Summary

抗がんアプタマーの選択性と特異性を評価するためのフローサイトメトリーベースの細胞表面タンパク質結合アッセイ

Published: September 13, 2022
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Summary

抗がんアプタマー開発に必要なステップは、標的への結合をテストすることです。この結合を研究するためのフローサイトメトリーベースのアッセイを実証し、ネガティブコントロールのアプタマーとその特定のタンパク質に対して陽性または陰性の癌細胞を含めることの重要性を強調しています。

Abstract

抗がんアプタマーの開発における重要な課題は、開発したアプタマーの標的タンパク質に対する選択性と特異性を効率的に決定することです。モノクローナル抗体に比べていくつかの利点があるため、アプタマーの開発は癌研究者の間で絶大な人気を得ています。指数関数的濃縮(SELEX)によるリガンドの系統的進化は、目的のタンパク質に特異的なアプタマーを開発する最も一般的な方法です。SELEXに続いて、迅速かつ効率的な結合アッセイにより同定プロセスが加速され、アプタマーの選択性と特異性が確認されます。

この論文では、上皮細胞接着分子(EpCAM)に特異的なアプタマーの段階的なフローサイトメトリーベースの結合アッセイについて説明します。膜貫通糖タンパク質EpCAMは、ほとんどの癌腫で過剰発現しており、癌の開始、進行、および転移に役割を果たしています。したがって、腫瘍への標的薬物送達の貴重な候補です。膜結合型EpCAMに対するアプタマーの選択性および特異性を評価するには、EpCAM陽性および陰性細胞が必要である。さらに、EpCAM結合アプタマーと同様の長さおよび2次元(2D)構造を有する非結合EpCAMアプタマーが必要である。結合アッセイには、異なるバッファー(ブロッキングバッファー、洗浄バッファー、インキュベーションバッファー、およびFACSバッファー)およびインキュベーションステップが含まれます。

アプタマーは細胞株と共にインキュベートされる。インキュベーションおよび洗浄ステップに続いて、細胞は高感度フローサイトメトリーアッセイを使用して評価されます。結果の分析は、EpCAM特異的アプタマーのEpCAM陰性細胞ではなくEpCAM陽性細胞への結合を示す。EpCAM陽性細胞では、これは、非結合アプタマー対照と比較して、EpCAMアプタマーの右への結合におけるバンドシフトとして描かれる。EpCAM陰性細胞では、EpCAM結合アプタマーおよび非結合アプタマーの対応するバンドが重複する。これは、EpCAMアプタマーの選択性と特異性を示しています。このプロトコルはEpCAMアプタマーに焦点を当てていますが、このプロトコルは他の公開されているアプタマーにも適用できます。

Introduction

がんは依然として世界中の主要な死亡原因の1つです1。ここ数十年で癌治療が大幅に改善されたにもかかわらず、抗癌剤の開発は依然として非常に議論されているトピックです。これは、がん治療の主力である化学療法には、患者の治療へのコンプライアンスを制限する重篤な副作用が伴うためです。さらに、化学療法誘発性癌治療に対する耐性は、医学的介入の唯一の選択肢としてのその適用を制限している。モノクローナル抗体(mAb)の適用により、がん治療に対する反応が増強されました2。モノクローナル抗体を使用する理論的根拠は、化学療法薬の有効性を改善し、その副作用を最小限に抑えることでした。.しかし、モノクローナル抗体の投与も課題となりました。これは、mAbによる免疫反応だけでなく、動物に依存して高価な製造コストと困難な保管条件によるものでした3。1990年代のアプタマーの導入4 は、アプタマーの適用がモノクローナル抗体に関連する課題に対処できるため、癌治療に新たな希望をもたらしました。

アプタマーは、特定の標的に対して特異的に産生される短い核酸配列です。指数関数的濃縮(SELEX)によるリガンドの系統的進化は、アプタマー生産における一般的な方法です。SELEXでは、目的のタンパク質をランダムなヌクレオチド配列のライブラリとともにインキュベートし、一連の反復サイクルを経て、そのタンパク質に特異的なアプタマーを精製します。アプタマーはモノクローナル抗体と同様の標的選択性・特異性を有しており、この分野の医薬品開発は有望な応用が期待されています。がんバイオマーカーに特異的なアプタマーは、単剤およびがん診断ツールとして適用できます567。ナノサイズの構造により、これらのアプタマーは、細胞傷害性物質を腫瘍に特異的に送達するための薬物キャリアとしても作用する可能性があります8。これにより、標的薬物送達の有効性が高まり、化学療法に関連するオフターゲットの副作用が減少します。.さらに、これらのナノ医薬品は組織浸透率が高いため、深部腫瘍の薬物送達および治療の望ましい候補となります。アプタマーは、血液脳関門(BBB)上に発現するトランスポーターを標的にして、脳腫瘍への薬物送達を改善するように設計することもできる9。このようなアプタマーの良い例は、トランスフェリン受容体(TfR)10 を標的にしてBBB全体の薬物送達を増強し、細胞傷害性薬物ペイロードを腫瘍細胞に送達する二機能性アプタマーである11

アプタマーのすべての利点にもかかわらず、この分野での医薬品開発はまだ市販され、成功した抗がん剤を生み出していません。この理由の1つは、この分野の研究者が世界的に従うことができる標準的で再現可能な方法の欠如である可能性があります。この論文では、細胞表面に発現する天然タンパク質に結合するアプタマーの段階的なプロトコルが実証されています。このプロトコルは、抗がんアプタマーの前臨床評価における前提条件ステップです。アッセイは、選択性および特異性の確認のためにSELEXまたは公表されたアプタマー配列から収集された精製アプタマーの選択性および特異性を示すために行われる。このフローサイトメトリーベースのアッセイは、アプタマーの選択性と特異性を正確に示す迅速で信頼性の高い高感度アッセイであり、アプタマーは細胞表面のタンパク質に対してテストされています121314。この方法は、この論文15に示すEpCAMに特異的なアプタマーの結合を用いて実証される。膜貫通糖タンパク質としてのEpCAMは、腫瘍細胞のシグナル伝達、進行、遊走、および転移において役割を果たします16,17。このアプタマーの選択性と特異性を示すために、EpCAM陽性および陰性の癌細胞を使用した。以前に開発されたEpCAM特異的アプタマーであるTEPP(5′-GC GCG GTAC CGC GC TAACG GA GGTTGCG TCC GT-3′)および陰性対照アプタマーであるTENN(5′-GC GCG TGCA CGC GC TA ACG GA TTCCTTT TCC GT-3)を、それぞれEpCAM結合性アプタマーおよび非結合性アプタマーとして用いた10。TEPPおよびTENNの両方の3’末端をTYE665フルオロフォアで標識した。

TEPPは、一方の端からEpCAMを、もう一方の端からTfRを標的とする二機能性アプタマーです。これにより、TEPPはEpCAM+ 脳腫瘍への薬物送達に適した候補となっています。TEPPは、そのTfR特異的末端を使用して血液脳関門を横断し、EpCAM特異的末端を使用して腫瘍を発見し、その貨物(細胞傷害性薬物など)を腫瘍に送達する。TENNはTEPPと同様の長さと2D構造を持っていますが、EpCAMやTfRに親和性がないため、適切なネガティブコントロールアプタマーです。TEPPとTENNを用いて、フローサイトメトリーを用いてアプタマーの標的タンパク質への結合を試験する試験を本論文に示します。このプロトコルは、細胞特異的アプタマーの開発に適用されます。また、文献で入手可能なアプタマー配列のさらなる相補的および確認的解析にも適用可能である。このプロトコルは、以前に公開されたアプタマーを研究開発(R&D)目的で使用することを検討しているアプタマー分野の初心者にも使用できます。この論文では、文献で利用可能な2つのアプタマー配列を研究しています。

Protocol

注意: 実験を開始する前に、白衣、手袋、ゴーグルなどの個人用保護具を着用してください。このプロトコルで使用される材料、試薬、機器、およびソフトウェアの詳細については、 材料の表 を参照してください。 1. アッセイに必要なバッファー この実験に必要なバッファーであるアプタマーフォールディングに必要なSELEXバッファー?…

Representative Results

新薬の発見と開発の重要な側面は、医薬品候補の選択性と特異性を保証することです。これは、薬剤候補が異なる細胞を識別でき、目的の細胞集団にのみ影響を与えることができる必要があることを意味します(選択性)。選択性は、目的のタンパク質の発現に関して異なる細胞株を用いて研究される。この研究では、MDA-MB-231およびHEK 293T細胞株をEpCAM陽性および陰性細胞として選択した。特異…

Discussion

新しいアプタマーを開発する際の重要な課題は、このプロセスのさまざまなステップに適用される標準的なガイドラインがないことです。McKeagueらは最近、関連する課題のいくつかを実証し、出版物でのデータの不明確な提示と研究の複製の失敗につながりました。彼らは、アプタマー19を特徴づける際に考慮するために必要な基本的なガイドラインを提案した。アプタマー…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

著者らは、心身の健康と臨床翻訳研究所(IMPACT)SEEDの資金提供、ディーキン大学の「アルフレッドディーキンポスドク研究フェローシップ」プログラム、および「オーストラリア政府研究トレーニングプログラム奨学金」を認めています。

Materials

1.5 mL microcentrifuge tubes with attached lid Sigma-Aldrich T6649
15 mL CellStar blue screw cap, conical bottom tube Greiner Bio One 188271
5 mL serological pipettes Greiner Bio One 606180
BD FACSCanto II Flow Becton Dickinson Cytometer Becton Dickinson N/A
BD FACSDiva V9.0 BD Biosciences N/A
Bovine Serum Albumin (BSA), Lyophilized powder Sigma-AldrichTM A7906-50G
Bright-line Hemocytometer Sigma-Aldrich Z359629
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM) High Glucose Media Powder Life Technologies 12100046
Dulbecco’s Phosphate- Buffered Saline (DPBS) Life Technologies 21300025
FlowJo, LLC 10.8.1 BD Biosciences N/A
Foetal Bovine Serum (FBS) Bovogen SFBS-F
HEK293T American Type Culture Collection ACS-4500
Heracell 150i CO2 Incubator Thermo Fisher Scientific N/A
Heraeus Megafuge 16R Centrifuge Thermo Fisher Scientific N/A
Magnesium Chloride (MgCl2) Sigma-Aldrich M8266
MDA-MB-231 American Type Culture Collection CRM-HTB-26
Microplate, PS, 96 well, F-bottom (Chimney well), Black Greiner Bio One 655076
MiniAmp Thermal Cycler Thermo Fisher Scientific A37834
Phosphate-Buffered Saline (PBS) tablets Life Technologies 18912014
Pyrogen- and RNase-free ultrapure water Milli-Q
T75 Cell Culture flask Cellstar 658170
TENN Integrated DNA Technologies N/A 5′-GC GCG TGCA CGC GC TA ACG GA TTCCTTT TCC GT-3
TEPP Integrated DNA Technologies N/A 5′-GC GCG GTAC CGC GC TA ACG GA GGTTGCG TCC GT-3′
Transfer RNA (tRNA) Sigma-Aldrich R8508-5X1ML
Trypan Blue Solution Life Technologies 15250061
Trypsin-EDTA Gibco 15400054

Riferimenti

  1. Cancer. World Health Organization Available from: https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/cancer#:~:text=Cancer%20is%20a%20leading%20cause.and%20rectum%20and%20prostate%20cancers (2022)
  2. Liu, J. K. H. The history of monoclonal antibody development – Progress, remaining challenges and future innovations. Annals of Medicine and Surgery. 3 (4), 113-116 (2014).
  3. Nakhjavani, M., Shigdar, S. Future of PD-1/PD-L1 axis modulation for the treatment of triple-negative breast cancer. Pharmacological Research. 175, 106019 (2022).
  4. Bukari, B., Samarasinghe, R. M., Noibanchong, J., Shigdar, S. L. Non-invasive delivery of therapeutics into the brain: the potential of aptamers for targeted delivery. Biomedicines. 8 (5), 120 (2020).
  5. Wu, X., Chen, J., Wu, M., Zhao, J. X. Aptamers: active targeting ligands for cancer diagnosis and therapy. Theranostics. 5 (4), 322 (2015).
  6. Feng, X., et al. The aptamer functionalized nanocomposite used for prostate cancer diagnosis and therapy. Journal of Nanomaterials. 2022, (2022).
  7. Huang, J., et al. Advances in aptamer-based biomarker discovery. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 9, 571 (2021).
  8. Ashrafuzzaman, M. Aptamers as both drugs and drug-carriers. BioMed Research International. 2014, (2014).
  9. Nakhjavani, M., Samarasinghe, R. M., Shigdar, S. Triple-negative breast cancer brain metastasis: an update on druggable targets, current clinical trials, and future treatment options. Drug Discovery Today. , (2022).
  10. Macdonald, J., et al. Development of a bifunctional aptamer targeting the transferrin receptor and epithelial cell adhesion molecule (EpCAM) for the treatment of brain cancer metastases. ACS Chemical Neuroscience. 8 (4), 777-784 (2017).
  11. Macdonald, J., et al. Bifunctional aptamer-doxorubicin conjugate crosses the blood-brain barrier and selectively delivers its payload to EpCAM-positive tumor cells. Nucleic Acid Therapeutics. 30 (2), 117-128 (2020).
  12. Shigdar, S., Agnello, L., Fedele, M., Camorani, S., Cerchia, L. Profiling cancer cells by cell-SELEX: use of aptamers for discovery of actionable biomarkers and therapeutic applications thereof. Pharmaceutics. 14 (1), 28 (2021).
  13. Rahimizadeh, K., et al. Development of cell-specific aptamers: recent advances and insight into the selection procedures. Molecules. 22 (12), 2070 (2017).
  14. Chen, M., et al. Development of cell-SELEX technology and its application in cancer diagnosis and therapy. International Journal of Molecular Sciences. 17 (12), 2079 (2016).
  15. Shigdar, S., et al. The use of sensitive chemical antibodies for diagnosis: detection of low levels of EpCAM in breast cancer. PLoS One. 8 (2), 57613 (2013).
  16. Ni, J., et al. Role of the EpCAM (CD326) in prostate cancer metastasis and progression. Cancer and Metastasis Reviews. 31 (3), 779-791 (2012).
  17. Ni, J., et al. Epithelial cell adhesion molecule (EpCAM) is associated with prostate cancer metastasis and chemo/radioresistance via the PI3K/Akt/mTOR signaling pathway. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 45 (12), 2736-2748 (2013).
  18. McKeague, M., Kruse, P. F., Patterson, M. K., et al. . Tissue Culture. , 395-397 (1973).
  19. McKeague, M., et al. The minimum aptamer publication standards (MAPS guidelines) for de novo aptamer selection. Aptamers. 6, 10-18 (2022).
  20. Schoofs, G., Van Hout, A., D’huys, T., Schols, D., Van Loy, T. A flow cytometry-based assay to identify compounds that disrupt binding of fluorescently-labeled CXC Chemokine ligand 12 to CXC Chemokine receptor 4. Journal of Visualized Experiments. (133), e57271 (2018).
  21. McKinnon, K. M. Flow cytometry: an overview. Current Protocols in Immunology. 120 (1), 1-11 (2018).
  22. Kamiloglu, S., Sari, G., Ozdal, T., Capanoglu, E. Guidelines for cell viability assays. Food Frontiers. 1 (3), 332-349 (2020).
  23. Ruscito, A., DeRosa, M. C. Small-molecule binding aptamers: Selection strategies, characterization, and applications. Frontiers in Chemistry. 4, 14 (2016).
  24. McKeague, M., et al. Comprehensive analytical comparison of strategies used for small molecule aptamer evaluation. Analytical Chemistry. 87 (17), 8608-8612 (2015).
  25. Henri, J., Bayat, N., Macdonald, J., Shigdar, S. A guide to using nucleic acid aptamers in cell based assays. Aptamers. 23, (2019).
  26. Mao, H., et al. The mechanism and regularity of quenching the effect of bases on fluorophores: the base-quenched probe method. Analyst. 143 (14), 3292-3301 (2018).
  27. McKeague, M., et al. Analysis of in vitro aptamer selection parameters. Journal of Molecular Evolution. 81 (5), 150-161 (2015).
  28. Chen, B., et al. Targeting negative surface charges of cancer cells by multifunctional nanoprobes. Theranostics. 6 (11), 1887 (2016).
  29. Shigdar, S., et al. RNA aptamers targeting cancer stem cell marker CD133. Cancer Letters. 330 (1), 84-95 (2013).
  30. Amraee, M., Oloomi, M., Yavari, A., Bouzari, S. DNA aptamer identification and characterization for E. coli O157 detection using cell based SELEX method. Analytical Biochemistry. 536, 36-44 (2017).
  31. Yu, X. -. X., et al. Selection and characterization of a novel DNA aptamer, Apt-07S specific to hepatocellular carcinoma cells. Drug Design, Development and Therapy. 14, 1535 (2020).
check_url/it/64304?article_type=t

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Citazione di questo articolo
Nakhjavani, M., Giles, B., Strom, M., Vi, C., Attenborough, S., Shigdar, S. A Flow Cytometry-Based Cell Surface Protein Binding Assay for Assessing Selectivity and Specificity of an Anticancer Aptamer. J. Vis. Exp. (187), e64304, doi:10.3791/64304 (2022).

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