Summary

I Ovo Intravaskulær injektion i kyllingembryoner

Published: June 03, 2022
doi:

Summary

Det overordnede mål med dette papir er at beskrive, hvordan man udfører intracellulær injektion af eksogene materialer i kyllingembryoner. Denne tilgang er meget nyttig til at studere kyllingembryoners udviklingsbiologi.

Abstract

Som et klassisk modelsystem for embryobiologi er kyllingembryoet blevet brugt til at undersøge embryonal udvikling og differentiering. Levering af eksogene materialer til kyllingembryoner har en stor fordel for at studere genfunktion, transgen avl og kimærpræparation under embryonal udvikling. Her viser vi metoden til in ovo intravaskulær injektion, hvorved eksogene materialer såsom plasmidvektorer eller modificerede urkimceller (PGC’er) kan overføres til donorkyllingembryoner på tidlige udviklingsstadier. Resultaterne viser, at den intravaskulære injektion gennem dorsal aorta og hoved tillader injicerede materialer at diffundere ind i hele embryoet gennem blodcirkulationssystemet. I den præsenterede protokol blev effekten af eksogen plasmid og lentiviral vektorintroduktion og koloniseringen af injicerede eksogene PGC’er i modtagerens gonad bestemt ved at observere fluorescens i embryonerne. Denne artikel beskriver detaljerede procedurer for denne metode og giver derved en fremragende tilgang til at studere genfunktion, embryo- og udviklingsbiologi og gonad-kimær kyllingeproduktion. Afslutningsvis vil denne artikel gøre det muligt for forskere at udføre i ovo intravaskulær injektion af eksogene materialer i kyllingembryoner med stor succes og reproducerbarhed.

Introduction

Kyllingembryoner har været meget udbredt i århundreder i udviklingsmæssige, immunologiske, patologiske og andre biologiske anvendelser 1,2,3. De har mange iboende fordele i forhold til andre dyremodeller i studiet af toksikologi og cellebiologi4. Kyllingeembryoner er let tilgængelige og kan manipuleres in vitro og observeres direkte på ethvert udviklingsstadium, hvilket giver et praktisk embryoforskningsmodelsystem.

Generelt har de nuværende kyllingembryoleveringsmetoder såsom elektrotransfektion og subgerminalhulrumsinjektion begrænsninger såsom kravet om specialudstyr og et designet program og ineffektivitet på grund af tilstedeværelsen af æggeblomme og albumen 5,6,7. Her viser vi en enkel og effektiv håndteringsmetode til levering af eksogene materialer til kyllingembryoner. Dette kan være et kraftfuldt værktøj, der anvendes til studiet af udviklingsbiologi. De injicerede materialer spredes til hele embryoet via blodcirkulationen. Under den tidlige udvikling af kyllingeembryoner kunne PGC’erne migrere gennem blod, kolonisere kønsryggen og derefter udvikle sig til kønsceller, som giver en værdifuld mulig vej til at levere eksogene materialer8. Nu er denne metode blevet anvendt i vid udstrækning i studiet af genfunktion, embryo- og udviklingsbiologi og kimær og transgen kyllingeproduktion 9,10,11.

In ovo intravaskulær injektion i kyllingembryoner er en veletableret og almindeligt anvendt metode 12,13,14. I dette papir viser vi en omfattende beskrivelse af denne protokol, herunder injektionsmaterialer, steder, dosering og repræsentative resultater.

Protocol

Alle procedurer, der involverer pleje og brug af dyr, var i overensstemmelse med US National Institute of Health retningslinjer (NIH Pub. nr. 85-23, revideret 1996), og kyllingeembryoprotokollerne blev godkendt af Laboratory Animal Management and Experimental Animal Ethics Committee ved Yangzhou University, Kina (nr. 201803124). 1. Opsamling og tilberedning af befrugtede æg BEMÆRK: I modsætning til pattedyr har kyllingen millioner af follikler i en…

Representative Results

Vi viser her in ovo intravaskulær injektion af kyllingembryoner. En skematisk proces for den intravaskulære injektion er vist i figur 1; I vores undersøgelse brugte vi forskellige eksogene opløsninger til at teste og verificere injektion. For bedre at visualisere de injicerede materialer blev Trypan Blue (0,4%) injiceret som sporstof i embryoet. Sporstoffet (blåt) blev observeret at diffundere til hele embryoet via blodcirkulationen ved ente…

Discussion

Metoden til in ovo intravaskulær injektion af kyllingembryoner er optimeret til eksogene materialer (vektor, viral eller PGC’er), der skal overføres til embryoet. Baseret på denne metode konstruerede vi kyllingeembryomodeller med stabil genoverekspression eller interferens (SpinZ, JUN, UBE2I osv.) 17,18,19. Disse veletablerede modeller viser gennemførligheden af denne tilgang. Derudover overførte vi ikke kun isole…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af National Natural Science Foundation of China (31972547). Vi sætter pris på tekstredigering af Jing Wang og voiceover af Malik Donlic ved Washington State University, USA.

Materials

Fluorescence macro-microscope OLYMPUS MVX10
Glass Capillaries Narishige G1
Lipofectamine 2000 Invitrogen 12566014 liposome
pEGFP-N1 vector Clontech #6085-1
PKH26 Red Fluorescent Cell Linker Kit  Sigma PKH26GL
pLVX-EGFP lentivirus vector Addgene 128652
Pneumatic Microinjector Narishige IM-11-2
Puller Narishige PC-100
Trypan Blue Stain Gibco 15250061

Riferimenti

  1. Bednarczyk, M., Dunislawska, A., Stadnicka, K., Grochowska, E. Chicken embryo as a model in epigenetic research. Poultry Science. 100 (7), 101164 (2021).
  2. Darnell, D. K., Schoenwolf, G. C. The chick embryo as a model system for analyzing mechanisms of development. Developmental Biology Protocols. , 25-29 (2000).
  3. Fauzia, E., et al. Chick embryo: a preclinical model for understanding ischemia-reperfusion mechanism. Frontiers in Pharmacology. 9, 1034 (2018).
  4. Fonseca, B. B., da Silva, M. V., de Morais Ribeiro, L. N. The chicken embryo as an in vivo experimental model for drug testing: Advantages and limitations. Lab Animal. 50 (6), 138-139 (2021).
  5. Blank, M. C., Chizhikov, V., Millen, K. J. In ovo electroporations of HH stage 10 chicken embryos. Journal of Visualized Experiments. (9), e408 (2007).
  6. Islam, M. M., Doh, S. T., Cai, L. In ovo electroporation in embryonic chick retina. Journal of Visualized Experiments. (60), e3792 (2012).
  7. Lu, T., Cohen, A. L., Sanchez, J. T. In ovo electroporation in the chicken auditory brainstem. Journal of Visualized Experiments. (124), e55628 (2017).
  8. van de Lavoir, M. -. C., et al. Germline transmission of genetically modified primordial germ cells. Nature. 441 (7094), 766-769 (2006).
  9. Ballantyne, M., et al. Avian primordial germ cells are bipotent for male or female gametogenesis. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 9, 726827 (2021).
  10. Park, T. S., Han, J. Y. piggyBac transposition into primordial germ cells is an efficient tool for transgenesis in chickens. Proceedings of the National Academy of Sciences. 109 (24), 9337-9341 (2012).
  11. Lee, H. J., et al. Targeted gene insertion into Z chromosome of chicken primordial germ cells for avian sexing model development. The FASEB Journal. 33 (7), 8519-8529 (2019).
  12. Han, J. Y., Lee, B. R. Isolation and characterization of chicken primordial germ cells and their application in transgenesis. Avian and Reptilian Developmental Biology: Methods and Protocols. , 229-242 (2017).
  13. Naito, M., Harumi, T., Kuwana, T. Long-term culture of chicken primordial germ cells isolated from embryonic blood and production of germline chimaeric chickens. Animal Reproduction Science. 153, 50-61 (2015).
  14. Yu, F., et al. Isolation, characterization and germline chimera preparation of primordial germ cells from the Chinese Meiling chicken. Poultry Science. 98 (2), 566-572 (2019).
  15. Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. Journal of Morphology. 88 (1), 49-92 (1951).
  16. Zhang, Z., et al. Crucial genes and pathways in chicken germ stem cell differentiation. The Journal of Biological Chemistry. 290 (21), 13605-13621 (2015).
  17. Jin, K., et al. UBE2I stimulates female gonadal differentiation in chicken (Gallus gallus) embryos. Journal of Integrative Agriculture. 20 (11), 2986-2994 (2021).
  18. Shi, X., et al. HMGCS1 promotes male differentiation of chicken embryos by regulating the generate of cholesterol. All Life. 14 (1), 577-587 (2021).
  19. Jiang, J., et al. Spin1z induces the male pathway in the chicken by down-regulating Tcf4. Gene. 780, 145521 (2021).
  20. Zhao, R., et al. Production of viable chicken by allogeneic transplantation of primordial germ cells induced from somatic cells. Nature Communications. 12 (1), 2989 (2021).
check_url/it/63458?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Jin, K., Zhou, J., Wu, G., Lian, Z., Zhao, Z., Zhou, S., Chen, C., Sun, H., Niu, Y., Zuo, Q., Zhang, Y., Song, J., Chen, G., Li, B. In Ovo Intravascular Injection in Chicken Embryos. J. Vis. Exp. (184), e63458, doi:10.3791/63458 (2022).

View Video