. Denna analys har tidigare använts i olika former för att studera transcellulära interaktioner. I detta tillvägagångssätt transfecteras kandidatcells vidhäftningsmolekyler till HEK293T-celler. Vid fysiologiska förhållanden uppvisar HEK293T-celler inte självaggregering, vilket gör dem exemplariska modeller för denna analys. Men när enskilda populationer av HEK-celler som uttrycker receptor och ligand kombineras, tvingar bindningen av receptorn och ligand aggregering av HEK-celler att uppstå. Denna aggregering förmedlas uteslutande av transinteraktioner och kan vanligtvis observeras på tiotals minuter. Inga proteinreningssteg krävs i denna metod, och metodens effektivitet bygger på paradigmet att populationer av HEK-celler som uttrycker konjaks vidhäftningsmolekyler kombineras och sedan avbildas bara tiotals minuter senare. Dessutom är denna metod relativt billig, eftersom varken antikroppar eller dyr utrustning krävs. Den enda utrustning som krävs för att insamlar data är ett standard fluorescerande mikroskop. En ytterligare fördel med denna cellbaserade analys är förmågan att snabbt screena effekten av sjukdomsrelevanta punktmutationer på transinteraktioner. Detta kan utföras genom att transfectera HEK-celler med cDNAs av mutantvarianterna av proteinet av intresse.

I detta protokoll presenterar vi ett exempel där vi undersöker om en missense mutation i Neurexin3α (Neurexin3αA687T),identifieras hos en patient diagnostiseras med djupgående intellektuell funktionsnedsättning och epilepsi, förändrar interaktioner i trans med leucin-rika upprepa transmembran protein 2 (LRRTM2). Neurexin3α är en medlem av den evolutionärt bevarade familjen av presynaptiska cell-vidhäftningsmolekyler och medan det senaste arbetet har identifierat flera roller vid synapsen 3,4,5,6,7, är vår synaptiska förståelse av dennamolekyloch alla medlemmar av neurexinfamiljen fortfarande ofullständig. LRRTM2 är ett excitatoriskt postsynaptiskt cell vidhäftningsprotein som deltar i synapsbildning och underhåll8,9,10. Viktigt är att LRRTM2 uteslutande interagerar med neurexinisoformer som saknar skarvstället 4 alternativ exon (SS4-) men inte med neurexinisoformer som innehåller skarvstället 4 alternativ exon (SS4+). Den mänskliga missense mutationen (A687T) identifieras i Neurexin3α ligger i en ostudied extracellulär region som är evolutionärt bevarad och bevaras mellan alla alfa neurexiner7. Eftersom interaktionen mellan dessa två molekyler har fastställts8,9,11, ställde vi frågan: är bindningsförmågan hos Neurexin3α SS4- till LRRTM2 förändrad av en A687T punktmutation? Denna analys visade att A687T punkt mutation oväntat förbättrat aggregering av Neurexin3α till LRRTM2 tyder på att regionen extracellulära där punkt mutationen ligger, spelar en roll i medla transsynaptic interaktioner.

Protocol

1. Cellkultur och transfection Gör HEK-cellmedia med DMEM, 1x (Dulbecco’s Modification of Eagle’s Medium) kompletterat med 4,5 g/L glukos, L-glutamin & natrium pyruvat och 10% FBS. Sterilt filter. Förutbestämda lämpliga ligands och receptorer för aggregeringsanalys.OBS: Neurexin3α SS4+/- och en av dess kända ligands, LRRTM2, användes i denna studie. Ligands och receptorer av intresse uttrycktes från cDNAs i pcDNA3.1. En Gibson montering användes för att sätta in Neurexin3α i pcDNA3.1<…

Representative Results

A687T mutationen ökar Neurexin3α SS4- bindning till LRRTM27För att undersöka hur intercellulära interaktioner av två kända synaptiska proteiner påverkas av införandet av en punktmutation som finns hos en patient med intellektuell funktionsnedsättning och epilepsi, använde vi ovanstående HEK-cellaggregeringsanalys (Figur 1). Cellerna transfekterades enligt avsnitt 1 och förbereddes för avbildning enligt avsnitten 1 och 2 i protokollet. Cellerna av…

Discussion

Dissekering av de proteinproteininteraktioner som förekommer i trans under cellens vidhäftning kan leda till en bättre förståelse för de molekylära mekanismer som ligger till grund för grundläggande cellulära processer, inklusive bildandet, funktionen och underhållet av synapser under mognad och ombyggnad. Konsekvenserna av cell-till-cell interaktioner expanderar bortom neurobiologi och har bredare roller i signaltransduktion, cellmigration och vävnadsutveckling14. Avvikelser i cell vi…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av Grants from the National Institute of Mental Health (R00MH103531 och R01MH116901 till J.A.), ett predoctoral training Grant från National Institute of General Medicine (T32GM007635 till S.R.) och ett Lyda Hill Gilliam Fellowship for Advanced Study (GT11021 till S.R.). Vi tackar Dr. Kevin Woolfrey för hjälp med mikroskopet, Dr. K Ulrich Bayer för användningen av hans epifluorescerande mikroskop och Thomas Südhof (Stanford University) för LRRTM2-plasmiden.

Materials

1.5 mL disposable microtubes with snap caps VWR 89000-028 Incubation of mixed population of HEK cells
1000 mL Rapid—Flow Filter Unit, 0.2 um aPES membrane Thermo Fisher 567-0020 Sterilization of HEK media
15 mL SpectraTube centrifuge tubes Ward’s Science 470224-998 Harvesting HEK cells
6 well sterile tissue culture plates VWR 100062-892 culturing HEK cells
Calcium Chloride Sigma 223506-500G Calcium phosphate transfection, HEK cell resuspension
Centrifuge- Sorvall Legend RT Kendro Laboratory Products 75004377 Harvesting HEK cells
CO2 cell incubator Thermo Scientific HERACELL 150i Incubation of HEK cells during growth
DMEM, 1x (Dulbecco's Modification of Eagle's Medium) with 4.5 g/L glucose, L-glutamine & sodium pyruvate Corning 10-013-CV HEK cell maintenance
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline PBS (1X) Gibco 14190-144 Passaging/harvesting HEK cell
Ethylenediaminetetraacetic acid Sigma ED-500G Harvesting HEK cells
Falcon Vented culture flasks, 75cm2 growth area Corning 9381M26 Culturing HEK cells
Fetal Bovine Serum Sigma 17L184 HEK cell maintenance
HEK293T cells ATCC Model system
ImageJ NIH V: 2.0.0-rc-69/1.52p Image analysis
Magnesium Chloride hexahydrate Sigma M9272-500G HEK cell resuspension
Sodium phosphate dibasic anhydrous Fisher BioReagents BP332-500 Calcium phosphate transfection
Trypsin 0.25% (1X) Solution GE Healthcare Life Sciences SH30042.01 Passaging HEK cells
Tube rotator Incubation of mixed population of HEK cells
UltraClear Microscope slides. White Frosted, Positive Charged Denville Scientific Inc. M1021 Image acquisition
Wide-field microscope Zeiss Axio Vert 200M Image acquisition

References

  1. Südhof, T. C. Neuroligins and neurexins link synaptic function to cognitive disease. Nature. 455 (7215), 903-911 (2008).
  2. Lakey, J. H., Raggett, E. M. Measuring protein-protein interactions. Current Opinion in Structural Biology. 8 (1), 119-123 (1998).
  3. Aoto, J., Martinelli, D. C., Malenka, R. C., Tabuchi, K., Südhof, T. C. Presynaptic neurexin-3 alternative splicing trans-synaptically controls postsynaptic AMPA receptor trafficking. Cell. 154 (1), 75-88 (2013).
  4. Aoto, J., Földy, C., Ilcus, S. M. C., Tabuchi, K., Südhof, T. C. Distinct circuit-dependent functions of presynaptic neurexin-3 at GABAergic and glutamatergic synapses. Nature Neuroscience. 18 (7), 997-1007 (2015).
  5. Südhof, T. C. Synaptic Neurexin Complexes: A Molecular Code for the Logic of Neural Circuits. Cell. 171 (4), 745-769 (2017).
  6. Dai, J., Aoto, J., Südhof, T. C. Alternative Splicing of Presynaptic Neurexins Differentially Controls Postsynaptic NMDA and AMPA Receptor Responses. Neuron. 102 (5), 993-1008 (2019).
  7. Restrepo, S., Langer, N. J., Nelson, K. A., Aoto, J. Modeling a Neurexin-3α Human Mutation in Mouse Neurons Identifies a Novel Role in the Regulation of Transsynaptic Signaling and Neurotransmitter Release at Excitatory Synapses. The Journal of Neuroscience. 39 (46), 9065-9082 (2019).
  8. Ko, J., Fuccillo, M. V., Malenka, R. C., Südhof, T. C. LRRTM2 Functions as a Neurexin Ligand in Promoting Excitatory Synapse Formation. Neuron. 64 (6), 791-798 (2009).
  9. de Wit, J., et al. LRRTM2 Interacts with Neurexin1 and Regulates Excitatory Synapse Formation. Neuron. 64 (6), 799-806 (2009).
  10. Linhoff, M. W., et al. An Unbiased Expression Screen for Synaptogenic Proteins Identifies the LRRTM Protein Family as Synaptic Organizers. Neuron. 61 (5), 734-749 (2009).
  11. Siddiqui, T. J., Pancaroglu, R., Kang, Y., Rooyakkers, A., Craig, A. M. LRRTMs and Neuroligins Bind Neurexins with a Differential Code to Cooperate in Glutamate Synapse Development. Journal of Neuroscience. 30 (22), 7495-7506 (2010).
  12. Gibson, D. G., Young, L., Chuang, R. -. Y., Venter, J. C., Hutchison, C. A., Smith, H. O. Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases. Nature Methods. 6 (5), 343-345 (2009).
  13. Bacchetti, S., Graham, F. L. Transfer of the gene for thymidine kinase to thymidine kinase-deficient human cells by purified herpes simplex viral DNA. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 74 (4), 1590-1594 (1977).
  14. Cerchiari, A. E., et al. A strategy for tissue self-organization that is robust to cellular heterogeneity and plasticity. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (7), 2287-2292 (2015).
  15. Burdick, M. M., McCarty, O. J. T., Jadhav, S., Konstantopoulos, K. Cell-cell interactions in inflammation and cancer metastasis. IEEE Engineering in Medicine and Biology Magazine. 20 (3), 86-91 (2001).
  16. Fox, D. A., Gizinski, A., Morgan, R., Lundy, S. K. Cell-cell interactions in rheumatoid arthritis synovium. Rheumatic Diseases Clinics of North America. 36 (2), 311-323 (2010).
  17. Yamagata, A., et al. Structural insights into modulation and selectivity of transsynaptic neurexin-LRRTM interaction. Nature Communications. 9 (1), 3964 (2018).
  18. Nguyen, T., Südhof, T. C. Binding properties of neuroligin 1 and neurexin 1beta reveal function as heterophilic cell adhesion molecules. The Journal of Biological Chemistry. 272 (41), 26032-26039 (1997).
  19. Boucard, A. A., Ko, J., Südhof, T. C. High Affinity Neurexin Binding to Cell Adhesion G-protein-coupled Receptor CIRL1/Latrophilin-1 Produces an Intercellular Adhesion Complex. Journal of Biological Chemistry. 287 (12), 9399-9413 (2012).
check_url/61237?article_type=t&slug=measuring-transcellular-interactions-through-protein-aggregation

Play Video

Cite This Article
Restrepo, S., Schwartz, S. L., Kennedy, M. J., Aoto, J. Measuring Transcellular Interactions through Protein Aggregation in a Heterologous Cell System. J. Vis. Exp. (159), e61237, doi:10.3791/61237 (2020).

View Video