Summary

エクスビボ マウス尿路上皮細胞におけるアデノウイルス-Cre媒介遺伝子欠失のオルガノイドモデル

Published: May 05, 2022
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Summary

このプロトコルは、目的の遺伝子に欠失を保有するマウス尿路上皮オルガノイドの生成および特徴付けのプロセスを記載する。この方法には、マウス尿路上皮細胞の採取、CMVプロモーターによるCre発現を駆動するアデノウイルスによるエキソビボ形質導入、およびインビトロおよびインビボ特性評価が含まれる。

Abstract

膀胱がんは、特に遺伝子組み換えマウスモデル(GEMM)において、研究が不十分な領域である。組織特異的なCreおよびloxP部位を有する近交系GEMMは、条件付きまたは誘導性遺伝子標的化のゴールドスタンダードとなっています。より迅速で効率的な実験モデルを提供するために、アデノウイルスCreおよび腫瘍抑制因子Trp53Pten、およびRb1の複数のloxP対立遺伝子を有する正常な尿路上皮細胞を用いたエクスビボオルガノイド培養系が開発されている。正常な尿路上皮細胞は、トリプルフロックスマウスの4つの膀胱から酵素的に切断される(Trp53 f/f:Pten f/f:Rb1 f/f)。尿路上皮細胞は、CMVプロモーター(Ad5CMVCre)によって駆動されるアデノウイルス-Creを用いてエクスビボで形質導入される。形質導入された膀胱オルガノイドは、培養され、増殖され、インビトロおよびインビボで特徴付けられる。PCRは、Trp53Pten、およびRb1における遺伝子欠失を確認するために使用されます。オルガノイドの免疫蛍光(IF)染色は、尿路上皮系譜マーカー(CK5およびp63)の陽性発現を実証する。オルガノイドは、腫瘍拡大および連続継代のために宿主マウスに皮下注射される。異種移植片の免疫組織化学(IHC)は、CK7、CK5、およびp63の陽性発現およびCK8およびウロプラキン3の陰性発現を示す。要約すると、loxP部位で操作されたマウス尿路上皮細胞からのアデノウイルス媒介遺伝子欠失は、定義された遺伝子改変の腫瘍形成能を迅速に試験するための効率的な方法である。

Introduction

膀胱がんは男性で4番目に多いがんであり、米国では毎年8万人以上が罹患しています1。プラチナベースの化学療法は、30年以上にわたり進行膀胱がん患者の標準的な治療となってきました。膀胱がん治療の展望は、免疫療法(抗PD-1および抗PD-L1免疫チェックポイント阻害剤)、エルダフィチニブ(線維芽細胞増殖因子受容体阻害剤)、およびエンフォルツマブベドチン(抗体薬物複合体)最近の食品医薬品局(FDA)の承認によって革命をもたらしました2,3,4しかし化学療法または免疫療法に対する応答を予測するために臨床的に承認されたバイオマーカーは利用できない。膀胱がんの進行を駆動するメカニズムの理解を改善し、さまざまな治療モダリティの予測バイオマーカーを開発できる有益な前臨床モデルを生成することが非常に重要です。

膀胱トランスレーショナル研究における大きな障害は、ヒト膀胱癌の病因と治療応答を再現する前臨床モデルの欠如である5,6。インビトロ2Dモデル(細胞株または条件付きリプログラム細胞)、インビトロ3Dモデル(オルガノイド、3Dプリンティング)、インビモデル(異種移植片、発がん性物質誘導モデル、遺伝子操作モデル、および患者由来異種移植片)を含む複数の前臨床モデルが開発されている2,6遺伝子操作マウスモデル(GEMM)は、腫瘍表現型の解析、候補遺伝子および/またはシグナル伝達経路の機構的調査、および治療応答の前臨床評価など、膀胱癌生物学における多くの用途に有用である6,7。GEMMは、部位特異的リコンビナーゼ(Cre-loxP)を利用して、1つ以上の腫瘍抑制遺伝子における遺伝子欠失を制御することができる。複数の遺伝子欠失を伴う所望のGEMMを生成するプロセスは、時間がかかり、面倒で、高価である5。この方法の全体的な目標は、トリプルフロックス対立遺伝子(Trp53、Pten、およびRb1)を有する正常マウス尿路上皮細胞から膀胱トリプルノックアウト(TKO)モデルを確立するためのエクスビボCre送達の迅速かつ効率的な方法を開発することである8エクスビボ法の主な利点は、迅速なワークフロー(マウスの繁殖の年の代わりに1〜2週間)です。この記事では、免疫適格C57 BL/6Jマウスにおいて、フロックス化対立遺伝子、エキソビボアデノウイルス形質導入、オルガノイド培養、およびインビトロおよびインビボ特性評価を有する正常な尿路上皮細胞を採取するためのプロトコルについて説明します。この方法はさらに、フロックス対立遺伝子の任意の組み合わせを保有する免疫適格マウスにおいて臨床的に関連する膀胱癌オルガノイドを生成するために使用することができる。

Protocol

すべての動物処置は、ニューヨーク州バッファローのロズウェルパーク総合がんセンター(1395M、バイオセーフティ180501および180502)の施設動物ケアおよび使用委員会(IACUC)によって承認されました。メモ: 手順 1 ~ 3 を同じ日に実行します。 1. マウス膀胱の解剖 解剖の準備 はさみ、鉗子、滅菌DPBSを含むすべての滅菌器具を35 mm培養皿、70%エタノ?…

Representative Results

マウス尿路上皮細胞におけるアデノウイルス-Cre媒介遺伝子欠失のワークフローを 図1Aに示す。添付のビデオは、尿路上皮細胞が膀胱の眼底からどのように切り離されるか、および三重フロックス細胞がAd5CMVCreを用いて エクスビボ でどのように形質導入されるかを示す。 図1Aは 、最小限の粘膜下および筋肉細胞が酵素消化後に切断されたこ…

Discussion

GEMMは、正常細胞から開始されたがんモデリングのゴールドスタンダードであり、潜在的な発癌性摂動(がん遺伝子の活性化および/または腫瘍抑制因子の喪失)の結果を厳密に試験することを可能にする。ここでは、目的の遺伝子にフロックス化対立遺伝子を担持する正常マウス尿路上皮細胞のエクスビボ遺伝子編集を介して膀胱癌オルガノイドを生成するための迅速かつ効率的なプロト…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究研究は、NIH Grants、K08CA252161(Q.L.)、R01CA234162、およびR01 CA207757(D.W.G.)、P30CA016056(NCI Cancer Center Core Support Grant)、Roswell Park Alliance Foundation、Friends of Urology Foundationによって部分的に支援されました。原稿の校正をしてくれたMarisa BlaskとMila Pakhomovaに感謝します。

Materials

100 μm sterile cell strainer Corning 431752
1 mL syringe BD 309659
25G 1.5 inches needle EXELINT International 26406
Adenovirus (Ad5CMVCre High Titer, 1E11 pfu/ml) UI Viral Vector Core VVC-U of Iowa-5-HT
C57 BL/6J Jackson Lab 000664
Charcoal-stripped FBS Gibco A3382101
Collagenase/hyaluronidase Stemcell Technologies 07912
Dispase Stemcell Technologies 07913
DPBS, 1x Corning 21-031-CV
L-glutamine substitute (GlutaMAX) Gibco 35-050-061
Mammary Epithelial Cell Growth medium Lonza CC-3150
Matrix extracts from Engelbreth–Holm–Swarm mouse sarcomas (Matrigel) Corning CB-40234
Monoclonal mouse anti-CK20 DAKO M7019 IF 1:100
Monoclonal mouse anti-CK7 Santa Cruz Biotechnology SC-23876 IHC 1:50
Monoclonal mouse anti-p63 Abcam ab735 IHC 1:100, IF 1:50
Monoclonal mouse anti-Upk3 Fitzgerald 10R-U103A IHC 1:50
Monoclonal mouse anti-Vimentin Santa Cruz Biotechnology SC-6260 IF 1:100
Monoclonal rat anti-CK8 Developmental Studies Hybridoma Bank TROMA-I-s IF 1:100
HERAcell vios 160i CO2 incubator Thermo Fisher 51033557
Polyclonal chicken anti-CK5 Biolegend 905901 IF 1:500
Primocin InvivoGen ant-pm-1
Recombinant enzyme of trypsin substitute (TrypLE Express Enzyme) Thermo Fisher 12605036
Signature benchtop shaking incubator Model 1575 VWR 35962-091
Specimen Processing Gel (HistoGel) Thermo Fisher HG-4000-012
Surgical blade size 10 Integra Miltex 4-110
Sorvall T1 centrifuge Thermo Fisher 75002383
Y-27632 Selleckchem S1049

Riferimenti

  1. Siegel, R. L., Miller, K. D., Fuchs, H. E., Jemal, A. Cancer statistics, 2021. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 71 (1), 7-33 (2021).
  2. Zhu, S., et al. Preclinical models for bladder cancer research. Hematology/Oncology Clinics of North America. 35 (3), 613-632 (2021).
  3. DeGraff, D. J., et al. Current preclinical models for the advancement of translational bladder cancer research. Molecular Cancer Therapeutics. 12 (2), 121-130 (2013).
  4. Andreev-Drakhlin, A. Y., et al. The evolving treatment landscape of advanced urothelial carcinoma. Current Opinion in Oncology. 33 (3), 221-230 (2021).
  5. Mullenders, J., et al. Mouse and human urothelial cancer organoids: A tool for bladder cancer research. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 116 (10), 4567-4574 (2019).
  6. Kobayashi, T., Owczarek, T. B., McKiernan, J. M., Abate-Shen, C. Modelling bladder cancer in mice: opportunities and challenges. Nature Reviews. Cancer. 15 (1), 42-54 (2015).
  7. Kersten, K., de Visser, K. E., van Miltenburg, M. H., Jonkers, J. Genetically engineered mouse models in oncology research and cancer medicine. EMBO Molecular Medicine. 9 (2), 137-153 (2017).
  8. Ku, S. Y., et al. Rb1 and Trp53 cooperate to suppress prostate cancer lineage plasticity, metastasis, and antiandrogen resistance. Science. 355 (6320), 78-83 (2017).
  9. Lee, S. H., et al. Tumor evolution and drug response in patient-derived organoid models of bladder cancer. Cell. 173 (2), 515-528 (2018).
  10. Fujii, E., et al. A simple method for histopathological evaluation of organoids. Journal of Toxicologic Pathology. 31 (1), 81-85 (2018).
  11. Georgas, K. M., et al. An illustrated anatomical ontology of the developing mouse lower urogenital tract. Development. 142 (10), 1893-1908 (2015).
  12. Santos, C. P., et al. Urothelial organoids originating from Cd49f(high) mouse stem cells display Notch-dependent differentiation capacity. Nature Communication. 10 (1), 4407 (2019).
  13. Wang, L., et al. A genetically defined disease model reveals that urothelial cells can initiate divergent bladder cancer phenotypes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 117 (1), 563-572 (2020).
  14. Yang, D., et al. Intertumoral heterogeneity in SCLC is influenced by the cell type of origin. Cancer Discovery. 8 (10), 1316-1331 (2018).
  15. Sutherland, K. D., et al. Cell of origin of small cell lung cancer: inactivation of Trp53 and Rb1 in distinct cell types of adult mouse lung. Cancer Cell. 19 (6), 754-764 (2011).
  16. Bottger, F., et al. Tumor heterogeneity underlies differential cisplatin sensitivity in mouse models of small-cell lung cancer. Cell Reports. 27 (11), 3345-3358 (2019).
  17. Puzio-Kuter, A. M., et al. Inactivation of p53 and Pten promotes invasive bladder cancer. Genes & Development. 23 (6), 675-680 (2009).
  18. Park, S., et al. Novel mouse models of bladder cancer identify a prognostic signature associated with risk of disease progression. Ricerca sul cancro. 81 (20), 5161-5175 (2021).
  19. Hawley, S. P., Wills, M. K., Jones, N. Adenovirus-mediated genetic removal of signaling molecules in cultured primary mouse embryonic fibroblasts. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (43), e2160 (2010).
  20. Feng, W., et al. Rapid interrogation of cancer cell of origin through CRISPR editing. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 118 (32), 2110344118 (2021).
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Citazione di questo articolo
Xu, D., Wang, L., Wieczorek, K., Wang, Y., Zhang, X., Goodrich, D. W., Li, Q. Ex Vivo Organoid Model of Adenovirus-Cre Mediated Gene Deletions in Mouse Urothelial Cells. J. Vis. Exp. (183), e63855, doi:10.3791/63855 (2022).

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