Summary

Isolamento, Caracterização e Aplicação Terapêutica de Vesículas Extracelulares a partir de Células-Tronco Mesenquimais Humanas Cultivadas

Published: September 23, 2022
doi:

Summary

O presente protocolo descreve a centrifugação diferencial para isolar e caracterizar EVs representativos (exossomos e microvesículas) de CTMs humanas cultivadas. Outras aplicações desses EVs também são explicadas neste artigo.

Abstract

As vesículas extracelulares (EVs) são nanopartículas heterogêneas de membrana liberadas pela maioria dos tipos celulares, sendo cada vez mais reconhecidas como reguladoras fisiológicas da homeostase organismal e importantes indicadoras de patologias; Enquanto isso, seu imenso potencial para estabelecer terapêuticas de doenças acessíveis e controláveis está surgindo. As células-tronco mesenquimais (CTMs) podem liberar grandes quantidades de EVs em cultura, o que tem se mostrado promissor para impulsionar a regeneração tecidual eficaz e facilitar aplicações terapêuticas extensivas com boa escalabilidade e reprodutibilidade. Há uma demanda crescente por protocolos simples e eficazes para coleta e aplicação de MSC-EVs. Aqui, um protocolo detalhado é fornecido com base na centrifugação diferencial para isolar e caracterizar EVs representativos de CTMs, exossomos e microvesículas humanas cultivadas para aplicações futuras. A adaptabilidade desse método é mostrada para uma série de abordagens a jusante, como rotulagem, transplante local e injeção sistêmica. A implementação desse procedimento abordará a necessidade de coleta e aplicação simples e confiável de MSC-EVs em pesquisa translacional.

Introduction

As células-tronco são células pluripotentes indiferenciadas com capacidade de autorrenovação e potencial translacional1. As células-tronco mesenquimais (CTMs) são facilmente isoladas, cultivadas, expandidas e purificadas em laboratório, o que permanece característico das células-tronco após múltiplas passagens. Nos últimos anos, evidências crescentes têm apoiado a visão de que as CTMs atuam de forma parácrina no uso terapêutico 2,3. Especialmente a secreção de vesículas extracelulares (EVs) desempenha um papel crucial na mediação das funções biológicas das CTMs. Como nanopartículas membranosas heterogêneas liberadas da maioria dos tipos celulares, os EVs consistem em subcategorias denominadas exossomos (Exos), microvesículas (MVs) e corpos apoptóticos ainda maiores 4,5. Dentre eles, o Exos é o EV mais estudado, com tamanho de 40-150 nm, de origem endossômica e secretado ativamente em condições fisiológicas. Os MVs são formados por excreção direta da superfície da membrana plasmática celular com diâmetro de 100-1.000 nm, que se caracterizam pela alta expressão de fosfatidilserina e expressão de marcadores de superfície das células doadoras6. Os EVs contêm RNA, proteínas e outras moléculas bioativas, que têm funções semelhantes às células-mãe e desempenham um papel significativo na comunicação celular, resposta imune e reparo de danos teciduais7. As CTM-EVs têm sido amplamente investigadas como uma poderosa ferramenta terapêutica livre de células na medicina regenerativa8.

O isolamento e purificação de EVs derivados de MSC é um problema comum no campo da pesquisa e aplicação. Atualmente, a ultracentrifugação diferencial e gradiente de densidade9, o processo de ultrafiltração 10, a separação imunomagnética11, o cromatógrafo de exclusão molecular 12 e o chip microfluídico13 são métodos amplamente empregados no isolamento e purificação de EVs. Com as vantagens e desvantagens de cada abordagem, a quantidade, a pureza e a atividade dos EVs coletados não podem ser satisfeitas ao mesmo tempo14,15. No presente estudo, o protocolo de centrifugação diferencial de isolamento e caracterização de EVs de CTMs cultivadas é mostrado em detalhes, o que tem apoiado o uso terapêutico eficiente 16,17,18,19,20. A adaptabilidade desse método para uma série de abordagens a jusante, como marcação fluorescente, transplante local e injeção sistêmica, tem sido ainda mais exemplificada. A implementação desse procedimento abordará a necessidade de coleta e aplicação simples e confiável de MSC-EVs em pesquisa translacional.

Protocol

Todos os procedimentos em animais foram aprovados pelo Comitê de Cuidados e Uso de Animais da Quarta Universidade Médica Militar e realizados de acordo com o National Institutes of Health Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. Camundongos C57Bl/6 com oito semanas de idade (sem preferência por fêmeas ou machos) foram utilizados. As CTMs criopreservadas derivadas do cordão umbilical humano (CTMSCs), utilizadas no presente estudo, foram obtidas de fonte comercial (ver Tabela de Materiais). O…

Representative Results

MVs e Exos de UCMSCs humanas cultivadas são isolados seguindo o fluxo de trabalho experimental (Figura 1). Os resultados da NTA demonstram que o tamanho dos Exos de CTMs humanas varia de 40 nm a 335 nm com um tamanho de pico de cerca de 100 nm, e o tamanho de MVs varia de 50 nm a 445 nm com um tamanho de pico de 150 nm (Figura 2). A caracterização morfológica dos Exos derivados das CTM exibe uma forma típica de taça (Figura 3)…

Discussion

Os EVs estão emergindo para desempenhar um papel importante em diversas atividades biológicas, incluindo apresentação de antígenos, transporte de material genético, modificação do microambiente celular, entre outros. Além disso, sua ampla aplicação traz novas abordagens e oportunidades para o diagnóstico e tratamento de doenças21. A implementação de aplicações terapêuticas de EVs baseia-se no sucesso do isolamento e caracterização. No entanto, devido à falta de métodos padron…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi apoiado por bolsas da Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (32000974, 81930025 e 82170988) e da Fundação de Ciência Pós-Doutoral da China (2019M663986 e BX20190380). Somos gratos pela assistência do National Experimental Teaching Demonstration Center for Basic Medicine (AMFU) e do Laboratório Central de Análises e Testes do Centro de Inovação Médica Militar da Universidade Médica da Força Aérea.

Materials

10% povidone-iodine (Betadine) Weizhenyuan 10053956954292 Wound disinfection
Calibration solution Particle Metrix 110-0020 Calibrate the NTA instrument
Carprofen Sigma 53716-49-7 Analgesic medicine
Caudal vein imager  KEW Life Science KW-XXY Caudal vein imager
Centrifuge Eppendorf 5418R Centrifugation
Fatal bovine serum Corning 35-081-CV Culture of UCMSCs
Formvar/carbon-coated square mesh PBL Assay Science  24916-25 Transmission electron microscope
Heating pad Zhongke Life Science Z8G5JBMz Post-treatment care of animals
Heparin Solution StemCell 7980 Systemic injection
Isoflurane RWD Life Science R510-22 Animal anesthesia
Minimum Essential Medium Alpha basic (1x) Gibco C12571500BT Culture of UCMSCs
Nanoparticle tracking analyzer Particle Metrix ZetaView PMX120 Nanoparticle tracking analysis
PBS (1x) Meilunbio MA0015 Resuspend EVs
Penicillin/Streptomycin Procell Life Science PB180120 Culture of UCMSCs
Phosphotungstic acid Solarbio 12501-23-4 Transmission electron microscope
Pipette Eppendorf 3120000224
PKH26 Red Fluorescent Cell Linker Kit Sigma-Aldrich MINI26 Labeling EVs
Skin biopsy punch Acuderm 69038-10-50 Skin defects
Software ZetaView Particle Metrix Version 8.05.14 SP7 
Thermostatic equipment Grant v-0001-0005 Water bath
Transmission electron microscope HITACHI HT7800 Transmission electron microscope
UCMSCs Bai'ao  UKK220201 Commercially UCMSCs
Ultracentrifuge Beckman XPN-100 Centrifugation
Ultrapure filtered water purification system Milli-Q IQ 7000 Preparation of ultrapure water

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Citazione di questo articolo
Xing, S., Zhang, K., Tang, S., Liu, L., Cao, Y., Zheng, C., Sui, B., Jin, Y. Isolation, Characterization, and Therapeutic Application of Extracellular Vesicles from Cultured Human Mesenchymal Stem Cells. J. Vis. Exp. (187), e64135, doi:10.3791/64135 (2022).

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