Denne protokollen beskriver prosedyren for å fjerne leverens ventrale lobe i voksen sebrafisk for å muliggjøre studiet av leverregenerering.
Leversvikt er en av de ledende dødsårsakene over hele verden, og dødeligheten av kronisk leversykdom øker kraftig i USA. Sunn lever er i stand til å regenerere fra giftig skade, men i avansert leversykdom er leverens naturlige evne til å regenerere svekket. Sebrafisk har dukket opp som et kraftig eksperimentelt system for å studere regenerering. De er en ideell modell for å studere leverregenerering fra delvis hepatektomi, en prosedyre med direkte klinisk relevans der en del av leveren er kirurgisk fjernet, slik at resten er intakt. Det finnes ingen standardprotokoll for delvis hepatektomi. tidligere studier med denne modellen har brukt litt forskjellige protokoller og rapportert ulike resultater. Beskrevet her er en effektiv, reproduserbar protokoll for å utføre en delvis hepatektomi hos voksen sebrafisk. Vi bruker denne teknikken for å demonstrere at sebrafisk er i stand til epimorfisk regenerering av den resected lobe. Denne protokollen kan brukes til å forhøre mekanismene som kreves for leverregenerering i sebrafisk ytterligere.
Blant de faste organene hos mennesker er leveren det eneste organet som er i stand til regenerering1. Dette er kritisk, da leveren er et viktig organ, ansvarlig for viktige metabolske funksjoner, energilagring, blod avgiftning, sekresjon av plasmaproteiner og galleproduksjon2. Hepatocytter tapt på grunn av giftig eller inflammatorisk skade erstattes hovedsakelig via deling av de resterende hepatocyttene1. En klassisk eksperimentell modell for å studere leverregenerering er delvis hepatektomi, hvor individuelle lober i leveren fjernes, slik at de resterende lobene erintakte 3. Denne prosedyren ble opprinnelig utviklet hos rotter, hvor omtrent to tredjedeler av levermassen fjernes. Etter delvis hepatektomi hos pattedyr oppstår kompenserende regenerering i de resterende lobes til leveren gjenoppretter sin opprinnelige masse. Spesielt erstatter pattedyrlever ikke de manglende lobene.
Sebrafisk (Danio rerio) representerer en omsettelig modell for å studere voksen organregenerering4. Sebrafiskleveren, mens den er strukturelt forskjellig fra pattedyrleveren, består av samme celletyper og tjener samme funksjon som hos pattedyr2. Den består av tre lober, med to dorsale lober og en enkelt ventral lobe som er flatt langs tarmen. Delvis hepatektomi har tidligere blitt utført i sebrafisk, med motstridende kontoer om den nøyaktige regenereringsmodusen. Vanligvis utføres en tredjedel delvis hepatektomi ved fjerning av hele ventral lobe. Innledende rapporter indikerte at etter fjerning av ventral lobe, ble den fullstendig regenerert innen en uke5,6,7, noe som tyder på at i motsetning til pattedyrleveren er sebrafiskleveren i stand til epimorfisk regenerering. Etterfølgende studier viste at fjerning av ventral lobe resulterte i kompenserende regenerering i dorsale lober, i stedet for regenerering av den manglende ventral lobe, og til slutt utvinning av levermasse innen en uke8,9. Transkripsjonsprofilering av dorsale lober etter reseksjon av ventral lobe avslørte betydelige endringer forbundet med kompenserende regenerering10. Gitt at modusen for leverregenerering kan variere med skadeomfanget8, spekulerte vi i at avvikene i resultatene kan skyldes teknisk variasjon i den delvise hepatektomiprotokollen mellom forskningsgrupper.
Denne protokollen beskriver en prosedyre for å utføre en tredjedel delvis hepatektomi på voksen sebrafisk ved å fjerne ventral lobe. Denne teknikken vil være verdifull for å vurdere mekanismer for leverregenerering.
De anatomiske forskjellene mellom sebrafisk og pattedyrmodeller for leverregenerering gir unike utfordringer for leverreseksjon. Leveren i sebrafisk er i nærheten av hjertet og tarmen; utilsiktet skade på begge organene resulterer i økt dødelighet. Sebrafiskleveren er ikke innkapslet, noe som gjør det vanskeligere å skille seg fra tarmen. Leveren mottar næringsrikt blod fra tarmen gjennom portalårer. Hos pattedyr konvergerer årer som forlater tarmen på en primær portalåre som deretter deler seg når den komme…
The authors have nothing to disclose.
I.M.O. støttes av NIAAA (F32AA027135). W.G. støttes av R01DK090311, R01DK105198, R24OD017870 og Claudia Adams Barr Program for Excellence in Cancer Research. W.G. er en Pew Scholar i biomedisinsk vitenskap.
16% Paraformaldehyde Aqueous Solution, EM Grade | Electron Microscopy Sciences | 15700 | |
50 mL Falcon Centrifuge Tubes, Polypropylene, Sterile | Corning | 352098 | |
AS 82/220.R2 PLUS Analytical Balance | Bay State Scale & Systems, INC. | WL-104-1051 | |
Dumont #55 Forceps | Fine Science Tools | 11295-51 | |
EMS Kuehne Coverglass/Specimen Forceps | Electron Microscopy Sciences | 72997-07 | |
Epifluorescence microscope | Zeiss | Discovery.V8 | |
Mastertop Cellulose Cleaning Scrub Sponge | Amazon | B07CBSM53Z | |
PBS10X Liquid Conc 4L | EMD Millipore | 6505-4L | |
Super Fine Micro Scissors, 3 1/4" straight | Biomedical Research Instruments | 11-1020 | |
Tricaine methanesulfonate | Syndel | TRIC-M-GR-0010 | |
Tween 20, Fisher BioReagents | Fischer Scientific | BP337-500 |