Summary

イン・ヴィヴォ マウスの頭蓋骨骨髄における巨核球とプロ血小板の2光子イメージング

Published: July 28, 2021
doi:

Summary

ここでは、2光子顕微鏡を用いて生きているマウスの頭蓋骨の骨髄にメガカルヨサイトおよびプロ血小板をイメージングする方法について説明する。

Abstract

血小板は、骨髄に位置する特殊な細胞である巨核球によって産生される。メガカルヨサイトをリアルタイムで画像化する可能性とそのネイティブ環境は10年以上前に記述され、血小板形成のプロセスに新たな光を当てています。巨核球は、シヌソイド血管の内皮層を通して、プロ血滴と呼ばれる細長い突起を拡張する。本論文は、頭蓋骨骨髄およびサイヌシド血管において、蛍光標識された巨核球をリアルタイムで同時に画像化するプロトコルを提示する。この技術は、炎症反応を制限するために頭蓋骨をそのまま維持するマイナーな手術に依存しています。マウスの頭部は、呼吸の動きを防ぐために頭蓋骨に接着リングで固定化されています。

2光子顕微鏡を用いて、巨核球を最大数時間可視化することができ、細胞突起や原形の伸びの過程での細胞突起の観察が可能になります。これにより、突起の形態(幅、長さ、狭窄領域の存在)およびその伸び動作(速度、規則性、または一時停止または引き込みフェーズの存在)に関連するいくつかのパラメータを定量化することができます。この技術はまた、血小板速度および血流方向を決定するために、シヌソイド血管内の循環血小板の同時記録を可能にする。この方法は、遺伝子組み換えマウスを用いた血小板形成における関心遺伝子の役割を研究するのに特に有用であり、また、薬理学的検査(血小板産生障害の治療における薬剤の評価のメカニズムを研究する)にも適している。それは、インビボインビトロプロ血小板形成が異なるメカニズムに依存することが知られているように、特にインビトロ研究を補完するために、非常に貴重なツールとなっています。例えば、体外微小管は、それらそれ以上の前小板伸長に必要とすることが示されている。しかし、生体内では足場として機能し、伸びは主に血流力によって促進される。

Introduction

血小板は、骨髄に位置する巨核球専門細胞によって産生される。巨核球が循環中の血小板を放出する正確な方法は、骨を通してリアルタイムの出来事を観察する際の技術的な課題のために長い間不明瞭なままであった。2光子顕微鏡はこの課題を克服し、血小板形成プロセスの理解において大きな進歩を遂げてきた。初の インビボ 巨核球観測は、2007年にフォン・アンドリアンらの研究グループによって行われ、頭蓋骨1を通して蛍光巨核球が可視化された。これは、若年成マウスの前頭蓋頭の骨層が数十ミクロンの厚さを有し、基礎となる骨髄2における蛍光細胞の可視化を可能にするのに十分に透明であるために可能であった。

続く研究では、様々な条件下でプロ血小板形成を評価し、基礎となるメカニズム3、4、5、6を解読するために、この手順適用しました。これらの研究は、巨核球が、原形の血管の内皮的障壁を通って、プロ血小板と呼ばれる突起を動的に拡張するという決定的な証拠を提供した(図1)。これらのプロ血小板は、体積の数百の血小板を表す長い断片として放出される。血小板は、下流器官の微小循環におけるプロ血小板のリモデリング後、特に肺7に形成される。しかし、現在までに、正確なプロセスと分子メカニズムは議論の対象となっています。例えば、プロ血小板の伸びにおける細胞骨格タンパク質の提案された役割は、インビトロ条件とインビボ条件3の間で異なり、そして炎症条件でプロ血小板形成の違いが実証されている6。さらに複雑なことに、最近の研究では、プロ血小板駆動の概念に異議を唱え、生体内では、巨核球レベル8の膜芽出機構を通して血小板が本質的に形成されることを提案した。

本論文は、生きているマウスの頭蓋骨から骨髄の巨核球およびプロ血小板を観察するためのプロトコルを、低侵襲的な手順を用いて提示する。同様のアプローチは、他の骨髄細胞、特に造血幹細胞および前駆細胞9を可視化するために先に説明されている。ここでの焦点は、測定できるいくつかのパラメータ、特にプロ血小板形態と血小板速度を詳述するために、巨核球および血小板の観察である。このプロトコルは、蛍光トレーサーと薬物を注入し、頭蓋骨を通して観察するために頸静脈にカテーテルを挿入する方法を提示します。小骨骨は、リングが骨に接着されるように、軽度の手術を使用して露出されます。このリングは、頭を固定化し、呼吸による動きを防ぎ、水中媒体として生理食音で満たされたカップを形成する役割を果たす。この技術はi)血管壁と相互作用するサイヌシド幾何学および巨核球をリアルタイムで観察するのに適している。ii) プロ血小板形成、伸び、および放出の過程で巨核球に従う;iii)血小板の動きを測定して、複雑なシヌサイド血流を監視する。このプロトコルを使用して取得したデータは最近公開されています3.

Protocol

すべての動物実験は、ヨーロッパの基準2010/63/EUとストラスブール大学動物実験倫理に関するCREMEAS委員会(コンテテ・レジオナル・デティク・アン・マティエール・デ・エクスペリメンテーション・アニマル・ストラスブール、動物施設協定N°:G67-482-10、プロジェクトN°)に従って行われました 2018061211274514。 1. マウスの調製と頸静脈内のカテーテルの挿入 <p class="jove_conten…

Representative Results

このプロトコルを用いて、蛍光トレーサーQtracker-655は、矢印によって示されるように、頭蓋骨骨髄および流れ方向における吻像骨髄正弦管を画像に静脈内投与した(図4A、左)。mTmGマウスを用いて、各容器枝に20s以上のeGFP蛍光小板を記録し、その速度をImageJおよびGNUオクターブソフトウェアを用いて測定した(図4A、右)。流速と方向の異質性に注意し…

Discussion

血小板形成のメカニズムは、骨髄環境に大きく依存しています。そのため、生体内顕微鏡は、リアルタイムでプロセスを可視化する分野で重要なツールとなっています。蛍光巨核球を有するマウスは、条件付き蛍光遺伝子発現カセットを含む任意のfloxedレポーターマウスと巨核球中のCreリコンビナーゼを発現するマウスを交流することによって得ることができる。ここで、mTmGレポーターマウ…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

著者らは、フロリアン・ガートナー(オーストリアのクロスターノイブルク科学技術研究所)に、私たちが実験室で技術を確立した当時の2光子顕微鏡実験に関する専門家のアドバイスと、イメージングセンターIGBMC /CBI(フランスのイキルヒ)のイヴ・ルッツの専門知識と2光子顕微鏡の助けに感謝したいと考えています。また、ジャン=イヴ・リンケルの技術的な助けと、イネス・ギナードのスキーマの描画に対して、図1に感謝します。ARMESA(2光子顕微鏡の獲得に向けた支援を受けたARMESA(メデシン・エ・サンテ・プブリケ協会)に感謝します。ABは、エタブリセ・フランセ・デュ・サン(APR2016)とアジェンス・ナショナル・デ・ラ・レシェルシュ(ANR-18-CE14-0037-01)の博士研究員によって支えられました。

Materials

GNU Octave software GNU Project https://www.gnu.org/software/octave/
 Histoacryl 5 x 0, 5 mL Braun 1050052 injectable solution of surgical glue
HyD hybrid detectors Leica Microsystems 4tunes Leica Microsystems
ImageJ GNU project Minimum version required
Imalgene/Ketamine 1000 fl/10 mL Boehring 03661103003199 eye protection
Leica SP8 MP DIVE microscope equipped with a 25x water objective, numerical aperture of 0.95 Leica Microsystems simultaneous excitation of AlexaFluor-488 and Qtracker-655
Matlab MathWorks https://www.mathworks.com/
Ocrygel 10 g Laboratoires T.V.M. 03700454505621 Silicon dental paste blue and yellow
Picodent twinsin speed Rotec 13001002
Qtracker 655 vascular label Invitrogen Q21021MP injectable solution
Resonant scanner, 8 or 12 kHz
Rompun Xylazine 2% fl/25 mL Bayer 04007221032311
Superglue gel to glue the ring to the bone
Surflo IV catheter – Blue 22 G Terumo SR-OX2225C1
Ti:Saph pulsing laser (Coherent) (femtosecond) Coherent

Riferimenti

  1. Junt, T., et al. Dynamic visualization of thrombopoiesis within bone marrow. Science. 317 (5845), 1767-1770 (2007).
  2. Mazo, I. B., et al. Hematopoietic progenitor cell rolling in bone marrow microvessels: parallel contributions by endothelial selectins and vascular cell adhesion molecule 1. Journal of Experimenal Medicine. 188 (3), 465-474 (1998).
  3. Bornert, A., et al. Cytoskeletal-based mechanisms differently regulate in vivo and in vitro proplatelet formation. Haematologica. , (2020).
  4. Zhang, L., et al. Sphingosine kinase 2 (Sphk2) regulates platelet biogenesis by providing intracellular sphingosine 1-phosphate (S1P). Blood. 122 (5), 791-802 (2013).
  5. Kowata, S., et al. Platelet demand modulates the type of intravascular protrusion of megakaryocytes in bone marrow. Thrombosis and Haemostasis. 112 (4), 743-756 (2014).
  6. Nishimura, S., et al. IL-1alpha induces thrombopoiesis through megakaryocyte rupture in response to acute platelet needs. Journal of Cell Biology. 209 (3), 453-466 (2015).
  7. Lefrancais, E., et al. The lung is a site of platelet biogenesis and a reservoir for haematopoietic progenitors. Nature. 544 (7648), 105-109 (2017).
  8. Potts, K. S., et al. Membrane budding is a major mechanism of in vivo platelet biogenesis. Journal of Experimental Medicine. 217 (9), 20191206 (2020).
  9. Scott, M. K., Akinduro, O., Lo Celso, C. In vivo 4-dimensional tracking of hematopoietic stem and progenitor cells in adult mouse calvarial bone marrow. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (91), e51683 (2014).
  10. Muzumdar, M. D., Tasic, B., Miyamichi, K., Li, L., Luo, L. A global double-fluorescent Cre reporter mouse. Genesis. 45 (9), 593-605 (2007).
  11. Tiedt, R., Schomber, T., Hao-Shen, H., Skoda, R. C. Pf4-Cre transgenic mice allow the generation of lineage-restricted gene knockouts for studying megakaryocyte and platelet function in vivo. Blood. 109 (4), 1503-1506 (2007).
  12. Pertuy, F., et al. Broader expression of the mouse platelet factor 4-cre transgene beyond the megakaryocyte lineage. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 13 (1), 115-125 (2015).
  13. Calaminus, S. D., et al. Lineage tracing of Pf4-Cre marks hematopoietic stem cells and their progeny. PLoS One. 7 (12), 51361 (2012).
  14. Stegner, D., et al. Thrombopoiesis is spatially regulated by the bone marrow vasculature. Nature Communications. 8 (1), 127 (2017).
  15. Drew, P. J., Blinder, P., Cauwenberghs, G., Shih, A. Y., Kleinfeld, D. Rapid determination of particle velocity from space-time images using the Radon transform. Journal of Computational Neuroscience. 29 (1-2), 5-11 (2010).
  16. Nakagawa, T., et al. Ketamine suppresses platelet aggregation possibly by suppressed inositol triphosphate formation and subsequent suppression of cytosolic calcium increase. Anesthesiology. 96 (5), 1147-1152 (2002).
  17. Kim, S., Lin, L., Brown, G. A. J., Hosaka, K., Scott, E. W. Extended time-lapse in vivo imaging of tibia bone marrow to visualize dynamic hematopoietic stem cell engraftment. Leukemia. 31 (7), 1582-1592 (2017).
  18. Kohler, A., Geiger, H., Gunzer, M. Imaging hematopoietic stem cells in the marrow of long bones in vivo. Methods in Molecular Biology. 750, 215-224 (2011).
  19. Lewandowski, D., et al. In vivo cellular imaging pinpoints the role of reactive oxygen species in the early steps of adult hematopoietic reconstitution. Blood. 115 (3), 443-452 (2010).
  20. Reismann, D., et al. Longitudinal intravital imaging of the femoral bone marrow reveals plasticity within marrow vasculature. Nature Communications. 8 (1), 2153 (2017).
  21. Chen, Y., Maeda, A., Bu, J., DaCosta, R. Femur window chamber model for in vivo cell tracking in the murine bone marrow. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (113), e542205 (2016).
  22. Guesmi, K., et al. Dual-color deep-tissue three-photon microscopy with a multiband infrared laser. Light Science & Applications. 7, 12 (2018).
  23. Wang, T., et al. Three-photon imaging of mouse brain structure and function through the intact skull. Nature Methods. 15 (10), 789-792 (2018).
  24. Kim, J., Bixel, M. G. Intravital multiphoton imaging of the bone and bone marrow environment. Cytometry A. 97 (5), 496-503 (2020).
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Citazione di questo articolo
Bornert, A., Pertuy, F., Lanza, F., Gachet, C., Léon, C. In Vivo Two-photon Imaging of Megakaryocytes and Proplatelets in the Mouse Skull Bone Marrow. J. Vis. Exp. (173), e62515, doi:10.3791/62515 (2021).

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