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Articolo metodologico

Isolamento di sottopopolazioni di cellule stromali adipogeniche e fibro-infiammatorie da depositi adiposi intra-addominali murini

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DOI:

10.3791/61610

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16 agosto 2020

 ,  ,  ,  ,  , 

* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

Questo protocollo descrive l'approccio tecnico per isolare sottopopolazioni di cellule stromali adipogeniche e fibro-infiammatorie da depositi di tessuto adiposo bianco (WAT) murino intra-addominale mediante smistamento cellulare attivato dalla fluorescenza o separazione di microsfere immunomagnetiche.

Abstract

La frazione stromale-vascolare (SVF) del tessuto adiposo bianco (WAT) è notevolmente eterogenea ed è costituita da numerosi tipi cellulari che contribuiscono funzionalmente all'espansione e al rimodellamento del WAT in età adulta. Un enorme ostacolo allo studio delle implicazioni di questa eterogeneità cellulare è l'incapacità di isolare facilmente sottopopolazioni cellulari funzionalmente distinte da WAT SVF per analisi in vitro e in vivo. La tecnologia di sequenziamento a singola cellula ha recentemente identificato sottopopolazioni di cellule perivascolari PDGFRβ+ fibro-infiammatorie e adipogeniche funzionalmente distinte in depositi di WAT intra-addominali di topi adulti. I progenitori fibro-infiammatori (denominati "FIP") sono cellule produttrici di collagene non adipogenico che possono esercitare un fenotipo pro-infiammatorio. Le cellule precursori degli adipociti (APC) PDGFRβ+ sono altamente adipogeniche sia in vitro che in vivo dopo il trapianto di cellule. Qui, descriviamo diversi metodi per l'isolamento di queste sottopopolazioni di cellule stromali da depositi murini di WAT intra-addominali. FIP e APC possono essere isolati mediante smistamento cellulare attivato da fluorescenza (FACS) o sfruttando la tecnologia delle microsfere immunomagnetiche basate su anticorpi biotinilati. Le cellule isolate possono essere utilizzate per l'analisi molecolare e funzionale. Lo studio delle proprietà funzionali della sottopopolazione di cellule stromali in isolamento amplierà le nostre attuali conoscenze sul rimodellamento del tessuto adiposo in condizioni fisiologiche o patologiche a livello cellulare.

Introduzione

Il tessuto adiposo bianco (WAT) rappresenta il sito principale per l'accumulo di energia nei mammiferi. All'interno di questo tessuto, gli adipociti, o "cellule adipose", immagazzinano le calorie in eccesso sotto forma di trigliceridi, impacchettati in grandi goccioline lipidiche uniloculare. Inoltre, gli adipociti secernono una moltitudine di fattori che regolano vari aspetti dell'omeostasi energetica 1,2,3. Gli adipociti costituiscono la maggior parte del volume di WAT; tuttavia, gli adipociti rappresentano solo meno del 50% del totale delle cellule presenti in WAT

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Protocollo

Tutti i protocolli e le procedure per gli animali sono stati approvati dal Comitato istituzionale per l'uso e la cura degli animali del Southwestern Medical Center dell'Università del Texas.

1. Isolamento della frazione vascolare stromale (SVF) dal tessuto adiposo bianco gonadico

  1. Sezionare il tessuto adiposo bianco gonadico da topi di 6-8 settimane e posizionare i cuscinetti adiposi in 1x soluzione PBS.
  2. Combinare fino a 4 depositi di grasso (consigliati 2-4 depositi da 1-2 topi) e tritare il tessuto in un becher da 10 ml contenente 200 μl di tampone di digestione (1x HBSS, 1,5% BSA e 1 mg/mL di collagenasi D).
  3. ....

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Risultati

Questo protocollo descrive due strategie che consentono l'isolamento di popolazioni di cellule stromali distinte da depositi WAT intra-addominali di topi adulti. Le APC e le FIP possono essere isolate mediante FACS (Figura 1) o separazione immunomagnetica delle microsfere con anticorpi biotinilati (Figura 2). Entrambi gli approcci utilizzano reagenti e anticorpi tutti disponibili in commercio. La separazione immunomagnetica delle microsfere porta alla separazion.......

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Discussione

Il ceppo di topi C57BL/6 è il ceppo di topo più utilizzato negli studi sull'obesità indotta dalla dieta. I topi C57BL/6 aumentano rapidamente di peso quando vengono sottoposti a una dieta ricca di grassi (HFD) e sviluppano alcune delle caratteristiche principali della sindrome metabolica associata all'obesità (ad esempio, insulino-resistenza e iperlipidemia). In particolare, l'espansione del WAT che si verifica in associazione con l'alimentazione con dieta ricca di grassi (HFD) si verifica in modo specifico del deposito .......

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Dichiarazioni

T.A.P. è un dipendente e azionista di Novo Nordisk A/S

Ringraziamenti

Gli autori sono grati a Lisa Hansen e Kirsten Vestergaard per l'eccellente assistenza tecnica, e a P. Scherer, N. Joffin e C. Crewe per la lettura critica del manoscritto. Gli autori ringraziano l'UTSW Flow Cytometry Core per l'eccellente guida e assistenza nello sviluppo dei protocolli qui descritti. R.K.G. è supportato da NIH NIDDK R01 DK104789, NIDDK RC2 DK118620 e NIDDK R01 DK119163. J.P. è sponsorizzato da un premio pre-dottorato del Fondo per l'innovazione della Danimarca.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Preparazione meccanica dei tessuti e isolamento SVF
40 e 100 µ filtri per cellule mFisher Scientific352340/352360
1X Soluzione salina tamponata con fosfato (PBS)Fisher Scientific21040CV
Provette in polipropilene da 5 mlFisher Scientific352053
Digest Buffer (per 10mL)
10 ml HBSSSigmaH8264
10 mg Collagenasi D (1 mg/ml cc finale)Roche11088882001
0,15 g BSA (1,5 % cc finale)Fisher ScientificBP1605-100<
strong>Separazione immunomagnetica di APC e non-APC
5X MojoSort Buffer (tampone MS)BioLegend480017
5 ml MojoSort Magnet (MS magnete)BioLegend480019
100 &; L MojoSort Streptavidina Nanosfere BioLegend480015
Purity Check e FACS
10X Tampone per lisi di globuli rossieBioscience00-4300-54
Blocco Fc (Topo CD16/CD32)eBioscience553141
Anticorpi
Biotina CD45BioLegend103103Concentrazione: ≤ 0,25 µ g per 10^6 cellule
Specie: Topo
Clone: 30-F11
Biotina CD31BioLegend102503Concentrazione: ≤ 0,25 µ g per 10^6 cellule
Specie: Topo
Clone: MEC13.3
Biotina CD9BioLegend124803Concentrazione: ≤ 0.25 µ g per 10^6 cellule
Specie: Topo
Clone: MZ3
Biotina LY6CBioLegend128003Concentrazione: ≤ 0.25 µ g per 10^6 cellule
Specie: Topo
Clone: HK1.4
CD31-PerCP/Cy5.5BioLegend102419Concentrazione: Diluizione 1:400
Specie: Topo
Clone: 390
CD45-PerCP/Cy5.5BioLegend103131Concentrazione: Diluizione 1:400
Specie: Topo
Clone: 30-F11
CD140b PDGFRβ-PEBioLegend136006Concentrazione: Diluizione 1:50
Specie: Topo
Clone: APB5
LY6C-APCBioLegend128016Concentrazione: Diluizione 1:400
Specie: Topo
Clone: HK1.4
CD9-FITCBioLegend124808Concentrazione: Diluizione 1:400
Specie: Topo
Clone: MZ3
Cell Culture e Terreno di coltura APC
Gonadal APC (per 500 ml)
288 ml di DMEM con 1 g/L di glucosioCorning10-014-CV
192 mL MCDB201SigmaM6770
10 ml di siero fetale bovino (FBS)** lotto#14E024Sigma12303C
5 ml 100% ITS premiscelaBD Bioscience354352
5 mL 10 mM Acido L-ascorbico-2-2fosfatoSigmaA8960-5G
50 &; L 100 g/ml FGF-baseR& D systems3139-FB-025/CF
5 mL Pen/StrepCorning30-001-CI
500 &; L GentamycinGibco15750-060
**NOTA: La capacità adipogenica degli APC primari può variare da lotto a lotto di FBS commerciali. Dovrebbero essere testati più lotti/fonti di FBS.

Riferimenti

  1. Ouchi, N., Parker, J. L., Lugus, J. J., Walsh, K. Adipokines in inflammation and metabolic disease. Nature Reviews Immunology. 11 (2), 85-97 (2011).
  2. Rosen, E. D., Spiegelman, B. M. What we talk about when we talk about fat. Cell. 156 (1-2), 20-44 (2014).
  3. Funcke, J. B., Scherer, P. E.....

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Ristampe e permessi

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