Summary

Isolement de l’artère intrapulmonaire et des cellules musculaires lisses pour étudier les réponses vasculaires

Published: June 08, 2022
doi:

Summary

Les réponses vasculaires de la circulation pulmonaire artérielle peuvent être explorées à l’aide de l’artère intrapulmonaire (API) et des cellules musculaires lisses vasculaires (VSMC). La présente étude décrit en détail l’isolement de l’IPA et les protocoles utilisés pour étudier la vasorelaxation en réponse à des stimuli physiologiques.

Abstract

L’artère intrapulmonaire (API) et les cellules musculaires lisses vasculaires (VSMC) isolées des poumons de rat peuvent être utilisées pour étudier les mécanismes sous-jacents de la vasoconstriction et de la vasorelaxation. Après avoir isolé l’IPA et les VSMC, les caractéristiques des réponses vasculaires dans des conditions physiologiques et pathologiques peuvent être évaluées en l’absence de facteurs extrinsèques tels que les signaux nerveux, les hormones, les cytokines, etc. Ainsi, l’IPA et les VSMC sont d’excellents modèles pour l’étude de la physiologie/physiopathologie vasculaire, ainsi que diverses investigations expérimentales, telles que la modulation par des agents pharmacologiques, l’analyse électrophysiologique patch-clamp, l’imagerie calcique, etc. Ici, nous avons utilisé une technique pour isoler l’API afin d’étudier les réponses vasculaires dans une configuration de bain d’organes. Des segments d’IPA ont été montés sur la chambre du bain d’organes via des fils intraluminaux et stimulés par divers agents pharmacologiques. Les changements dans le tonus vasculaire de l’API (c.-à-d. vasoconstriction et vasorelaxation) ont été enregistrés à l’aide d’un transducteur de force isométrique et d’un logiciel d’analyse de données physiologiques. Nous avons mis en place plusieurs protocoles expérimentaux, qui peuvent être adaptés pour étudier les mécanismes de vasorelaxation/vasoconstriction pour étudier les activités pharmacologiques des médicaments phytochimiques ou synthétiques. Les protocoles peuvent également être utilisés pour évaluer le rôle des médicaments dans la modulation de diverses maladies, y compris l’hypertension artérielle pulmonaire. Le modèle IPA nous permet d’étudier la courbe concentration-réponse, ce qui est crucial pour évaluer les paramètres pharmacodynamiques des médicaments.

Introduction

Le système vasculaire pulmonaire est un système vasculaire à basse pression dont la fonction principale est de fournir du sang désoxygéné à la zone d’échange de gaz des poumons. Les artères pulmonaires dans les poumons sont disposées en branches parallèles à l’arbre bronchique, formant finalement un vaste réseau de capillaires qui est continu sur plusieurs alvéoles et, enfin, se rejoignant en veinules et veines. Le tonus vasculaire de l’artère pulmonaire est contrôlé par plusieurs facteurs, impliquant l’interaction entre l’endothélium et les cellules musculaires lisses vasculaires (VSMC)1.

Dans cette étude, nous nous concentrons sur la vasorelaxation dépendante et indépendante de l’endothélium de l’artère intrapulmonaire (API). En ce qui concerne la vasorelaxation dépendante de l’endothélium, divers mécanismes se produisant à la surface des cellules endothéliales pourraient augmenter la concentration intracellulaire de Ca2+ (p. ex., l’acétylcholine [ACh] se lie au récepteur muscarinique [M3]), conduisant à la formation d’oxyde nitrique (NO), de prostacycline (PGl2) et de facteur hyperpolarisant dérivé de l’endothélium (EDHF) (Figure 1 ). Le NO est le principal facteur de relaxation dérivé de l’endothélium synthétisé à partir de la L-arginine par l’oxyde nitrique synthase endothéliale (eNOS)2, qui se dissocie ensuite des cellules endothéliales en VSMC (Figure 1) et stimule l’enzyme soluble guanylyl cyclase (sGC) ; cette enzyme transforme la guanosine triphosphate (GTP) en guanosine monophosphate cyclique (GMPc), qui active la protéine kinase G (PKG) et réduit les niveaux cytosoliques de Ca2+, provoquant ainsi une vasorelaxation (Figure 1). PGl2 est synthétisé par les cellules endothéliales via la voie cyclo-oxygénase (COX) 3,4. Il se lie au récepteur de la prostacycline (IP) sur les VSMC et stimule l’enzyme adénylyl cyclase (AC), qui convertit ensuite l’adénosine triphosphate (ATP) en adénosine monophosphate cyclique (AMPc) (Figure 1)3,4. L’AMPc active la protéine kinase A (PKA), réduisant les taux cytosoliques de Ca2+ et provoquant une vasorelaxation5 (Figure 1). La voie EDHF participe également à la vasorelaxation dépendante de l’endothélium via divers médiateurs endothéliaux et événements électriques. L’activation de la voie EDHF conduit à l’hyperpolarisation des VSMC, fermant ainsi les canaux Ca 2+ (VOCC) actionnés par tension, réduisant les niveaux intracellulaires de Ca 2+ et induisant une vasorelaxation 6. La vasorelaxation indépendante de l’endothélium se produit directement sur les VSMC via plusieurs mécanismes, tels que la réduction du niveau intracellulaire de Ca 2+, l’inhibition de la myosine light chain kinase (MLCK), l’activation de la myosine phosphatase à chaîne légère (MLCP) et la réduction de la sensibilité Ca2+ à la machinerie contractile des VSMC. Dans cette étude, nous nous concentrons sur la vasorelaxation causée par l’ouverture de divers canaux K+, le blocage des VOCC et l’inhibition de la libération de Ca 2+ par le réticulum sarcoplasmique7, ce qui conduit à la réduction des niveaux intracellulaires de Ca 2+, diminuant ainsi la phosphorylation de la chaîne légère de la myosine VSMC et la liaison myosine-actine ou la formation de ponts croisés, respectivement, aboutissant finalement à une vasorelaxation.

La technique d’évaluation des mesures de vasoconstriction et de vasorelaxation dans l’IPA isolé est bien établie pour les rongeurs, mais les données variaient selon les protocoles expérimentaux. La présente étude décrit la méthode utilisée pour évaluer les réactivités vasculaires de préparations IPA in vitro de rat, qui ont été réalisées en l’absence de facteurs externes modulant la réponse vasculaire in vivo, tels que les signaux nerveux, les hormones, les cytokines, la pression artérielle, etc.

Nous avons utilisé plusieurs protocoles expérimentaux utilisant l’extrait de plante comme exemple pour étudier les réactivités vasculaires de l’API. Différents bloqueurs (Figure 1) ont été utilisés pour identifier les mécanismes de vasorelaxation dépendante et indépendante de l’endothélium induite par l’extrait de plante. Néanmoins, les mêmes protocoles peuvent être adaptés pour évaluer les réponses vasculaires de l’IPA à tout médicament, extrait ou phytochimique utilisé pour le traitement de diverses pathologies pulmonaires.

Protocol

Les expériences réalisées dans cette étude ont été approuvées par le Comité d’éthique du Comité de soin et d’utilisation des animaux de l’Université de Naresuan (NUACUC), numéro de protocole NU-AE620921, pour le soin et l’utilisation des animaux à des fins scientifiques. 1. Composition des solutions physiologiques Formuler la solution de Krebs en dissolvant des produits chimiques dans de l’eau distillée pour obtenir les concentrations finales …

Representative Results

Le protocole de la présente étude a été développé pour déterminer les conditions expérimentales optimales pour mesurer les phénomènes physiologiques observés dans les réponses vasculaires de préparations IPA isolées. Les expériences pilotes ont été réalisées pour décrire les résultats potentiels qui aident à comprendre les effets vasculaires et la base mécaniste de l’action vasorelaxante de l’extrait de plante, comme suit. Effet vasorelaxant de l’extrait de…

Discussion

Dans ce manuscrit, nous décrivons la technique d’isolement des rats IPA et des VSMC. Plusieurs protocoles expérimentaux ont été utilisés pour étudier la réponse vasculaire de l’IPA in vitro, qui peut être utilisée pour caractériser l’effet pharmacologique et la base mécaniste de la vasorelaxation IPA induite par l’extrait de plante.

En ce qui concerne l’action vasodilatatrice dépendante de l’endothélium de l’extrait de plante, divers bloqueurs tels que L-NAM…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs tiennent à remercier le Conseil national de recherches de Thaïlande, le Centre d’excellence pour l’innovation en chimie (PERCH-CIC) et le Réseau international de recherche (IRN61W0005) pour leur soutien financier, ainsi que le Département de physiologie de la Faculté des sciences médicales de l’Université de Naresuan pour le soutien aux installations de recherche.

Materials

1,4-dithiothreitol (DTT) Sigma-Aldrich D0632
CAS NO. 348-12-3
4-aminopyridine (4-AP) Aldrich Chemical A78403
CAS NO. 504-24-5
Acetylcholine Sigma-Aldrich A6625
CAS NO. 60-31-1
Apamin Sigma-Aldrich A9459
CAS NO. 24345-16-2
Bovine serum albumin (BSA) Sigma-Aldrich A2153
CAS NO. 9048-46-8
Calcium choride Ajax Finechem AJA960
CAS NO. 1707055184
Charybdotoxin Sigma-Aldrich C7802
CAS NO. 95751-30-7
Collagenase type 1A Sigma-Aldrich C9891
CAS NO. 9001-12-1
From Clostridium histolyticum
D(+)-Glucose monohydrate Millipore Corporation K50876942 924
CAS NO. 14431-43-7
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich D4540
CAS NO. 67-68-5
Ethylene glycol-bis (2-aminoethylether)-N,N,N’,N’-tetraacetic acid (EGTA) Sigma-Aldrich E3889
CAS NO. 67-42-5
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Sigma-Aldrich E9884
CAS NO. 60-00-4
Forceps 11 cm. Rustless Dumoxel
Forceps 14 cm. Rustless Dumoxel
Glibenclamide Sigma-Aldrich G6039
CAS NO. 16673-34-0
GraphPad Prism program Software version 5.0 (San Diego, CA, USA)
HEPES Sigma-Aldrich H3375
CAS NO. 7365-45-9
Iberiotoxin Sigma-Aldrich I5904
CAS NO. 1002546960
recombinant from Mesobuthus tamulus
Indomethacin Sigma-Aldrich I7378
CAS NO. 53-86-1
Labchart Program Software version 7.0 (A.D. Instrument, Castle Hill, Australia).
Magnesium chloride Ajax Finechem 296
CAS NO. 1506254995
Male Wistar rats Nomura Siam International Co. Ltd., Bangkok, Thailand
NG-nitro-L-arginine methyl ester (L-NAME) Sigma-Aldrich N5751
CAS NO. 51298-62-5
Nicardipine Sigma-Aldrich N7510
CAS NO. 54527-84-3
Organ bath 15 mL. Specific order by the researchers
Papain Sigma-Aldrich P4762
CAS NO. 9001-73-4
FromPapaya Latex
Phenal red Sigma-Aldrich P5530
CAS NO. 34487-61-1
Phenylephrine Sigma-Aldrich P6126
CAS NO. 61-76-7
Potassium chloride Kemaus KA383
CAS NO. 7447-40-7
Potassium dihydrogenphosphate Aldrich Chemical EC231-913-4
CAS NO. 7778-77-0
S+A2:E36odium chloride Kemaus KA465
CAS NO. 7647-14-5
Scissors 11 cm. Spall Stainless
Scissors 14 cm. Spall Stainless
Sodium bicarbonate Ajax Finechem 475
CAS NO. 912466
Sodium dihydrogenphosphate Aldrich Chemical 33,198-8
CAS NO. 7558-80-7
Sodium hydroxide Ajax Finechem 482
CAS NO. 1506196602
Sodium thiopental Anesthal JPN3010002
CAS NO. 1C 314/47
Taurine Sigma-Aldrich T0625
CAS NO. 107-35-7
Waterbath WBU 45 Memmert 2766
CAS NO. –

Riferimenti

  1. Lyle, M. A., Davis, J. P., Brozovich, F. V. Regulation of pulmonary vascular smooth muscle contractility in pulmonary arterial hypertension: Implications for therapy. Frontiers in Physiology. 8, 614 (2017).
  2. Cyr, A. R., Huckaby, L. V., Shiva, S. S., Zuckerbraun, B. S. Nitric oxide and endothelial dysfunction. Critical Care Clinics. 36 (2), 307-321 (2020).
  3. Ruan, K. -. H. Advance in understanding the biosynthesis of prostacyclin and thromboxane A2 in the endoplasmic reticulum membrane via the cyclo-oxygenase pathway. Mini Reviews in Medicinal Chemistry. 4 (6), 639-647 (2004).
  4. Del Pozo, R., Hernandez Gonzalez, I., Escribano-Subias, P. The prostacyclin pathway in pulmonary arterial hypertension: A clinical review. Expert Review of Respiratory Medicine. 11 (6), 491-503 (2017).
  5. Morgado, M., Cairrão, E., Santos-Silva, A. J., Verde, I. Cyclic nucleotide-dependent relaxation pathways in vascular smooth muscle. Cellular and Molecular Life Sciences. 69 (2), 247-266 (2012).
  6. Schmidt, K., de Wit, C. Endothelium-derived hyperpolarizing factor and myoendothelial coupling: The in vivo perspective. Frontiers in Physiology. 11, (2020).
  7. Fan, G., Cui, Y., Gollasch, M., Kassmann, M. Elementary calcium signaling in arterial smooth muscle. Channels. 13 (1), 505-519 (2019).
  8. Wisutthathum, S., et al. Extract of Aquilaria crassna leaves and mangiferin are vasodilators while showing no cytotoxicity. Journal of Traditional and Complementary Medicine. 9 (4), 237-242 (2019).
  9. Kamkaew, N., Paracha, T. U., Ingkaninan, K., Waranuch, N., Chootip, K. Vasodilatory effects and mechanisms of action of Bacopa monnieri active compounds on rat mesenteric arteries. Molecules. 24 (12), 2243 (2019).
  10. Chootip, K., Kennedy, C., Gurney, A. Characterization of P2 receptors mediating contraction of the rat isolated pulmonary vasculature. British Journal of Pharmacology. 131, 167 (2000).
  11. Paracha, T. U., et al. Elucidation of vasodilation response and structure activity relationships of N2, N4-disubstituted quinazoline 2, 4-diamines in a rat pulmonary artery model. Molecules. 24 (2), 281 (2019).
  12. Chootip, K., Gurney, A. M., Kennedy, C. Multiple P2Y receptors couple to calcium-dependent, chloride channels in smooth muscle cells of the rat pulmonary artery. Respiratory Research. 6 (1), 1-10 (2005).
  13. Wisutthathum, S., et al. Eulophia macrobulbon extract relaxes rat isolated pulmonary artery and protects against monocrotaline-induced pulmonary arterial hypertension. Phytomedicine. 50, 157-165 (2018).
  14. Kruangtip, O., et al. Curcumin analogues inhibit phosphodiesterase-5 and dilate rat pulmonary arteries. Journal of Pharmacy and Pharmacology. 67 (1), 87-95 (2015).

Play Video

Citazione di questo articolo
To-on, K., Chatturong, U., Panklai, T., Palang, I., Inchan, A., Wisutthathum, S., Paracha, T. U., Apaikawee, P., Chootip, K. Isolation of Intrapulmonary Artery and Smooth Muscle Cells to Investigate Vascular Responses. J. Vis. Exp. (184), e63686, doi:10.3791/63686 (2022).

View Video