Summary

Snabb montering av multigenkonstruktioner med modulär Golden Gate-kloning

Published: February 05, 2021
doi:

Summary

Målet med detta protokoll är att tillhandahålla en detaljerad steg-för-steg-guide för montering av multigenkonstruktioner med hjälp av det modulära kloningssystemet baserat på Golden Gate-kloning. Det ger också rekommendationer om kritiska steg för att säkerställa optimal montering baserat på våra erfarenheter.

Abstract

Golden Gate-kloningsmetoden möjliggör snabb montering av flera gener i alla användardefinierade arrangemang. Den använder typ IIS-begränsningsenzymer som skär utanför deras igenkänningsplatser och skapar ett kort överhäng. Detta modulära kloningssystem (MoClo) använder ett hierarkiskt arbetsflöde där olika DNA-delar, till exempel promotors, kodningssekvenser (CDS) och terminatorer, först klonas till en ingångsvektor. Flera postvektorer monteras sedan i transkriptionsenheter. Flera transkriptionsenheter ansluts sedan till en multigenplasmid. Golden Gate-kloningsstrategin är av enorm fördel eftersom den tillåter ärrlös, riktad och modulär montering i en enpottreaktion. Det hierarkiska arbetsflödet möjliggör vanligtvis enkel kloning av ett stort antal multigenkonstruktioner utan behov av sekvensering utöver ingångsvektorer. Användningen av fluorescerande proteinavhopp möjliggör enkel visuell screening. Detta arbete ger ett detaljerat, steg-för-steg-protokoll för montering av multigenplasmider med hjälp av moclo-kit (Yeast Modular Cloning). Vi visar optimala och suboptimala resultat av multigenplasmidmontering och ger en guide för screening för kolonier. Denna kloningsstrategi är mycket tillämplig för jästmetabolisk teknik och andra situationer där multigenplasmidkloning krävs.

Introduction

Syntetisk biologi syftar till att konstruera biologiska system med nya funktioner som är användbara för läkemedels-, jordbruks- och kemiindustrin. Att montera ett stort antal DNA-fragment på ett höggenomströmningssätt är en grundläggande teknik inom syntetisk biologi. En sådan komplicerad process kan bryta ner i flera nivåer med minskande komplexitet, ett koncept lånat från grundläggande ingenjörsvetenskaper1,2. Inom syntetisk biologi monterar DNA-fragment vanligtvis hierarkiskt baserat på funktionalitet: i) Delnivå: “delar” avser DNA-fragment med en specifik funktion, såsom en promotor, en kodningssekvens, en terminator, ett ursprung för replikering; ii) Tu-nivå (Transcription units) : en TU består av en promotor, en kodningssekvens och en terminator som kan transkribera en enda gen. iii) Multigennivå: En multigenplasmid innehåller flera TUs som ofta består av en hel metabolisk väg. Denna hierarkiska församling som är pionjär av BioBrick-samhället är det grundläggande konceptet för montering av stora uppsättningar DNA i syntetiskbiologi 3.

Under det senaste decenniethar 4,5,6,7, Golden Gate kloningstekniken avsevärt underlättat hierarkisk DNA-montering2. Många andra flerdelad kloningsmetoder, såsom Gibson kloning8,ligaturoberoende kloning (SLIC)9,uracil excision-baserad kloning (USER)10, ligase cykelreaktion (LCR)11, och in vivo rekombination (DNA Assembler)12,13, har också utvecklats hittills. Men Golden Gate-kloning är en idealisk DNA-monteringsmetod eftersom den är oberoende av genspecifika sekvenser, vilket möjliggör ärrfri, riktad och modulär montering i en enpottreaktion. Golden Gate kloning drar nytta av typ IIS begränsning enzymer som känner igen en icke-palindromisk sekvens för att skapa förskjutna överhäng utanför igenkännings platsen2. En ligase förenar sedan de glödgade DNA-fragmenten för att få en flerdelad sammansättning. Genom att tillämpa denna kloningsstrategi på moclo-systemet (modulär kloning) har monteringen av upp till 10 DNA-fragment med över 90 % transformatorer avskärmade som innehåller den korrekt monteradekonstruktionen 4.

MoClo-systemet erbjuder enorma fördelar som har påskyndat design-build-testcykeln för syntetisk biologi. För det första möjliggör de utbytbara delarna kombinatorisk kloning för att snabbt testa ett stort antal parametrar. Till exempel kräver optimering av en metabolisk väg vanligtvis cykling genom många promotors för varje gen för att balansera vägflödet. MoClo-systemet kan enkelt hantera sådana krävande kloningsuppgifter. För det andra måste man sekvensera delen plasmid men vanligtvis inte TU eller multigenplasmider. I de flesta fall är screening genom koloni PCR eller begränsningssammanfattning tillräcklig för verifiering på TU- och multigenplasmidnivå. Detta beror på att kloning av delen plasmid är det enda steget som kräver PCR, som ofta introducerar mutationer. För det tredje är MoClo-systemet idealiskt för att bygga komplexa metaboliska vägar med flera gener. Slutligen, på grund av de universella överhängen, kan de delplasmider återanvändas och delas med hela bioengineeringsgemenskapen. För närvarande finns MoClo-kit tillgängliga för växter14,15,5,16,17,svampar 6,18,19,20,21,22,bakterier 7,23,24,25,26,27och djur28,29. En MoClo-plattform med flera kungarike har också introducerats nyligen30.

För Saccharomyces cerevisiaehar Lee et al.6 utvecklat en mångsidig MoClo-verktygslåda, en utmärkt resurs för jästsyntetisk biologigemenskap. Detta kit finns i ett bekvämt 96-brunnsformat och definierar åtta typer av utbytbara DNA-delar med en mångfaldig samling av väl karakteriserade promotors, fluorescerande proteiner, terminatorer, peptidtaggar, urvalsmarkörer, replikerings ursprung och genomredigeringsverktyg. Denna verktygslåda gör det möjligt att montera upp till fem transkriptionsenheter i en multigenplasmid. Dessa egenskaper är värdefulla för jästmetabolisk teknik, där partiella eller hela vägar är överp uttryckta för att producera riktade kemikalier. Med hjälp av detta kit har forskare optimerat produktionen av geraniol, linalool31, penicillin32, mukonsyra33, indigo34, och betalain35 i jäst.

Här tillhandahåller vi ett detaljerat, steg-för-steg-protokoll för att vägleda användningen av MoClo-verktygslådan för att generera flergenvägar för antingen episomal eller genomiskt uttryck. Genom omfattande användning av detta kit har vi funnit att noggrann mätning av DNA-koncentrationer är nyckeln till att säkerställa equimolarfördelningen av varje del i Golden Gate-reaktionen. Vi rekommenderar också T4 DNA ligase över T7 DNA ligase eftersom den förra fungerar bättre med större antal överhäng36. Slutligen måste alla interna igenkänningsplatser för BsmBI och BsaI avlägsnas eller tämjas före monteringen. Alternativt kan man överväga att syntetisera delar för att ta bort flera interna webbplatser och för att uppnå samtidig kodonoptimering. Vi visar hur man använder denna verktygslåda genom att uttrycka en fem-gen väg för β-karoten och lykopen produktion i S. cerevisiae. Vi visar vidare hur man slår ut ADE2-locusen med hjälp av genomredigeringsverktygen från detta kit. Dessa färgbaserade experiment valdes för enkel visualisering. Vi visar också hur man genererar fusionsproteiner och skapar aminosyramutationer med Golden Gate-kloning.

Protocol

OBS: Det hierarkiska kloningsprotokollet som erbjuds i denna verktygslåda kan delas in i tre huvudsteg: 1. Kloningsdelplasmider; 2. Avskriftsenheter för kloning(TUs). 3. Kloning av multigenplasmider (figur 1). Detta protokoll börjar från primer design och slutar med tillämpningar av klonade multi-gene plasmid. 1. Primer design för kloning delen plasmid (pYTK001): Designa de främre och omvända primers som innehåller flankerande nukleotider TTT i …

Representative Results

Här resultaten av fyra replikatoriska multi-gen plasmider för β-karoten (gul) och lykopen (röd) produktion. En integrativ multi-gene plasmid för att störa ADE2 locus konstruerades, vars kolonier är röda. Klonings-CDS till ingångsvektorn (pYTK001)ERG20 förstärktes från jästgenomet och de tre karotenoidgenerna crtE, crtYB, crtI från plasmid pLM494<sup …

Discussion

MoClo-baserade kloningssatsen som utvecklats av Lee et al. ger en utmärkt resurs för snabb montering av en till fem transkriptionsenheter i en multigenplasmid antingen för replikering eller integration i jästgenomet. Användningen av detta kit eliminerar den tidskrävande kloningsflaskhalsen som ofta finns för att uttrycka flera gener i jäst.

Vi testade fem olika förhållanden för matsmältnings-/ligaturcyklerna av Golden Gate-kloning med T4 DNA-ligas. Vi fann att 30 cykler av matsmäl…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete finansierades av Research Foundation för State University of New York (Award #: 71272) och IMPACT Award of University at Buffalo (Award #: 000077).

Materials

0.5 mm Glass beads RPI research products 9831 For lysing yeast cells
Bacto Agar BD & Company 214010 Component of the yeast complete synthetic medium (CSM)
Bacto Peptone BD& Company 211677 Component of the yeast extract peptone dextrose medium (YPD)
BsaI-HFv2 New England Biolabs R3733S a highly efficient version of BsaI restriction enzyme
Carbenicillin Fisher Bioreagents 4800-94-6 Antibiotic for screening at the transcription unit level
Chloramphenicol Fisher Bioreagents 56-75-7 Antibiotic for screening at the entry vector level
CSM-His Sunrise Sciences 1006-010 Amino acid supplement of the yeast complete synthetic medium (CSM)
Dextrose Fisher Chemical D16-500 Carbon source of the yeast complete synthetic medium (CSM)
Difco Yeast Nitrogen Base w/o Amino Acids BD & Company 291940 Nitrogen source of the yeast complete synthetic medium (CSM)
dNTP mix Promega U1515 dNTPs for PCR
Esp3I New England Biolabs R0734S a highly efficient isoschizomer of BsmBI
Frozen-EZ Yeast Trasformation II Kit Zymo Research T2001 For yeast transformation
Hexanes Fisher Chemical H302-1 For carotenoid extraction from yeast cells
Kanamycin Fisher Bioreagents 25389-94-0 Antibiotic for screening at the multigene plasmid level
LB Agar, Miller Fisher Bioreagents BP1425-2 Lysogenic agar medium for E. coli culturing
LB Broth, Miller Fisher Bioreagents BP1426-2 Lysogenic liquid medium for E. coli culturing
Lycopene Cayman chemicals NC1142173 For lycopene quantification
MoClo YTK Addgene 1000000061 Depositing Lab: John Deuber
Monarch Plasmid Miniprep Kit New England Biolabs T1010L For plasmid purification from E.coli
Nanodrop Spectrophotometer Thermo Scientific ND2000c For measuring accurate DNA concentrations
NotI-HF New England Biolabs R3189S Restriction enzyme for integrative multigene plasmid linearization
Nourseothricin Sulphate Goldbio N-500-100 Antibiotic Selection marker for the pCAS plasmid used in this study
Phusion HF reaction Buffer (5X) New England Biolabs B0518S Buffer for PCR using Phusion polymerase
Phusion High Fidelity DNA Polymerase New England Biolabs M0530S High fidelity polymerase for all the PCR reactions
pLM494 Addgene 100539 Plasmid used to amplify crtI, crtYB and crtE used in this study
Quartz Cuvette Thermo Electron 10050801 For quantifing carotenoids
T4 ligase New England Biolabs M0202S Ligase for Golden Gate cloning
Thermocycler BIO-RAD 1851148 For performing all the PCR and cloning reactions
Tissue Homogenizer Bullet Blender Model: BBX24 For homogenization of yeast cells
UV-Vis Spectrophotometer Thermo Scientific Genesys 150 For quantifing carotenoids
Yeast Extract Fisher Bioreagents BP1422-500 Component of the yeast extract peptone dextrose medium (YPD)
β-carotene Alfa Aesar AAH6010603 For β-carotene quantification

Riferimenti

  1. Endy, D. Foundations for engineering biology. Nature. 438 (7067), 449-453 (2005).
  2. Engler, C., Gruetzner, R., Kandzia, R., Marillonnet, S. Golden gate shuffling: a one-pot DNA shuffling method based on type IIs restriction enzymes. PLoS One. 4 (5), 5553 (2009).
  3. Shetty, R. P., Endy, D., Knight, T. F. Engineering BioBrick vectors from BioBrick parts. Journal of Biological Engineering. 2, 5 (2008).
  4. Peccoud, J., et al. A Modular cloning system for standardized assembly of multigene constructs. PLoS ONE. 6 (2), (2011).
  5. Sarrion-Perdigones, A., et al. GoldenBraid: an iterative cloning system for standardized assembly of reusable genetic modules. PLoS One. 6 (7), 21622 (2011).
  6. Lee, M. E., DeLoache, W. C., Cervantes, B., Dueber, J. E. A Highly characterized yeast toolkit for modular, multipart assembly. ACS Synthetic Biology. 4 (9), 975-986 (2015).
  7. Andreou, A. I., Nakayama, N. Mobius assembly: A versatile Golden-Gate framework towards universal DNA assembly. PLoS One. 13 (1), 0189892 (2018).
  8. Gibson, D. G., et al. Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases. Nature Methods. 6 (5), 343-345 (2009).
  9. Li, M. Z., Elledge, S. J. Harnessing homologous recombination in vitro to generate recombinant DNA via SLIC. Nature Methods. 4 (3), 251-256 (2007).
  10. Geu-Flores, F., Nour-Eldin, H. H., Nielsen, M. T., Halkier, B. A. USER fusion: a rapid and efficient method for simultaneous fusion and cloning of multiple PCR products. Nucleic Acids Research. 35 (7), 55 (2007).
  11. de Kok, S., et al. Rapid and reliable DNA assembly via ligase cycling reaction. ACS Synthetic Biology. 3 (2), 97-106 (2014).
  12. Shao, Z., Zhao, H., Zhao, H. DNA assembler, an in vivo genetic method for rapid construction of biochemical pathways. Nucleic Acids Research. 37 (2), 16 (2009).
  13. Gibson, D. G. Synthesis of DNA fragments in yeast by one-step assembly of overlapping oligonucleotides. Nucleic Acids Research. 37 (20), 6984-6990 (2009).
  14. Engler, C., et al. A golden gate modular cloning toolbox for plants. ACS Synthetic Biology. 3 (11), 839-843 (2014).
  15. Gantner, J., et al. Peripheral infrastructure vectors and an extended set of plant parts for the Modular Cloning system. PLoS One. 13 (5), 0197185 (2018).
  16. Ordon, J., et al. Generation of chromosomal deletions in dicotyledonous plants employing a user-friendly genome editing toolkit. Plant Journal. 89 (1), 155-168 (2017).
  17. Sarrion-Perdigones, A., et al. GoldenBraid 2.0: a comprehensive DNA assembly framework for plant synthetic biology. Plant Physiology. 162 (3), 1618-1631 (2013).
  18. Agmon, N., et al. Yeast Golden Gate (yGG) for the efficient assembly of S. cerevisiae transcription units. ACS Synthetic Biology. 4 (7), 853-859 (2015).
  19. Hernanz-Koers, M., et al. FungalBraid: A GoldenBraid-based modular cloning platform for the assembly and exchange of DNA elements tailored to fungal synthetic biology. Fungal Genetics and Biology. 116, 51-61 (2018).
  20. Prielhofer, R., et al. GoldenPiCS: a Golden Gate-derived modular cloning system for applied synthetic biology in the yeast Pichia pastoris. BMC Systems Biology. 11 (1), 123 (2017).
  21. Celinska, E., et al. Gate Assembly system dedicated to complex pathway manipulation in Yarrowia lipolytica. Microbial Biotechnology. 10 (2), 450-455 (2017).
  22. Pullmann, P. K., et al. A modular two yeast species secretion system for the production and preparative application of fungal peroxygenases. bioRxiv. , (2020).
  23. Wu, D., Schandry, N., Lahaye, T. A modular toolbox for Golden-Gate-based plasmid assembly streamlines the generation of Ralstonia solanacearum species complex knockout strains and multi-cassette complementation constructs. Molecular Plant Pathology. 19 (6), 1511-1522 (2018).
  24. Moore, S. J., et al. EcoFlex: A multifunctional MoClo kit for E. coli synthetic biology. ACS Synthetic Biology. 5 (10), 1059-1069 (2016).
  25. Iverson, S. V., Haddock, T. L., Beal, J., Densmore, D. M. CIDAR MoClo: Improved MoClo assembly standard and new E. coli part library enable rapid combinatorial design for synthetic and traditional biology. ACS Synthetic Biology. 5 (1), 99-103 (2016).
  26. Vasudevan, R., et al. CyanoGate: A modular cloning suite for engineering cyanobacteria based on the plant MoClo syntax. Plant Physiology. 180 (1), 39-55 (2019).
  27. Leonard, S. P., et al. Genetic Engineering of bee gut microbiome acteria with a Ttoolkit for modular assembly of broad-host-range plasmids. ACS Synthetic Biology. 7 (5), 1279-1290 (2018).
  28. Schwartz, M. L., Jorgensen, E. M. SapTrap, a toolkit for high-throughput CRISPR/Cas9 gene modification in Caenorhabditis elegans. Genetica. 202 (4), 1277-1288 (2016).
  29. Martella, A., Matjusaitis, M., Auxillos, J., Pollard, S. M., Cai, Y. EMMA: An extensible mammalian modular assembly toolkit for the rapid design and production of diverse expression vectors. ACS Synthetic Biology. 6 (7), 1380-1392 (2017).
  30. Chiasson, D., et al. A unified multi-kingdom Golden Gate cloning platform. Scientific Reports. 9 (1), 10131 (2019).
  31. Denby, C. M., et al. Industrial brewing yeast engineered for the production of primary flavor determinants in hopped beer. Nature Communications. 9 (1), 965 (2018).
  32. Awan, A. R., et al. Biosynthesis of the antibiotic nonribosomal peptide penicillin in baker’s yeast. Nature Communications. 8, 15202 (2017).
  33. Leavitt, J. M., et al. Biosensor-Enabled Directed evolution to improve muconic acid production in Saccharomyces cerevisiae. Biotechnology Journal. 12 (10), (2017).
  34. Hsu, T. M., et al. Employing a biochemical protecting group for a sustainable indigo dyeing strategy. Nature Chemical Biology. 14 (3), 256-261 (2018).
  35. Grewal, P. S., Modavi, C., Russ, Z. N., Harris, N. C., Dueber, J. E. Bioproduction of a betalain color palette in Saccharomyces cerevisiae. Metabolic Engineering. 45, 180-188 (2018).
  36. Potapov, V., et al. Comprehensive profiling of four base overhang ligation fidelity by T4 DNA ligase and application to DNA assembly. ACS Synthetic Biology. 7 (11), 2665-2674 (2018).
  37. Vazquez-Vilar, M., et al. Software-assisted stacking of gene modules using GoldenBraid 2.0 DNA-assembly framework. Methods in Molecular Biology. 1284, 399-420 (2015).
  38. Pullmann, P., et al. Mutagenesis: An efficient multi-site-saturation mutagenesis approach by Golden Gate cloning with automated primer design. Scientific Reports. 9 (1), 10932 (2019).
  39. Engler, C., Sylvestre, M., Valla, S., Lale, R. . DNA Cloning and Assembly Methods. 1116, 119-131 (2014).
  40. Liu, H., Naismith, J. H. An efficient one-step site-directed deletion, insertion, single and multiple-site plasmid mutagenesis protocol. BMC Biotechnology. 8, 91 (2008).
  41. Chen, X., Zaro, J. L., Shen, W. C. Fusion protein linkers: property, design and functionality. Advanced Drug Delivery Reviews. 65 (10), 1357-1369 (2013).
  42. Mullis, K., et al. Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: the polymerase chain reaction. Cold Spring Harbor Symposia on Quantitative Biology. 51, 263-273 (1986).
  43. Naito, Y., Hino, K., Bono, H., Ui-Tei, K. CRISPRdirect: software for designing CRISPR/Cas guide RNA with reduced off-target sites. Bioinformatics. 31 (7), 1120-1123 (2015).
  44. Labun, K., et al. CHOPCHOP v3: expanding the CRISPR web toolbox beyond genome editing. Nucleic Acids Research. 47 (1), 171-174 (2019).
  45. Ryan, O. W., et al. Selection of chromosomal DNA libraries using a multiplex CRISPR system. Elife. 3, (2014).
  46. Gietz, R. D., Schiestl, R. H. High-efficiency yeast transformation using the LiAc/SS carrier DNA/PEG method. Nature Protocols. 2 (1), 31-34 (2007).
  47. Heintz, N., Gong, S. Small-scale preparations of yeast DNA. Cold Spring Harbor Protocols. 2020 (10), (2020).
  48. Hochrein, L., Mitchell, L. A., Schulz, K., Messerschmidt, K., Mueller-Roeber, B. L-SCRaMbLE as a tool for light-controlled Cre-mediated recombination in yeast. Nature Communications. 9 (1), 1931 (2018).
  49. Verwaal, R., et al. High-level production of beta-carotene in Saccharomyces cerevisiae by successive transformation with carotenogenic genes from Xanthophyllomyces dendrorhous. Applied and Environmental Microbiology. 73 (13), 4342-4350 (2007).
  50. Jones, E., Strathern, J. N., Jones, E. W., Broach, J. R., et al. . The Molecular Biology of the Yeast Saccharomyces: Metabolism and Gene Expression. 11, 181 (1982).
  51. Sehgal, N., et al. CRISPR gene editing in yeast: an experimental protocol for an upper-division undergraduate laboratory course. Biochemistry and Molecular Biology Education. 46 (6), 592-601 (2018).
  52. Stepanenko, O. V., Stepanenko, O. V., Kuznetsova, I. M., Verkhusha, V. V., Turoverov, K. K. Sensitivity of superfolder GFP to ionic agents. PLoS One. 9 (10), 110750 (2014).

Play Video

Citazione di questo articolo
Mukherjee, M., Caroll, E., Wang, Z. Q. Rapid Assembly of Multi-Gene Constructs using Modular Golden Gate Cloning. J. Vis. Exp. (168), e61993, doi:10.3791/61993 (2021).

View Video