Summary

壊死性腸炎の新生児BALB/cマウスモデル

Published: November 30, 2021
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Summary

壊死性腸炎(NEC)は、未熟児、特に超低出生体重児にしばしば発生する最も重篤な胃腸(GI)疾患であり、死亡率が高く、病因が不明である。NECの原因は、炎症性免疫調節系の異常に関係している可能性があります。NECの動物モデルは、NECの疾患免疫研究に欠かせないツールです。NECの動物モデルは通常、C57BL/6J新生児マウスを使用します。BALB/c新生児マウスはめったに使用されません。関連する研究は、マウスが感染すると、C57BL/6Jマウスと比較して、THB細胞分化がBALB/cマウスにおいて優勢であることを示した。研究によると、NECの発生と発達はTヘルパー2型(Th2)細胞の増加と関連しており、一般に感染を伴うことが示唆されています。そこで本研究では、新生児BALB/cマウスを用いて、NEC小児と同様の臨床特性と腸管病理学的変化を有するNECモデルを誘導した。この動物モデルがNECにおけるTh2細胞応答を研究するために使用できるかどうかを判断するために、さらなる研究が保証されている。

Abstract

壊死性腸炎(NEC)は、未熟児、特に超低出生体重児にしばしば発生する最も重篤な胃腸(GI)疾患であり、死亡率が高く、病因が不明である。NECの原因は、炎症性免疫調節系の異常に関係している可能性があります。NECの動物モデルは、NECの疾患免疫研究に欠かせないツールです。NECの動物モデルは通常、C57BL/6J新生児マウスを使用します。BALB/c新生児マウスはめったに使用されません。関連する研究は、マウスが感染すると、C57BL/6Jマウスと比較して、THB細胞分化がBALB/cマウスにおいて優勢であることを示した。研究によると、NECの発生と発達はTヘルパー2型(Th2)細胞の増加と関連しており、一般に感染を伴うことが示唆されています。そこで本研究では、新生児BALB/cマウスを用いて、NEC小児と同様の臨床特性と腸管病理学的変化を有するNECモデルを誘導した。この動物モデルがNECにおけるTh2細胞応答を研究するために使用できるかどうかを判断するために、さらなる研究が保証されている。

Introduction

最も重篤な胃腸(GI)疾患である壊死性腸炎(NEC)は、ほとんどの未熟児(>90%)、特に超低出生体重(VLBW)1に発生します。VLBW乳児では、この疾患の発生率は10%から12%の範囲であり、NECと診断された小児の死亡率は20%〜30%である2,3。NECの原因は、粘膜損傷、病原性細菌による侵入、および腸の摂食に関連している可能性があり、炎症反応および感受性宿主における腸管損傷の誘発につながる可能性がある3。NECの病因は不明である。関連する研究は、罹患した乳児の免疫応答が異常であり、遺伝的感受性、微小血管緊張、および腸内細菌の変化がこの疾患において重要な役割を果たす可能性があることを示している3

NECの動物モデルは、NECの病態研究に欠かせないツールです。NECモデルに使用される動物種は、ブタ、ラット、マウスです。しかし、妊娠期間が長く、成長サイクルが長く、コストが高いため、近年、ブタはNECモデルの最初の選択肢ではなく、ラットやマウスに置き換えられています4。異なるマウス系統の免疫バックグラウンドに違いがあるため5、NECの動物モデルを確立するために、異なる研究が異なる系統のマウスを使用する必要がある。BALB/cマウスは重要な特徴を有する。それらが感染しているか、または外部損傷に対処するとき、マウスにおける感染中のTH2細胞の分極は、マウスの他の系統におけるそれよりも有意に強い6,7,8Tヘルパー細胞は、NECの発生および進行、特にTH2細胞の発生において重要な役割を果たしている3,9,10,11。そこで、本研究ではBALB/cマウスを用いてNECモデルを確立し、T細胞に関するNEC疾患研究に役立てられる可能性がある。

Protocol

本研究は、広州女性小児医療センター医療倫理委員会(NO.174A01)および広州フォーエバーゲンバイオサイエンス実験動物センター(IACUC-G160100)動物倫理委員会によって承認されました。すべての動物を特定の病原体フリー(SPF)環境で同じ部屋で飼育し、実験は従来の環境で行った。飼育に使用したマウスは7〜8週齢であった。NEC誘導用マウス(n=72)を4日目にダムから分離し、ダム(n=14)を元のケージに…

Representative Results

BALB/cマウスNECモデルは、フォーミュラ給餌、LPS給餌、低酸素、および低温刺激によって誘導された。誘導期間中、マウスは腸の病理、便の特徴、体重変化、および毎日の生存について観察された。NEC誘導中の小腸の代表的な画像;写真中の数字は、0(正常な上皮)から4(最も重症)までの腸病理スコアを表す(図3A)。腸管病理スコアは、Cont.群よりもNEC群で有意に高かった(<stro…

Discussion

NECは、新生児にとって最も一般的な胃腸系緊急事態であり、特に未熟児において、高い発生率と死亡率を示しています1,2,3しかし、その病因はまだ不明である。現在、粘膜損傷、病原体侵入、経腸栄養がNEC3の高危険因子であると考えられています。現在までに、NECモデルに使用されている動物は、主に…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

著者らは、臨床サンプルを提供してくれた広州女性小児医療センターの臨床生物資源バンクと、マウスを提供してくれた広州フォーエバージェンバイオサイエンス実験動物センターに感謝している。この研究は、中国国家自然科学財団の助成金81770510(R.Z.)の支援を受けました。

Materials

Absolute ethanol Sinopharm Chemical Reagent Co., LTD. 100092683
Goat Milk powder  Petag  71795558417
HE dye solution Sinopharm Chemical Reagent Co., LTD. G1003
Isoflurane RWD, Shenzhen Reward Life Technology Co., LTD. R510  
LPS Sigma-Adrich L2880
Medical oxygen various various
Microscope NIKON NIKON imaging system (DS-Ri2)
Neutral resin Sinopharm Chemical Reagent Co., LTD. 10004160
Paraffin various various
Premature baby milk powder Abbott 57430
Xylene Sinopharm Chemical Reagent Co., LTD. 10023418
1% Hydrochloric acid various various
10% Formalin LEAGENE DF0110

Riferimenti

  1. Horbar, J. D., et al. Mortality and neonatal morbidity among infants 501 to 1500 grams from 2000 to 2009. Pediatrics. 129 (6), 1019-1026 (2012).
  2. Stoll, B. J., et al. Neonatal outcomes of extremely preterm infants from the NICHD Neonatal Research Network. Pediatrics. 126 (3), 443-456 (2010).
  3. Neu, J., Walker, W. A. Necrotizing enterocolitis. New England Journal of Medicine. 364 (3), 255-264 (2011).
  4. Sangild, P. T., et al. Invited Review: The preterm pig as a model in pediatric gastroenterology. Journal of Animal Science. 91 (10), 4713-4729 (2013).
  5. Cancro, M. P., Sigal, N. H., Klinman, N. R. Differential expression of an equivalent clonotype among BALB/c and C57BL/6 mice. Journal of Experimental Medicine. 147 (1), 1-12 (1978).
  6. Kuroda, E., Yamashita, U. Mechanisms of enhanced macrophage-mediated prostaglandin E2 production and its suppressive role in Th1 activation in Th2-dominant BALB/c mice. Journal of Immunology. 170 (2), 757-764 (2003).
  7. Fornefett, J., et al. Comparative analysis of clinics, pathologies and immune responses in BALB/c and C57BL/6 mice infected with Streptobacillus moniliformis. Microbes and Infection. 20 (2), 101-110 (2018).
  8. Rosas, L. E., et al. Genetic background influences immune responses and disease outcome of cutaneous L. mexicana infection in mice. International Immunology. 17 (10), 1347-1357 (2005).
  9. Sproat, T., Payne, R. P., Embleton, N. D., Berrington, J., Hambleton, S. T cells in preterm infants and the influence of milk diet. Frontiers in Immunology. 11, 1035 (2020).
  10. Nanthakumar, N., et al. The mechanism of excessive intestinal inflammation in necrotizing enterocolitis: an immature innate immune response. PLoS One. 6 (3), 17776 (2011).
  11. Afrazi, A., et al. New insights into the pathogenesis and treatment of necrotizing enterocolitis: Toll-like receptors and beyond. Pediatric Research. 69 (3), 183-188 (2011).
  12. Auestad, N., Korsak, R. A., Bergstrom, J. D., Edmond, J. Milk-substitutes comparable to rat’s milk; their preparation, composition and impact on development and metabolism in the artificially reared rat. British Journal of Nutrition. 61 (3), 495-518 (1989).
  13. Liu, Y., et al. Lactoferrin-induced myeloid-derived suppressor cell therapy attenuates pathologic inflammatory conditions in newborn mice. Journal of Clinical Investigation. 129 (10), 4261-4275 (2019).
  14. MohanKumar, K., et al. A murine neonatal model of necrotizing enterocolitis caused by anemia and red blood cell transfusions. Nature Communications. 10 (1), 3494 (2019).
  15. He, Y. M., et al. Transitory presence of myeloid-derived suppressor cells in neonates is critical for control of inflammation. Nature Medicine. 24 (2), 224-231 (2018).
  16. Cho, S. X., et al. Characterization of the pathoimmunology of necrotizing enterocolitis reveals novel therapeutic opportunities. Nature Communications. 11 (1), 5794 (2020).
  17. Halpern, M. D., et al. Decreased development of necrotizing enterocolitis in IL-18-deficient mice. American Journal of Physiology. Gastrointestinal and Liver Physiology. 294 (1), 20-26 (2007).
  18. Wu, N., et al. MAP3K2-regulated intestinal stromal cells define a distinct stem cell niche. Nature. 592 (7855), 606-610 (2021).
  19. Nino, D. F., Sodhi, C. P., Hackam, D. J. Necrotizing enterocolitis: new insights into pathogenesis and mechanisms. Nature Reviews. Gastroenterology & Hepatology. 13 (10), 590-600 (2016).
  20. Chuang, S. L., et al. Cow’s milk protein-specific T-helper type I/II cytokine responses in infants with necrotizing enterocolitis. Pediatric Allergy & Immunology. 20 (1), 45-52 (2009).

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Citazione di questo articolo
Tian, Y., Huang, J., Fu, M., He, Q., Chen, J., Chen, Y., Zhang, R., Zhong, W. A Neonatal BALB/c Mouse Model of Necrotizing Enterocolitis. J. Vis. Exp. (177), e63252, doi:10.3791/63252 (2021).

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