Summary

Rask montering av multigenkonstruksjoner ved hjelp av modulær golden gate-kloning

Published: February 05, 2021
doi:

Summary

Målet med denne protokollen er å gi en detaljert, trinnvis guide for montering av multigenkonstruksjoner ved hjelp av det modulære kloningssystemet basert på Golden Gate-kloning. Det gir også anbefalinger om kritiske skritt for å sikre optimal montering basert på våre erfaringer.

Abstract

Golden Gate-kloningsmetoden muliggjør rask montering av flere gener i ethvert brukerdefinert arrangement. Den bruker type IIS-begrensningsenzymer som kutter utenfor deres anerkjennelsessteder og skaper et kort overheng. Dette modulære kloningssystemet (MoClo) bruker en hierarkisk arbeidsflyt der forskjellige DNA-deler, for eksempel promotorer, kodesekvenser (CDS) og terminatorer, først klones inn i en inngangsvektor. Flere inngangsvektorer samles deretter i transkripsjonsenheter. Flere transkripsjonsenheter kobles deretter til en multigenplasmid. Golden Gate-kloningsstrategien er av enorm fordel fordi den tillater arrfri, retningsmessig og modulær montering i en en-pott-reaksjon. Den hierarkiske arbeidsflyten muliggjør vanligvis facile-kloning av et stort utvalg av flergenkonstruksjoner uten behov for sekvensering utover inngangsvektorer. Bruken av fluorescerende proteinfrafall muliggjør enkel visuell screening. Dette arbeidet gir en detaljert, trinnvis protokoll for montering av multigenplasmider ved hjelp av gjær modulær kloning (MoClo) kit. Vi viser optimale og suboptimale resultater av multi-gen plasmid montering og gir en guide for screening for kolonier. Denne kloning strategien er svært anvendelig for gjær metabolsk engineering og andre situasjoner der multi-gen plasmid kloning er nødvendig.

Introduction

Syntetisk biologi har som mål å konstruere biologiske systemer med nye funksjoner som er nyttige for farmasøytisk, landbruks- og kjemisk industri. Montering av et stort antall DNA-fragmenter på en høy gjennomstrømningsmåte er en grunnleggende teknologi i syntetisk biologi. En slik komplisert prosess kan brytes ned i flere nivåer med synkende kompleksitet, et konsept lånt fra grunnleggende ingeniørvitenskap1,2. I syntetisk biologi samler DNA-fragmenter vanligvis hierarkisk basert på funksjonalitet: (i) Delnivå: “deler” refererer til DNA-fragmenter med en bestemt funksjon, for eksempel en promotor, en kodingssekvens, en terminator, en opprinnelse av replikering; (ii) Transkripsjonsenheter (TU) nivå: en TU består av en promotor, en kodingssekvens og en terminator som er i stand til å transkribere et enkelt gen; (iii) Multigennivå: en multigenplasmid inneholder flere TUer som ofte består av en hel metabolsk vei. Denne hierarkiske samlingen som er banebrytende av BioBrick-samfunnet er det grunnleggende konseptet for montering av store sett med DNAer i syntetisk biologi3.

I løpet av det siste tiåret4,5,6,7, golden gate kloning teknikken har betydelig tilrettelagt hierarkisk DNA-montering2. Mange andre flerdelte kloningsmetoder, for eksempel Gibson kloning8, ligation-uavhengig kloning (SLIC)9, uracil excision-basert kloning (USER)10, ligase sykkelreaksjonen (LCR)11, og in vivo rekombinasjon (DNA Assembler)12,13, er også utviklet så langt. Men Golden Gate kloning er en ideell DNA-monteringsmetode fordi den er uavhengig av genspesifikke sekvenser, noe som tillater arrfri, retningsbestemt og modulær montering i en en-pot reaksjon. Golden Gate-kloning drar nytte av type IIS-begrensningsenzymer som gjenkjenner en ikke-palindrom sekvens for å skape forskjøvede overheng utenfor anerkjennelsesstedet2. En ligase blir deretter med de glødede DNA-fragmentene for å få en flerdelt montering. Ved å bruke denne kloningsstrategien på det modulære kloningssystemet (MoClo) har det mulig å montere opptil 10 DNA-fragmenter med over 90% transformanter screenet som inneholder den riktig monterte konstruksjonen4.

MoClo-systemet tilbyr enorme fordeler som har akselerert design-build-test-syklusen til syntetisk biologi. For det første muliggjør de utskiftbare delene kombinatorisk kloning for å teste et stort rom med parametere raskt. For eksempel krever optimalisering av en metabolsk vei vanligvis å sykle gjennom mange promotører for hvert gen for å balansere banestrømmen. MoClo-systemet kan enkelt håndtere slike krevende kloningsoppgaver. For det andre må man sekvensere delen plasmid, men vanligvis ikke TU eller multi-genplasmider. I de fleste tilfeller er screening av koloni PCR eller begrensning fordøyelse tilstrekkelig for verifisering på TU og multi-gen plasmid nivå. Dette er fordi kloning av delen plasmid er det eneste trinnet som krever PCR, som ofte introduserer mutasjoner. For det tredje er MoClo-systemet ideelt for å bygge multigenkomplekse metabolske veier. Til slutt, på grunn av de universelle overhengene, kan delen plasmider gjenbrukes og deles med hele bioingeniørsamfunnet. For tiden er MoClo-sett tilgjengelige for planter14,15,5,16,17, sopp6,18,19,20,21,22, bakterier7,23,24,25,26,27og dyr28,29. En Multi-Kingdom MoClo-plattform har også blitt introdusert nylig30.

For Saccharomyces cerevisiaehar Lee et al.6 utviklet et allsidig MoClo-verktøysett, en utmerket ressurs for gjærsyntetisk biologisamfunn. Dette settet kommer i et praktisk 96-brønns format og definerer åtte typer utskiftbare DNA-deler med en mangfoldig samling av godt karakteriserte promotorer, fluorescerende proteiner, terminatorer, peptidkoder, utvalgsmarkører, opprinnelsen til replikasjon og genomredigeringsverktøy. Dette verktøysettet gjør det mulig å montere opptil fem transkripsjonsenheter i en multigenplasmid. Disse funksjonene er verdifulle for gjær metabolsk engineering, der delvise eller hele veier er over-uttrykt for å produsere målrettede kjemikalier. Ved hjelp av dette settet har forskere optimalisert produksjonen av geraniol, linalool31, penicillin32, mukonsyre33, indigo34og betalain35 i gjær.

Her tilbyr vi en detaljert, trinnvis protokoll for å veilede bruken av MoClo-verktøysettet for å generere flergenbaner for enten episomalt eller genomisk uttrykk. Gjennom utstrakt bruk av dette settet har vi funnet ut at nøyaktig måling av DNA-konsentrasjoner er nøkkelen til å sikre likeverdig fordeling av hver del i Golden Gate-reaksjonen. Vi anbefaler også T4 DNA-ligaer over T7 DNA-ligaene fordi førstnevnte fungerer bedre med større antall overheng36. Til slutt må eventuelle interne anerkjennelsessteder for BsmBI og BsaI fjernes eller tammes før montering. Alternativt kan man vurdere å syntetisere deler for å fjerne flere interne nettsteder og for å oppnå samtidig kodonoptimalisering. Vi demonstrerer hvordan du bruker dette verktøysettet ved å uttrykke en fem-gens vei for β-karoten- og lykopenproduksjon i S. cerevisiae. Vi viser videre hvordan du slår ut ADE2-locus ved hjelp av genomredigeringsverktøyene fra dette settet. Disse fargebaserte eksperimentene ble valgt for enkel visualisering. Vi demonstrerer også hvordan man genererer fusjonsproteiner og skaper aminosyremutasjoner ved hjelp av Golden Gate-kloning.

Protocol

MERK: Den hierarkiske kloningsprotokollen som tilbys i dette verktøysettet, kan deles inn i tre hovedtrinn: 1. Kloning av delplasmider; 2. Kloning transkripsjon enheter (TUer); 3. Kloning av multigenplasmider (Figur 1). Denne protokollen starter fra primer design og slutter med anvendelser av klonet multi-gen plasmid. 1. Primer design for kloning av delen plasmid (pYTK001): Design fremre og omvendte primere som inneholder flanke nukleotider TTT på 5 ‘ …

Representative Results

Her resultatene av fire replikerende multi-gen plasmider for β-karoten (gul) og lykopen (rød) produksjon. En integrativ multi-gen plasmid for å forstyrre ADE2 locus ble konstruert, hvis kolonier er røde. Kloning av CDS-er i inngangsvektoren (pYTK001)ERG20 ble forsterket fra gjærgenomet og de tre karotenoidgenene crtE, crtYB, crtI fra plasmid pLM494<sup class=…

Discussion

Det MoClo-baserte kloningssettet utviklet av Lee et al. gir en utmerket ressurs for rask montering av en til fem transkripsjonsenheter i en multigenplasmid enten for replikering eller integrasjon i gjærgenomet. Bruken av dette settet eliminerer den tidkrevende kloning flaskehalsen som ofte eksisterer for å uttrykke flere gener i gjær.

Vi testet fem forskjellige forhold for fordøyelses-/ligasjonssyklusene til Golden Gate-kloning med T4 DNA-ligaer. Vi fant at 30 sykluser av fordøyelsen ved …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble finansiert av Research Foundation for State University of New York (Pris #: 71272) og IMPACT Award of University at Buffalo (Pris #: 000077).

Materials

0.5 mm Glass beads RPI research products 9831 For lysing yeast cells
Bacto Agar BD & Company 214010 Component of the yeast complete synthetic medium (CSM)
Bacto Peptone BD& Company 211677 Component of the yeast extract peptone dextrose medium (YPD)
BsaI-HFv2 New England Biolabs R3733S a highly efficient version of BsaI restriction enzyme
Carbenicillin Fisher Bioreagents 4800-94-6 Antibiotic for screening at the transcription unit level
Chloramphenicol Fisher Bioreagents 56-75-7 Antibiotic for screening at the entry vector level
CSM-His Sunrise Sciences 1006-010 Amino acid supplement of the yeast complete synthetic medium (CSM)
Dextrose Fisher Chemical D16-500 Carbon source of the yeast complete synthetic medium (CSM)
Difco Yeast Nitrogen Base w/o Amino Acids BD & Company 291940 Nitrogen source of the yeast complete synthetic medium (CSM)
dNTP mix Promega U1515 dNTPs for PCR
Esp3I New England Biolabs R0734S a highly efficient isoschizomer of BsmBI
Frozen-EZ Yeast Trasformation II Kit Zymo Research T2001 For yeast transformation
Hexanes Fisher Chemical H302-1 For carotenoid extraction from yeast cells
Kanamycin Fisher Bioreagents 25389-94-0 Antibiotic for screening at the multigene plasmid level
LB Agar, Miller Fisher Bioreagents BP1425-2 Lysogenic agar medium for E. coli culturing
LB Broth, Miller Fisher Bioreagents BP1426-2 Lysogenic liquid medium for E. coli culturing
Lycopene Cayman chemicals NC1142173 For lycopene quantification
MoClo YTK Addgene 1000000061 Depositing Lab: John Deuber
Monarch Plasmid Miniprep Kit New England Biolabs T1010L For plasmid purification from E.coli
Nanodrop Spectrophotometer Thermo Scientific ND2000c For measuring accurate DNA concentrations
NotI-HF New England Biolabs R3189S Restriction enzyme for integrative multigene plasmid linearization
Nourseothricin Sulphate Goldbio N-500-100 Antibiotic Selection marker for the pCAS plasmid used in this study
Phusion HF reaction Buffer (5X) New England Biolabs B0518S Buffer for PCR using Phusion polymerase
Phusion High Fidelity DNA Polymerase New England Biolabs M0530S High fidelity polymerase for all the PCR reactions
pLM494 Addgene 100539 Plasmid used to amplify crtI, crtYB and crtE used in this study
Quartz Cuvette Thermo Electron 10050801 For quantifing carotenoids
T4 ligase New England Biolabs M0202S Ligase for Golden Gate cloning
Thermocycler BIO-RAD 1851148 For performing all the PCR and cloning reactions
Tissue Homogenizer Bullet Blender Model: BBX24 For homogenization of yeast cells
UV-Vis Spectrophotometer Thermo Scientific Genesys 150 For quantifing carotenoids
Yeast Extract Fisher Bioreagents BP1422-500 Component of the yeast extract peptone dextrose medium (YPD)
β-carotene Alfa Aesar AAH6010603 For β-carotene quantification

Riferimenti

  1. Endy, D. Foundations for engineering biology. Nature. 438 (7067), 449-453 (2005).
  2. Engler, C., Gruetzner, R., Kandzia, R., Marillonnet, S. Golden gate shuffling: a one-pot DNA shuffling method based on type IIs restriction enzymes. PLoS One. 4 (5), 5553 (2009).
  3. Shetty, R. P., Endy, D., Knight, T. F. Engineering BioBrick vectors from BioBrick parts. Journal of Biological Engineering. 2, 5 (2008).
  4. Peccoud, J., et al. A Modular cloning system for standardized assembly of multigene constructs. PLoS ONE. 6 (2), (2011).
  5. Sarrion-Perdigones, A., et al. GoldenBraid: an iterative cloning system for standardized assembly of reusable genetic modules. PLoS One. 6 (7), 21622 (2011).
  6. Lee, M. E., DeLoache, W. C., Cervantes, B., Dueber, J. E. A Highly characterized yeast toolkit for modular, multipart assembly. ACS Synthetic Biology. 4 (9), 975-986 (2015).
  7. Andreou, A. I., Nakayama, N. Mobius assembly: A versatile Golden-Gate framework towards universal DNA assembly. PLoS One. 13 (1), 0189892 (2018).
  8. Gibson, D. G., et al. Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases. Nature Methods. 6 (5), 343-345 (2009).
  9. Li, M. Z., Elledge, S. J. Harnessing homologous recombination in vitro to generate recombinant DNA via SLIC. Nature Methods. 4 (3), 251-256 (2007).
  10. Geu-Flores, F., Nour-Eldin, H. H., Nielsen, M. T., Halkier, B. A. USER fusion: a rapid and efficient method for simultaneous fusion and cloning of multiple PCR products. Nucleic Acids Research. 35 (7), 55 (2007).
  11. de Kok, S., et al. Rapid and reliable DNA assembly via ligase cycling reaction. ACS Synthetic Biology. 3 (2), 97-106 (2014).
  12. Shao, Z., Zhao, H., Zhao, H. DNA assembler, an in vivo genetic method for rapid construction of biochemical pathways. Nucleic Acids Research. 37 (2), 16 (2009).
  13. Gibson, D. G. Synthesis of DNA fragments in yeast by one-step assembly of overlapping oligonucleotides. Nucleic Acids Research. 37 (20), 6984-6990 (2009).
  14. Engler, C., et al. A golden gate modular cloning toolbox for plants. ACS Synthetic Biology. 3 (11), 839-843 (2014).
  15. Gantner, J., et al. Peripheral infrastructure vectors and an extended set of plant parts for the Modular Cloning system. PLoS One. 13 (5), 0197185 (2018).
  16. Ordon, J., et al. Generation of chromosomal deletions in dicotyledonous plants employing a user-friendly genome editing toolkit. Plant Journal. 89 (1), 155-168 (2017).
  17. Sarrion-Perdigones, A., et al. GoldenBraid 2.0: a comprehensive DNA assembly framework for plant synthetic biology. Plant Physiology. 162 (3), 1618-1631 (2013).
  18. Agmon, N., et al. Yeast Golden Gate (yGG) for the efficient assembly of S. cerevisiae transcription units. ACS Synthetic Biology. 4 (7), 853-859 (2015).
  19. Hernanz-Koers, M., et al. FungalBraid: A GoldenBraid-based modular cloning platform for the assembly and exchange of DNA elements tailored to fungal synthetic biology. Fungal Genetics and Biology. 116, 51-61 (2018).
  20. Prielhofer, R., et al. GoldenPiCS: a Golden Gate-derived modular cloning system for applied synthetic biology in the yeast Pichia pastoris. BMC Systems Biology. 11 (1), 123 (2017).
  21. Celinska, E., et al. Gate Assembly system dedicated to complex pathway manipulation in Yarrowia lipolytica. Microbial Biotechnology. 10 (2), 450-455 (2017).
  22. Pullmann, P. K., et al. A modular two yeast species secretion system for the production and preparative application of fungal peroxygenases. bioRxiv. , (2020).
  23. Wu, D., Schandry, N., Lahaye, T. A modular toolbox for Golden-Gate-based plasmid assembly streamlines the generation of Ralstonia solanacearum species complex knockout strains and multi-cassette complementation constructs. Molecular Plant Pathology. 19 (6), 1511-1522 (2018).
  24. Moore, S. J., et al. EcoFlex: A multifunctional MoClo kit for E. coli synthetic biology. ACS Synthetic Biology. 5 (10), 1059-1069 (2016).
  25. Iverson, S. V., Haddock, T. L., Beal, J., Densmore, D. M. CIDAR MoClo: Improved MoClo assembly standard and new E. coli part library enable rapid combinatorial design for synthetic and traditional biology. ACS Synthetic Biology. 5 (1), 99-103 (2016).
  26. Vasudevan, R., et al. CyanoGate: A modular cloning suite for engineering cyanobacteria based on the plant MoClo syntax. Plant Physiology. 180 (1), 39-55 (2019).
  27. Leonard, S. P., et al. Genetic Engineering of bee gut microbiome acteria with a Ttoolkit for modular assembly of broad-host-range plasmids. ACS Synthetic Biology. 7 (5), 1279-1290 (2018).
  28. Schwartz, M. L., Jorgensen, E. M. SapTrap, a toolkit for high-throughput CRISPR/Cas9 gene modification in Caenorhabditis elegans. Genetica. 202 (4), 1277-1288 (2016).
  29. Martella, A., Matjusaitis, M., Auxillos, J., Pollard, S. M., Cai, Y. EMMA: An extensible mammalian modular assembly toolkit for the rapid design and production of diverse expression vectors. ACS Synthetic Biology. 6 (7), 1380-1392 (2017).
  30. Chiasson, D., et al. A unified multi-kingdom Golden Gate cloning platform. Scientific Reports. 9 (1), 10131 (2019).
  31. Denby, C. M., et al. Industrial brewing yeast engineered for the production of primary flavor determinants in hopped beer. Nature Communications. 9 (1), 965 (2018).
  32. Awan, A. R., et al. Biosynthesis of the antibiotic nonribosomal peptide penicillin in baker’s yeast. Nature Communications. 8, 15202 (2017).
  33. Leavitt, J. M., et al. Biosensor-Enabled Directed evolution to improve muconic acid production in Saccharomyces cerevisiae. Biotechnology Journal. 12 (10), (2017).
  34. Hsu, T. M., et al. Employing a biochemical protecting group for a sustainable indigo dyeing strategy. Nature Chemical Biology. 14 (3), 256-261 (2018).
  35. Grewal, P. S., Modavi, C., Russ, Z. N., Harris, N. C., Dueber, J. E. Bioproduction of a betalain color palette in Saccharomyces cerevisiae. Metabolic Engineering. 45, 180-188 (2018).
  36. Potapov, V., et al. Comprehensive profiling of four base overhang ligation fidelity by T4 DNA ligase and application to DNA assembly. ACS Synthetic Biology. 7 (11), 2665-2674 (2018).
  37. Vazquez-Vilar, M., et al. Software-assisted stacking of gene modules using GoldenBraid 2.0 DNA-assembly framework. Methods in Molecular Biology. 1284, 399-420 (2015).
  38. Pullmann, P., et al. Mutagenesis: An efficient multi-site-saturation mutagenesis approach by Golden Gate cloning with automated primer design. Scientific Reports. 9 (1), 10932 (2019).
  39. Engler, C., Sylvestre, M., Valla, S., Lale, R. . DNA Cloning and Assembly Methods. 1116, 119-131 (2014).
  40. Liu, H., Naismith, J. H. An efficient one-step site-directed deletion, insertion, single and multiple-site plasmid mutagenesis protocol. BMC Biotechnology. 8, 91 (2008).
  41. Chen, X., Zaro, J. L., Shen, W. C. Fusion protein linkers: property, design and functionality. Advanced Drug Delivery Reviews. 65 (10), 1357-1369 (2013).
  42. Mullis, K., et al. Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: the polymerase chain reaction. Cold Spring Harbor Symposia on Quantitative Biology. 51, 263-273 (1986).
  43. Naito, Y., Hino, K., Bono, H., Ui-Tei, K. CRISPRdirect: software for designing CRISPR/Cas guide RNA with reduced off-target sites. Bioinformatics. 31 (7), 1120-1123 (2015).
  44. Labun, K., et al. CHOPCHOP v3: expanding the CRISPR web toolbox beyond genome editing. Nucleic Acids Research. 47 (1), 171-174 (2019).
  45. Ryan, O. W., et al. Selection of chromosomal DNA libraries using a multiplex CRISPR system. Elife. 3, (2014).
  46. Gietz, R. D., Schiestl, R. H. High-efficiency yeast transformation using the LiAc/SS carrier DNA/PEG method. Nature Protocols. 2 (1), 31-34 (2007).
  47. Heintz, N., Gong, S. Small-scale preparations of yeast DNA. Cold Spring Harbor Protocols. 2020 (10), (2020).
  48. Hochrein, L., Mitchell, L. A., Schulz, K., Messerschmidt, K., Mueller-Roeber, B. L-SCRaMbLE as a tool for light-controlled Cre-mediated recombination in yeast. Nature Communications. 9 (1), 1931 (2018).
  49. Verwaal, R., et al. High-level production of beta-carotene in Saccharomyces cerevisiae by successive transformation with carotenogenic genes from Xanthophyllomyces dendrorhous. Applied and Environmental Microbiology. 73 (13), 4342-4350 (2007).
  50. Jones, E., Strathern, J. N., Jones, E. W., Broach, J. R., et al. . The Molecular Biology of the Yeast Saccharomyces: Metabolism and Gene Expression. 11, 181 (1982).
  51. Sehgal, N., et al. CRISPR gene editing in yeast: an experimental protocol for an upper-division undergraduate laboratory course. Biochemistry and Molecular Biology Education. 46 (6), 592-601 (2018).
  52. Stepanenko, O. V., Stepanenko, O. V., Kuznetsova, I. M., Verkhusha, V. V., Turoverov, K. K. Sensitivity of superfolder GFP to ionic agents. PLoS One. 9 (10), 110750 (2014).
check_url/it/61993?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Mukherjee, M., Caroll, E., Wang, Z. Q. Rapid Assembly of Multi-Gene Constructs using Modular Golden Gate Cloning. J. Vis. Exp. (168), e61993, doi:10.3791/61993 (2021).

View Video