Summary

Rating L-DOPA-induceret dyskinesier i den ensidigt 6-OHDA-læsionerede rottemodel af Parkinsons sygdom

Published: October 04, 2021
doi:

Summary

Gnavermodeller af L-DOPA-inducerede dyskinesier er uvurderlige værktøjer til at identificere terapeutiske interventioner for at dæmpe udviklingen eller lindre de manifestationer, der opstår på grund af gentagen administration af L-DOPA. Denne protokol demonstrerer, hvordan man inducerer og analyserer dyskinetisk-lignende bevægelser i den ensidigt 6-OHDA-læsionerede rottemodel af Parkinsons sygdom.

Abstract

L-DOPA-inducerede dyskinesier (LID’er) henviser til motoriske komplikationer, der opstår ved langvarig L-DOPA-administration til patienter med Parkinsons sygdom (PD). Det mest almindelige mønster, der observeres i klinikken, er topdosis dyskinesi, som består af kliniske manifestationer af choreiform, dystoniske og ballistiske bevægelser. 6-hydroxydopamin (6-OHDA) rottemodellen af PD efterligner flere egenskaber ved LID’er. Efter gentagen L-DOPA-administration udviser 6-OHDA-læsionerede rotter dyskinetisk-lignende bevægelser (f.eks. Unormale ufrivillige bevægelser, AIM’er). Denne protokol demonstrerer, hvordan man inducerer og analyserer AIM’er hos 6-OHDA-læsionerede rotter med 90% -95% dopaminerg udtømning i nigrostriatalvejen. Gentagen administration (3 uger) af L-DOPA (5 mg/kg kombineret med 12,5 mg/kg benserazid) kan fremkalde udviklingen af AIM’er. Tidsforløbsanalysen afslører en signifikant stigning i AIM’er efter 30-90 min (topdosis dyskinesi). Gnavermodeller af LID’er er et vigtigt præklinisk værktøj til at identificere effektive antidyskinetiske interventioner.

Introduction

Dopaminprecursoren L-3,4-dihydroxyphenylalanin (L-DOPA) repræsenterer den mest effektive behandling af de motoriske symptomer på Parkinsons sygdom (PD)1. L-DOPA-behandling kan forbedre motoriske symptomer forbundet med PD, men mister effektivitet med tiden. Motoriske udsving såsom “afslidningsudsving” eller “dosisafslutningsforringelse” manifesterer sig klinisk som en forkortet varighed af effekten af enkelte L-DOPA-doser2. I andre tilfælde består kliniske manifestationer af langsomme vridningsbevægelser og unormale stillinger (dystoni)3 og opstår, når dopaminniveauet er lavt (dystoni uden for perioden)4. På den anden side vises L-DOPA-inducerede dyskinesier (LID’er), når dopaminniveauerne i plasmaet og hjernen er høje5.

LID’er producerer svækkende bivirkninger, der inkluderer motoriske komplikationer såsom choreiform, dystoniske og ballistiske6-satser. Når de er etableret, forekommer LID’er efter hver L-DOPA-administration. Motoriske komplikationer forekommer hos 40% -50% af PD-patienter, der gennemgår L-DOPA-behandling i 5 år, og forekomsten stiger over årene7. Selvom de patofysiologiske mekanismer, der er involveret i udviklingen af LID’er hos PD-patienter, endnu ikke er fuldt belyst, er omfanget af dopaminerg denervation, pulsatil L-DOPA-administration, nedstrøms ændringer i striatale proteiner og gener og abnormiteter i ikke-dopamintransmittersystemer faktorer, der bidrager til udviklingen af disse uønskede bivirkninger 6,8,9,10.

Neurotoksinet 6-hydroxydopamin (6-OHDA) er et velkarakteriseret værktøj til at studere PD hos gnavere11,12,13,14. Da 6-OHDA ikke krydser blod-hjerne-barrieren, skal den injiceres direkte i den nigrostriatale vej. 6-OHDA-induceret dopaminerg udtømning er koncentrations- og stedafhængig15. Ensidig administration af 6-OHDA ved det mediale forhjernebundt (MFB) kan producere alvorlig (>90%) nigrostriatal skade hos gnavere16,17,18,19. Kronisk administration af L-DOPA til svær ensidigt 6-OHDA-læsionerede gnavere forårsager udseendet af dyskinetisk-lignende bevægelser kaldet unormale ufrivillige bevægelser (AIM’er). Dyskinetisk-lignende bevægelser hos gnavere deler lignende molekylære, funktionelle og farmakologiske mekanismer relateret til LID’er hos PD-patienter5. Derfor er 6-OHDA-læsionerede rotter20 og mus21 værdifulde prækliniske modeller til undersøgelse af LID’er. Når de behandles kronisk (7-21 dage) med terapeutiske doser af L-DOPA (5-20 mg/kg), viser ensidigt 6-OHDA-læsionerede rotter og mus en gradvis udvikling af AIM’er, der påvirker forbens-, bagagerums- og orofacialmusklerne i modsætning til læsionen 17,18,19,20,22,23,24 . Disse bevægelser præsenteres på et tidsforløb svarende til L-DOPA-induceret topdosis dyskinesier hos PD-patienter25 og er karakteriseret ved hyperkinetiske bevægelser og dystoni5. AIM’er scores normalt baseret på deres sværhedsgrad (f.eks. Når et specifikt AIM er til stede) og amplitude (f.eks. Karakteriseret ved amplituden af hver bevægelse)5,23,25.

6-OHDA-læsionerede gnavermodeller af LID’er har ansigtsvaliditet (dvs. modellen har flere egenskaber, der ligner den menneskelige tilstand)5,11,26,27,28. Gnaver AIM’er, svarende til hvad der forekommer hos PD-patienter, ses som hyperkinetiske (forben og orolinguale) og dystoniske (aksiale) bevægelser29 og efterligner dyskinesi med topdosis. På molekylært og funktionelt niveau deler gnavermodeller mange patologiske egenskaber med PD-patienter5, såsom opregulering af FosB / ΔFosB 19,26,30,31,32,33 og serotonintransportør (SERT)34,35 . Med hensyn til prædiktiv validitet har lægemidler, der reducerer LID’er hos PD-patienter (f.eks. N-methyl-D-aspartat (NMDA) receptorantagonisten amantadin), antidyskinetisk effekt i gnavermodellen 22,36,37,38,39.

Gnaver AIM’s rating skala blev oprettet baseret på fire AIM’er undertyper, der omfatter AIM’er, der påvirker hoved, nakke og bagagerum (aksiale AIM’er), hyperkinetiske forbensbevægelser (lemmer AIM’er) og dyskinetisk-lignende orolinguale bevægelser (orolinguale AIM’er). Selvom kontralateral rotation (lokomotiv-AIM’er) også er til stede i ensidigt læsionerede gnavere 20,22,23,25,40, er det ikke blevet scoret som en dyskinetisk-lignende bevægelse, da den muligvis ikke repræsenterer et specifikt mål for LIDs 22,37,41.

Her vil vi beskrive, hvordan man inducerer og analyserer dyskinetisk-lignende bevægelser (aksiale, lemmer og orolinguale AIM’er) i den svære (>90%) ensidigt 6-OHDA-læsionerede rottemodel af PD. Vi organiserede vores protokol baseret på den tidligere litteratur og vores laboratorieekspertise.

Protocol

Alle eksperimenter blev udført i overensstemmelse med Den etiske komité for Det Filosofiske, Naturvidenskabelige Fakultet og Breve i Ribeirão Preto (CEUA / FFCLRP 18.5.35.59.5). 1. 6-OHDA læsion Brug Sprague-Dawley hanrotter, der vejer 200-250 g i begyndelsen af forsøgene (6 uger). Opstald dyrene (2-3 pr. bur) under standard laboratorieforhold (12:12 h lys/mørk cyklus, lys tændt kl. 06:00, temperaturstyrede faciliteter (22-24 °C), med mad og vand til rådighe…

Representative Results

Selvom de AIM’er, der observeres hos rotter, er enklere og begrænsede sammenlignet med dem, der observeres hos mennesker og ikke-menneskelige primater, reproducerer denne model både hyperkinetiske og dystonlignende bevægelser induceret af kronisk L-DOPA-administration. Her præsenterer vi data indsamlet fra en gruppe (n = 10) af ensidigt 6-OHDA-læsionerede rotter kronisk behandlet med L-DOPA (5 mg / kg kombineret med 12,5 mg / kg benserazid) i 3 uger (mandag til fredag). Bemærk, at dataene i figur <strong class="xfi…

Discussion

Denne protokol demonstrerer, hvordan man inducerer og analyserer AIM’er i rottemodellen af PD induceret ved ensidig mikroinjektion af 6-OHDA i MFB. Kronisk daglig administration af lave doser af L-DOPA (5 mg/kg kombineret med 12,5 mg/kg benserazid) medførte udvikling af AIM’er i løbet af de 3 ugers behandling. Tidsmæssig analyse afslørede en signifikant stigning i AIM’er, og topdosis dyskinesi observeres mellem 30 og 90 minutter efter L-DOPA-administration. AIM’er er gentagne og formålsløse bevægelser, der påvirk…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af São Paulo Research Foundation (FAPESP, bevilling 2017/00003-0). Vi er taknemmelige for koordineringen til forbedring af personale på videregående uddannelser (CAPES). Vi takker Dr. Anthony R. West, Dr. Heinz Steiner og Dr. Kuei Y. Tseng for støtte og vejledning.

Materials

6-hydroxydopamine hydrobromide Sigma-Aldrich, USA H6507 Neurotoxin that produces degeneration of catecholaminergic terminals
Benzerazide hydrochloride Sigma B7283 Peripheral dopa-decarboxylase inhibitor
Camera Bullet IR Turbo HD (HD-TVI)  2.8mm B HIKVISION DS-2CE16C0T-IRP Camera used to record all behavior
Imipramine hidrochloride Alfa Aesar J63723 Norepinephrine transporter inhibitor (NET) used to protect noradrenergic neurons from 6-OHDA
Ketamine hydrochloride Ceva Animal Health Anesthesia for surgical intervention
L-3,4-dihydroxyphenylalanine (L-DOPA) methyl ester (hydrochloride) Cayman Chemical Company 16149 Dopamine precursor
Mirrors Used to observe the behavior of animals during experiments in all directions
Needles 0.30 x 13 mm PrecisionGlide Needles used to inject drugs
Sodium chloride (NaCl) Samtec Salt
Syringes 1 ml Sterile BD Plastipak Syringes used to inject drugs
Transparent cylinders Used to record animal behavior during experiments
Xylazine hydrochloride Ceva Animal Health Sedative, analgesic and muscle relaxant for surgical intervention

Riferimenti

  1. Jenner, P. Molecular mechanisms of L-DOPA-induced dyskinesia. Nature Reviews. Neuroscience. 9 (9), 665-677 (2008).
  2. Nutt, J. G. Levodopa-induced dyskinesia: review, observations, and speculations. Neurology. 40 (2), 340-345 (1990).
  3. Luquin, M. R., Scipioni, O., Vaamonde, J., Gershanik, O., Obeso, J. A. Levodopa-induced dyskinesias in Parkinson’s disease: clinical and pharmacological classification. Movement Disorders: Official Journal of the Movement Disorder Society. 7 (2), 117-124 (1992).
  4. Fabbrini, G., Brotchie, J. M., Grandas, F., Nomoto, M., Goetz, C. G. Levodopa-induced dyskinesias. Movement Disorders: Official Journal of the Movement Disorder Society. 22 (10), 1379 (2007).
  5. Cenci, M. A., Crossman, A. R. Animal models of l-dopa-induced dyskinesia in Parkinson’s disease. Movement Disorders: Official Journal of the Movement Disorder Society. 33 (6), 889-899 (2018).
  6. Bastide, M. F., et al. Pathophysiology of L-dopa-induced motor and non-motor complications in Parkinson’s disease. Progress in Neurobiology. 132, 96-168 (2015).
  7. Manson, A., Stirpe, P., Schrag, A. Levodopa-induced-dyskinesias clinical features, incidence, risk factors, management and impact on quality of life. Journal of Parkinson’s Disease. 2 (3), 189-198 (2012).
  8. Grandas, F., Galiano, M. L., Tabernero, C. Risk factors for levodopa-induced dyskinesias in Parkinson’s disease. Journal of Neurology. 246 (12), 1127-1133 (1999).
  9. Schrag, A., Quinn, N. Dyskinesias and motor fluctuations in Parkinson’s disease. A community-based study. Brain: A Journal of Neurology. 123, 2297-2305 (2000).
  10. Bezard, E., Brotchie, J. M., Gross, C. E. Pathophysiology of levodopa-induced dyskinesia: potential for new therapies. Nature Reviews. Neuroscience. 2 (8), 577-588 (2001).
  11. Tronci, E., Shin, E., Björklund, A., Carta, M. Amphetamine-induced rotation and L-DOPA-induced dyskinesia in the rat 6-OHDA model: a correlation study. Neuroscience Research. 73 (2), 168-172 (2012).
  12. Duty, S., Jenner, P. Animal models of Parkinson’s disease: a source of novel treatments and clues to the cause of the disease. British Journal of Pharmacology. 164 (4), 1357-1391 (2011).
  13. Ungerstedt, U. 6-Hydroxy-dopamine induced degeneration of central monoamine neurons. European Journal of Pharmacology. 5 (1), 107-110 (1968).
  14. Ungerstedt, U. Postsynaptic supersensitivity after 6-hydroxy-dopamine induced degeneration of the nigro-striatal dopamine system. Acta Physiologica Scandinavica. Supplementum. 367, 69-93 (1971).
  15. Kirik, D., Rosenblad, C., Bjorklund, A. Characterization of behavioral and neurodegenerative changes following partial lesions of the nigrostriatal dopamine system induced by intrastriatal 6-hydroxydopamine in the rat. Experimental Neurology. 152, 259-277 (1998).
  16. Zahm, D. S. Compartments in rat dorsal and ventral striatum revealed following injection of 6-hydroxydopamine into the ventral mesencephalon. Brain Research. 552 (1), 164-169 (1991).
  17. Padovan-Neto, F. E., Echeverry, M. B., Tumas, V., Del-Bel, E. A. Nitric oxide synthase inhibition attenuates L-DOPA-induced dyskinesias in a rodent model of Parkinson’s disease. Neuroscienze. 159 (3), 927-935 (2009).
  18. Padovan-Neto, F. E., et al. Antidyskinetic effect of the neuronal nitric oxide synthase inhibitor is linked to decrease of FosB/deltaFosB expression. Neuroscience Letters. 541, 126-131 (2013).
  19. Padovan-Neto, F. E., Cavalcanti-Kiwiatkoviski, R., Carolino, R. O., Anselmo-Franci, J., Del Bel, E. Effects of prolonged neuronal nitric oxide synthase inhibition on the development and expression of L-DOPA-induced dyskinesia in 6-OHDA-lesioned rats. Neuropharmacology. 89, 87-99 (2015).
  20. Winkler, C., Kirik, D., Björklund, A., Cenci, M. A. L-DOPA-induced dyskinesia in the intrastriatal 6-hydroxydopamine model of parkinson’s disease: relation to motor and cellular parameters of nigrostriatal function. Neurobiology of Disease. 10 (2), 165-186 (2002).
  21. Francardo, V., et al. Impact of the lesion procedure on the profiles of motor impairment and molecular responsiveness to l-DOPA in the 6-hydroxydopamine mouse model of Parkinson’s disease. Neurobiology of Disease. 42, 327-340 (2011).
  22. Lundblad, M., et al. Pharmacological validation of behavioural measures of akinesia and dyskinesia in a rat model of Parkinson’s disease. The European Journal of Neuroscience. 15 (1), 120-132 (2002).
  23. Cenci, M. A., Lee, C. S., Björklund, A. L-DOPA-induced dyskinesia in the rat is associated with striatal overexpression of prodynorphin- and glutamic acid decarboxylase mRNA. The European Journal of Neuroscience. 10 (8), 2694-2706 (1998).
  24. Henry, B., Crossman, A. R., Brotchie, J. M. Characterization of enhanced behavioral responses to L-DOPA following repeated administration in the 6-hydroxydopamine-lesioned rat model of Parkinson’s disease. Experimental Neurology. 151 (2), 334-342 (1998).
  25. Lee, C. S., Cenci, M. A., Schulzer, M., Björklund, A. Embryonic ventral mesencephalic grafts improve levodopa-induced dyskinesia in a rat model of Parkinson’s disease. Brain: A Journal of Neurology. 123, 1365-1379 (2000).
  26. Andersson, M., Hilbertson, A., Cenci, M. A. Striatal fosB expression is causally linked with l-DOPA-induced abnormal involuntary movements and the associated upregulation of striatal prodynorphin mRNA in a rat model of Parkinson’s disease. Neurobiology of Disease. 6 (6), 461-474 (1999).
  27. Lindgren, H. S., Rylander, D., Ohlin, K. E., Lundblad, M., Cenci, M. A. The “motor complication syndrome” in rats with 6-OHDA lesions treated chronically with L-DOPA: relation to dose and route of administration. Behavioural Brain Research. 177 (1), 150-159 (2007).
  28. Lane, E. L., Dunnett, S. . Animal Models of Movement Disorders: volume I, Neuromethods. 61, (2011).
  29. Carlsson, T., Carta, M., Winkler, C., Björklund, A., Kirik, D. Serotonin neuron transplants exacerbate l-DOPA-induced dyskinesias in a rat model of Parkinson’s disease. Journal of Neuroscience. 27 (30), 8011-8022 (2007).
  30. Lundblad, M., Picconi, B., Lindgren, H., Cenci, M. A. A model of L-DOPA-induced dyskinesia in 6-hydroxydopamine lesioned mice: relation to motor and cellular parameters of nigrostriatal function. Neurobiology of Disease. 16 (1), 110-123 (2004).
  31. Fasano, S., et al. Inhibition of Ras-guanine nucleotide-releasing factor 1 (Ras-GRF1) signaling in the striatum reverts motor symptoms associated with L-dopa-induced dyskinesia. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (50), 21824-21829 (2010).
  32. Berton, O., et al. Striatal overexpression of DeltaJunD resets L-DOPA-induced dyskinesia in a primate model of Parkinson disease. Biological Psychiatry. 66 (6), 554-561 (2009).
  33. Lindgren, H. S., et al. Putaminal upregulation of FosB/ΔFosB-like immunoreactivity in Parkinson’s disease patients with dyskinesia. Journal of Parkinson’s Disease. 1 (4), 347-357 (2011).
  34. Rylander, D., et al. Maladaptive plasticity of serotonin axon terminals in levodopa-induced dyskinesia. Annals of Neurology. 68 (5), 619-628 (2010).
  35. Smith, R., et al. The role of pallidal serotonergic function in Parkinson’s disease dyskinesias: a positron emission tomography study. Neurobiology of Aging. 36 (4), 1736-1742 (2015).
  36. Lundblad, M., et al. Pharmacological validation of a mouse model of l-DOPA-induced dyskinesia. Experimental Neurology. 194 (1), 66-75 (2005).
  37. Dekundy, A., Lundblad, M., Danysz, W., Cenci, M. A. Modulation of L-DOPA-induced abnormal involuntary movements by clinically tested compounds: further validation of the rat dyskinesia model. Behavioural Brain Research. 179 (1), 76-89 (2007).
  38. Blanchet, P. J., Konitsiotis, S., Chase, T. N. Amantadine reduces levodopa-induced dyskinesias in parkinsonian monkeys. Movement Disorders: Official Journal of the Movement Disorder Society. 13 (5), 798-802 (1998).
  39. Verhagen Metman, I., et al. Amantadine as treatment for dyskinesias and motor fluctuations in Parkinson’s disease. Neurology. 50 (5), 1323-1326 (1998).
  40. Cenci, M. A., Lundblad, M. Ratings of L-DOPA-induced dyskinesia in the unilateral 6-OHDA lesion model of Parkinson’s disease in rats and mice. Current Protocols in Neuroscience. , 25 (2007).
  41. Dupre, K. B., et al. Effects of coincident 5- HT1A receptor stimulation and NMDA receptor antagonism on L-DOPA-induced dyskinesia and rotational behaviors in the hemi-parkinsonian rat. Psychopharmacology (Berl). 199 (1), 99-108 (2008).
  42. Guimarães, P. R., Bariotto-dos-Santos, K., Ribeiro, D. L., Padovan-Neto, F. E. The 6-hydroxydopamine (6-OHDA) rat model of Parkinson’s disease. Journal of Visualized Experiments: JoVE. , (2021).
  43. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , (1998).
  44. Tseng, K. Y., et al. Inhibition of striatal soluble guanylyl cyclase-cGMP signaling reverses basal ganglia dysfunction and akinesia in experimental parkinsonism. PloS One. 6 (11), 27187 (2011).
  45. Padovan-Neto, F. E., et al. Selective regulation of 5-HT1B serotonin receptor expression in the striatum by dopamine depletion and repeated L-DOPA treatment: Relationship to L-DOPA-induced dyskinesias. Molecular Neurobiology. 57 (2), 736-751 (2020).
  46. Olsson, M., Nikkhah, G., Bentlage, C., Bjorklund, A. Forelimb akinesia in the rat Parkinson model: Differential effects of dopamine agonists and nigral transplants as assessed by a new stepping test. Journal of Neuroscience. 15, 3863-3875 (1995).
  47. Chang, J. W., Wachtel, S. R., Young, D., Kang, U. J. Biochemical and anatomical characterization of forepaw adjusting steps in rat models of Parkinson’s disease lesions. Neuroscienze. 88, 617-628 (1995).
  48. Jayasinghe, V. R., Flores-Barrera, E., West, A. R., Tseng, K. Y. Frequency-dependent corticostriatal disinhibition resulting from chronic dopamine depletion: Role of local striatal cGMP and GABAAR signaling. Cerebral Cortex. 27, 625-634 (2017).
  49. Picconi, B., et al. Loss of bidirectional striatal synaptic plasticity in L-DOPA-induced dyskinesia. Nature Neuroscience. 6 (5), 501-506 (2003).
  50. Carta, M., et al. Role of striatal L-DOPA in the production of dyskinesia in 6-hydroxydopamine lesioned rats. Journal of Neurochemistry. 96 (6), 1718-1727 (2006).
  51. Westin, J. E., Andersson, M., Lundblad, M., Cenci, M. A. Persistent changes in striatal gene expression induced by long-term L-DOPA treatment in a rat model of Parkinson’s disease. The European Journal of Neuroscience. 14 (7), 1171-1176 (2001).
  52. Bariotto-Dos-Santos, K., et al. Repurposing an established drug: an emerging role for methylene blue in L-DOPA-induced dyskinesia. The European Journal of Neuroscience. 49 (6), 869-882 (2018).
  53. Lindgren, H. S., Lane, E. L., Lane, E., Dunnett, S. Rodent Models of l-DOPA-Induced Dyskinesia. Animal Models of Movement Disorders. Neuromethods. 61, (2011).
  54. Doucet, J., et al. Drug-drug interactions related to hospital admissions in older adults: A prospective study of 1000 patients. Journal of the American Geriatrics Society. 44, 944-948 (1996).
  55. Ohlin, K. E., et al. Vascular endothelial growth factor is upregulated by L-dopa in the parkinsonian brain: implications for the development of dyskinesia. Brain: A Journal of Neurology. 134, 2339-2357 (2011).
  56. Jourdain, V. A., et al. Increased putamen hypercapnic vasoreactivity in levodopa-induced dyskinesia. JCI insight. 2 (20), 96411 (2017).
  57. Thiele, S. L., et al. Generation of a model of l-DOPA-induced dyskinesia in two different mouse strains. Journal of Neuroscience Methods. 197 (2), 193-208 (2011).
  58. Dos-Santos-Pereira, M., et al. Contributive role of TNF-α to L-DOPA-induced dyskinesia in a unilateral 6-OHDA lesion model of Parkinson’s disease. Frontiers in Pharmacology. 11, 617085 (2021).
  59. Cenci, M. A., Ohlin, K. E., Odin, P. Current options and future possibilities for the treatment of dyskinesia and motor fluctuations in Parkinson’s disease. CNS & Neurological Disorders Drug Targets. 10 (6), 670-684 (2011).
  60. Cenci, M. A. Presynaptic mechanisms of l-DOPA-induced dyskinesia: The findings, the debate, and the therapeutic implications. Frontiers in Neurology. 5, 242 (2014).
  61. Langston, J. W., Quik, M., Petzinger, G., Jakowec, M., Di Monte, D. A. Investigating levodopa-induced dyskinesias in the parkinsonian primate. Annals of Neurology. 47 (4), 79-89 (2000).
  62. Chase, T. N. Levodopa therapy: consequences of the nonphysiologic replacement of dopamine. Neurology. 50 (5), 17-25 (1998).
check_url/it/62924?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Bariotto-dos-Santos, K., Ribeiro, D. L., Guimarães, R. P., Padovan-Neto, F. E. Rating L-DOPA-Induced Dyskinesias in the Unilaterally 6-OHDA-Lesioned Rat Model of Parkinson’s Disease. J. Vis. Exp. (176), e62924, doi:10.3791/62924 (2021).

View Video