Summary

ESLP için Juvenil Domuz Modelinde Sol Akciğer Ortotopik Transplantasyonu

Published: February 14, 2022
doi:

Summary

Bu protokol, ESLP araştırmalarında kullanılmak üzere tasarlanmış ortotopik sol akciğer allotransplantasyonunun bir juvenil domuz modelini açıklamaktadır. Anestezi ve cerrahi tekniklerin yanı sıra kritik adımlar ve sorun gidermeye odaklanılır.

Abstract

Akciğer nakli, dünya çapında yılda 4.600’den fazla akciğer nakli ile son dönem akciğer hastalığı için altın standart tedavidir. Bununla birlikte, akciğer nakli, mevcut donör organların yetersizliği ile sınırlıdır. Bu nedenle, yüksek bekleme listesi ölüm oranı vardır. Ex situ akciğer perfüzyonu (ESLP) bazı merkezlerde donör akciğer kullanım oranlarını %15-20 oranında artırmıştır. ESLP, marjinal donör akciğerlerini değerlendirmek ve yenilemek için bir yöntem olarak uygulanmıştır ve genişletilmiş kriterli donör (ECD) akciğerlerinin transplantasyonunu takiben kabul edilebilir kısa ve uzun vadeli sonuçlar göstermiştir. Devam eden in vitro araştırma bulgularını doğrulamak için büyük hayvan (in vivo) transplantasyon modelleri gereklidir. İnsanlar ve domuzlar arasındaki anatomik ve fizyolojik farklılıklar önemli teknik ve anestezik zorluklar doğurmaktadır. Kolayca tekrarlanabilir bir nakil modeli, mevcut ESLP stratejilerinin in vivo olarak doğrulanmasına ve donör akciğer fonksiyonunu iyileştirmek için tasarlanmış çeşitli müdahalelerin klinik öncesi değerlendirmesine izin verecektir. Bu protokol, ortotopik sol akciğer allotransplantasyonunun bir domuz modelini tanımlar. Bu, anestezik ve cerrahi teknikleri, özelleştirilmiş bir cerrahi kontrol listesini, sorun gidermeyi, modifikasyonları ve yaklaşımın yararlarını ve sınırlamalarını içerir.

Introduction

Akciğer nakli, son dönem akciğer hastalığı için önde gelen uzun vadeli tedavidir. Dünya çapında yılda 4.600’den fazla akciğer nakli gerçekleştirilmektedir1. Bununla birlikte, akciğer nakli şu anda önemli sınırlamalara sahiptir. Birincisi, organ ihtiyacı mevcut bağışçıları gölgede bırakmaya devam ediyor. 2012’den bu yana akciğer nakli oranlarının her yıl artmasına rağmen, nakil için daha fazla adayın listelenmesi, donör sayısındaki artış ve kurtarılan organların daha iyi kullanılmasının birleşik etkileri nedeniyle, nakil bekleme listesi mortalitesi önemli ölçüde azalmamıştır2. Organ kalitesi endişeleri, bildirilen organ kullanım oranlarının %20-30 kadar düşük olmasıyla bir başka önemli sınırlamayı temsil etmektedir3,4,5. Son olarak, akciğer transplantasyonunun postoperatif sonuçlarındaki eğilimler tatmin edici olmaktan uzaktır ve uzun vadeli greft ve hasta sonuçları hala diğer solid organ transplantasyonlarının gerisinde kalmaktadır2.

Gelişmekte olan bir teknoloji olan ex situ akciğer perfüzyonu (ESLP), bu sınırlamaları hafifletme potansiyeline sahiptir. ESLP, marjinal donör akciğerlerini değerlendirmek ve yenilemek için bir yöntem olarak giderek daha fazla uygulanmaktadır ve genişletilmiş kriterli donör (ECD) akciğerlerinin transplantasyonunu takiben kabul edilebilir kısa ve uzun vadeli sonuçlar göstermiştir6,7,8,9,10. Sonuç olarak, ESLP bazı merkezlerde kullanım oranlarını %15-%20 oranında artırmıştır6,7,8,9,10,11.

Uygun ESLP araştırması, in vitro bulguların in vivo olarak doğrulanmasını gerektirir; bununla birlikte, ESLP12,13,14,15 için domuz akciğer nakli modelleri hakkında sınırlı literatür bulunmaktadır. Ayrıca, mevcut literatür, hemodinamik olarak oldukça kararsız olabilen akciğer nakli için Yorkshire domuzlarının anestezik yönetimi ile ilgili yetersiz ayrıntılar sunmaktadır12,13,14,15. Kolayca tekrarlanabilir bir model oluşturmak, mevcut ESLP stratejilerinin in vivo olarak doğrulanmasına ve akciğer iskemi-reperfüzyon hasarını azaltmak için çeşitli müdahalelerin klinik öncesi değerlendirmesine izin verecektir. Bu çalışmanın amacı, ESLP ile birlikte kullanılmak üzere ortotopik sol akciğer allotransplantasyonunun domuz modelini tanımlamaktır. Protokol, anestezi ve cerrahi tekniklerin açıklamalarını, özel bir cerrahi kontrol listesini ve sorun giderme deneyimi ve protokol değişiklikleriyle ilgili ayrıntıları içerir. Bu çalışmada sol akciğer domuz nakli modelinin sınırlamaları ve yararları da tartışılmıştır. Bu makale, 35-50 kg’lık Yorkshire domuzlarında domuz akciğerlerinin geri alınma sürecini özetlemediği gibi, ESLP’nin kurulmasını ve sonlandırılmasını da kapsamamaktadır. Bu protokol sadece alıcı nakli operasyonunu ele alır.

Protocol

Tüm prosedürler, Kanada Hayvan Bakımı Konseyi’nin yönergelerine ve laboratuvar hayvanlarının bakımı ve kullanımına ilişkin kılavuza uygun olarak gerçekleştirildi. Protokoller, Alberta Üniversitesi’nin kurumsal hayvan bakım komitesi tarafından onaylandı. Bu protokol 35-50 kg arasındaki dişi yavru Yorkshire domuzlarında uygulanmıştır. Domuzlar patojen içermeyen, gıda sınıfı örneklerdir. Edmonton, AB, Kanada’daki (https://srtc.ualberta.ca) Domuz Araştırma ve Teknoloji Merkezi’nden satın al?…

Representative Results

Tüm sonuçlar, 12 saatlik NPV-ESLP16’yı takiben 4 saatlik reperfüzyon bağlamındadır. Akciğer eksplantı sırasında, tahmin edilmesi gereken birkaç klinik sonuç vardır (Şekil 3). Tipik olarak, başarılı bir sol akciğer eksplantasyonunu takiben domuz hemodinamik olarak stabil kalacaktır, ancak cerrahiye vazodilatör yanıt nedeniyle düşük dozda fenilefrin infüzyonu (doz aralığı: 2-10 mg / s) gerektirebilir. Kalp hızı yaklaşık 100-120 bpm’yi he…

Discussion

Bu protokolde birkaç kritik cerrahi adım yer almaktadır ve başarılı transplantasyon ve akciğer değerlendirmesi sağlamak için sorun giderme gereklidir. Juvenil domuz akciğerleri, yetişkin insan akciğerlerine kıyasla inanılmaz derecede hassastır, bu nedenle ameliyat eden cerrah domuz akciğerlerini tutarken dikkatli olmalıdır. Bu, özellikle 12 saatlik bir ESLP çalışmasından sonra geçerlidir, çünkü organ sıvı hacmini almış olacak ve aşırı manipülasyondan kaynaklanan yaralanmalara duyarlı …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu araştırma Üniversite Hastanesi Vakfı adına finanse edilmektedir.

Materials

ABL 800 FLEX Blood Gas Analyzer Radiometer 989-963
Adult-Pediatric Electrostatic Filter HME – Small Covidien 352/5877
Allison Lung Retractor Pilling 341679
Arterial Filter SORIN GROUP 01706/03
Backhaus Towel Clamp Pilling 454300
Bovine Serum Albumin MP biomedicals 218057791
Biomedicus Pump Maquet BPX-80
Bronchoscope
Cable Ties – White 12” HUASU International HS4830001
Calcium Chloride Fisher Scientific C69-500G
Cooley Sternal Retractor Pilling 341162
CUSHING Gutschdressing Forceps Pilling 466200
Debakey-Metzenbaum Dissecting Pilling 342202
Scissors Pilling 342202
DeBakey Peripheral Vascular Clamp Pilling 353535
Debakey Straight Vascular Tissue Forceps Pilling 351808
D-glucose Sigma-Aldrich G5767-500G
Drop sucker
Endotracheal Tube 9.0mm CUFD Mallinckrodt 9590E
Flow Transducer BIO-PROBE TX 40
Infusion Pump Baxter AS50
Inspire 7 M Hollow Fiber Membrane Oxygenator SORIN GROUP K190690
Intercept Tubing Connector 3/8" x 1/2" Medtronic 6013
Intercept Tubing 1/4" x 1/16" x 8' Medtronic 3108
Intercept Tubing 3/8" x 3/32" x 6' Medtronic 3506
Laryngoscope N/A N/A Custom-made with 10-inch blade
Metzenbaum Dissecting Scissors Pilling 460420
Medical Carbon Dioxide Tank Praxair 5823115
Medical Oxygen Tank Praxair 2014408
Medical Nitrogen Tank Praxair NI M-K
Mosquito Clamp Pilling 181816
Harken Auricle Clamp
Organ Chamber Tevosol
PlasmaLyte A Baxter TB2544
Poole Suction Tube Pilling 162212
Potassium Phosphate Fischer Scientific P285-500G
PERFADEX Plus XVIVO 19811
Satinsky Clamp Pilling 354002
Scale TANITA KD4063611
Silicon Support Membrane Tevosol
Sodium Bicarbonate Sigma-Aldrich 792519-1KG
Sodium Chloride 0.9% Baxter JB1324
Sorin XTRA Cell Saver SORIN GROUP 75221
Sternal Saw Stryker 6207
Surgical Electrocautery Device Kls Martin ME411
TruWave Pressure Transducer Edwards VSYPX272
Two-Lumen Central Venous Catheter 7fr X2 Arrowg+ard CS-12702-E
Vorse Tubing Clamp Pilling 351377
Willauer-Deaver Retractor Pilling 341720
Yankauer Suction Tube Pilling 162300
0 ETHIBOND Green 1X36" Endo Loop 0 ETHICON D8573
0 PDS II CP-1 2×27” ETHICON Z467H
1 VICRYL MO-4 1×18” ETHICON J702D
2-0 SILK Black 12" x 18" Strands ETHICON SA77G
4-0 PROLENE Blue TF 1×24” ETHICON 8204H
6-0 PROLENE Blue BV 2×30” ETHICON M8776
21-Gauge Needle

Riferimenti

  1. Chambers, D. C., et al. The international thoracic organ transplant registry of the international society for heart and lung transplantation: Thirty-fifth adult lung and heart-lung transplant report-2018; focus theme: Multiorgan transplantation. The Journal of Heart and Lung Transplantation: The Official Publication of the International Society for Heart Transplantation. 37 (10), 1169-1183 (2018).
  2. Valapour, M., et al. OPTN/SRTR 2017 annual data report: Lung. American Journal of Transplantation: Official Journal of the American Society of Transplantation and the American Society of Transplant Surgeons. 19, 404-484 (2019).
  3. Klein, A. S., et al. Organ donation and utilization in the united states, 1999-2008. American Journal of Transplantation: Official Journal of the American Society of Transplantation and the American Society of Transplant Surgeons. 10 (4), 973-986 (2010).
  4. Kotecha, S., et al. Continued successful evolution of extended criteria donor lungs for transplantation. The Annals of Thoracic Surgery. 104 (5), 1702-1709 (2017).
  5. Singh, E., et al. Sequence of refusals for donor quality, organ utilization, and survival after lung transplantation. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 38 (1), 35-42 (2019).
  6. Cypel, M., et al. Normothermic ex vivo lung perfusion in clinical lung transplantation. The New England Journal of Medicine. 364 (15), 1431-1440 (2011).
  7. Wallinder, A., et al. Early results in transplantation of initially rejected donor lungs after ex vivo lung perfusion: A case-control study. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery: Official Journal of the European Association for Cardio-Thoracic Surgery. 45 (1), 40-44 (2014).
  8. Sage, E., et al. Lung transplantation from initially rejected donors after ex vivo lung reconditioning: The french experience. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery: Official Journal of the European Association for Cardio-Thoracic Surgery. 46 (5), 794-799 (2014).
  9. Valenza, F., et al. Extracorporeal lung perfusion and ventilation to improve donor lung function and increase the number of organs available for transplantation. Transplantation Proceedings. 44 (7), 1826-1829 (2012).
  10. Fildes, J. E., et al. Clinical outcome of patients transplanted with marginal donor lungs via ex vivo lung perfusion compared to standard lung transplantation. Transplantation. 99 (5), 1078-1083 (2015).
  11. Cypel, M., et al. Experience with the first 50 ex vivo lung perfusions in clinical transplantation. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 144 (5), 1200-1206 (2012).
  12. Clark, S. C., et al. A new porcine model of reperfusion injury after lung transplantation. Laboratory Animals. 33, 135-142 (1999).
  13. Karimi, A., et al. Technical pearls for swine lung transplantation. Journal of Surgical Research. 171, 107-111 (2011).
  14. Kruger, M., et al. Porcine pulmonary auto-transplantation for ex vivo therapy as a model for new treatment strategies. Interactive CardioVascular and Thoracic Surgery. 23, 358-366 (2016).
  15. Mariscal, A., et al. Pig lung transplant survival model. Nature Protocols. 13, 1814-1828 (2018).
  16. Aboelnazar, N. S., et al. Negative pressure ventilation decreases inflammation and lung edema during normothermic ex vivo lung perfusion. The Journal of Heart and Lung Transplantation: The Official Publication of the International Society for Heart Transplantation. 37 (4), 520-530 (2018).
check_url/it/62979?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Forgie, K. A., Fialka, N., Khan, M., Buchko, M., Hatami, S., Himmat, S., Qi, X., Wang, X., Buswell, K., Edgar, R., Domahidi, D., Freed, D. H., Nagendran, J. Left Lung Orthotopic Transplantation in a Juvenile Porcine Model for ESLP. J. Vis. Exp. (180), e62979, doi:10.3791/62979 (2022).

View Video