Summary

Imunohistoquímica Fluorescente Cíclica Multiplex

Published: January 26, 2024
doi:

Summary

A imunohistoquímica cíclica multiplex permite a detecção in situ de múltiplos marcadores simultaneamente usando incubação antígeno-anticorpo repetida, varredura de imagens e alinhamento e integração de imagens. Aqui, apresentamos o protocolo operacional para identificação de substratos de células imunes com essa tecnologia em amostras de câncer de pulmão e metástases cerebrais pareadas.

Abstract

O microambiente tumoral envolve interações entre células hospedeiras, células tumorais, células imunes, células estromais e vasculatura. Caracterizar e organizar espacialmente subgrupos de células imunes e proteínas-alvo são cruciais para fins prognósticos e terapêuticos. Isso levou ao desenvolvimento de métodos de coloração imunoistoquímica multiplexada. A imunohistoquímica por fluorescência multiplex permite a detecção simultânea de múltiplos marcadores, facilitando uma compreensão abrangente da função celular e das interações intercelulares. Neste trabalho, descrevemos um fluxo de trabalho para o ensaio de imunohistoquímica fluorescente cíclica multiplex e sua aplicação na análise de quantificação de subgrupos de linfócitos. A coloração por imunoistoquímica fluorescente cíclica multiplex segue etapas e reagentes semelhantes aos da imunohistoquímica padrão, envolvendo recuperação de antígenos, incubação cíclica de anticorpos e coloração em lâmina de tecido fixada em formalina e emblocada em parafina (FFPE). Durante a reação antígeno-anticorpo, uma mistura de anticorpos de diferentes espécies é preparada. Condições, como tempo de recuperação de antígenos e concentração de anticorpos, são otimizadas e validadas para aumentar a relação sinal-ruído. Esta técnica é reprodutível e serve como uma ferramenta valiosa para pesquisas em imunoterapia e aplicações clínicas.

Introduction

As metástases cerebrais (MB) representam os tumores mais comuns do sistema nervoso central (SNC), ocorrendo em quase metade dos casos de câncer de pulmão não pequenas células (CPNPC), com mau prognóstico1. Estima-se que 10%-20% dos pacientes com CPNPC já apresentam MB no momento do diagnóstico inicial, e aproximadamente 40% dos casos de CPNPC desenvolverão MB durante o curso do tratamento2. O microambiente tumoral (TME) está intimamente associado à ocorrência de CPNPC e MB, incluindo vários componentes, como vasos sanguíneos, fibroblastos, macrófagos, matriz extracelular (MEC), células imunes linfoides, derivadas da medula óssea e moléculas sinalizadoras 3,4. As células imunes microambientais desempenham um papel crucial na influência do crescimento e desenvolvimento de células cancerosas. Metástases cerebrais apresentam inúmeros alvos potenciais de tratamento caracterizados por microambientes imunológicos complexos e processos de sinalização. Por exemplo, os inibidores de PD-1 demonstraram eficácia clínica para pacientes com metástase cerebral de câncer de pulmão (MBCL) como um inibidor de ponto de verificação imunológica (ICI). No entanto, a frequência de respostas à terapia com PD-1 varia entre CPNPC primário e MCCBL5, sugerindo que o microambiente imune tumoral atua como um regulador crítico da ICI.

A imuno-histoquímica (IHQ) é uma ferramenta valiosa nos campos da biologia, medicina de fundação e patologia6. Esse método de detecção visualiza a expressão antigênica através da interação antígeno-anticorpo em uma lâminatecidual7. A imunoistoquímica é utilizada para diagnosticar marcadores preditivos, avaliar marcadores prognósticos, orientar terapias-alvo e explorar as funções biológicas das célulastumorais8. No entanto, o método tradicional de IHQ só pode detectar um biomarcador de cada vez. Para suprir essa limitação, a inovação da tecnologia imunoistoquímica levou ao desenvolvimento da imunohistoquímica por fluorescência multiplex (mfIHC), que permite a identificação simultânea de múltiplos marcadores proteicos na mesma lâmina tecidual, tanto em campo claro quanto em campofluorescente9. Esse avanço fornece uma análise precisa da composição celular e das interações moleculares entre células estromais, células imunes e células cancerosas dentro da TME.

Neste estudo, apresentamos um protocolo de imunohistoquímica cíclica multiplex para analisar a distribuição espacial das células imunes. Dois anticorpos primários de espécies diferentes, como coelho e rato, são escolhidos para incubação simultaneamente, seguidos por anticorpos secundários marcados com fluorescência. A recuperação do antígeno é realizada após cada rodada de reação antígeno-anticorpo. A autofluorescência é bloqueada e 4′, 6-diamidino-2-fenilindol (DAPI) é usado para colorir os núcleos. O painel inclui detecção sequencial de CD3, CD8, CD20 e CK, as células são categorizadas de acordo com os marcadores: células tumorais (CK+), células T maduras (CD3+), células T citotóxicas (CD3+CD8+), células B (CD20+)10,11.

Protocol

A pesquisa foi aprovada pelo comitê de ética médica do Yunnan Cancer Hospital/Third Affiliated Hospital da Kunming Medical University. Todos os sujeitos/responsáveis assinaram o termo de consentimento livre e esclarecido. 1. Preparação do slide Cortes de blocos de parafina pareados contendo células de metástases cerebrais de tumor primário de pulmão ou câncer de pulmão com espessura de 4 μm usando micrótomo. Retire as seções para regar e separe com um…

Representative Results

Apresentamos um protocolo para detecção cíclica de antígenos usando fluorescência multiplex de 5 cores em uma única lâmina. Através da otimização do ensaio, possibilitamos a incubação de dois anticorpos de espécies diferentes (Figura 1). Os dispositivos necessários para o procedimento experimental incluem panela de pressão e caixa de imunomarcação (Figura 2A). Após o término do ensaio, definimos a pseudocor dos quat…

Discussion

Descrevemos o processo para coloração imunoistoquímica por fluorescência cíclica multiplex. A seleção primária de anticorpos é um aspecto crucial do ensaio imunohistoquímico de fluorescência, e anticorpos monoclonais são recomendados para melhor especificidade e repetibilidade. Para otimizar a concentração de trabalho do anticorpo primário, uma série de diluições tem sido testada através de experimentos de imunohistoquímica. Tanto os controles positivos (para avaliar a expressão do antígeno alvo) qu…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi apoiado pela Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (NO.81860413, 81960455), Fundo do Departamento de Ciência e Tecnologia de Yunnan (202001AY070001-080), Fundação de Pesquisa Científica do Departamento de Educação da Província de Yunnan (2019J1274).

Materials

0.15 mol/L KmnO4 Maixin Biotechnology Co. Ltd. MST-8005
100x sodium citrate  Maixin Biotechnology Co., Ltd MVS-0100
3% hydrogen peroxide Maixin Biotechnology Co., Ltd SP KIT-A1
3D Pannoramic MIDI 3D histech Ltd Pannoramic MIDI 1.18
Alexa Fluor 488 Abcam ab150113
Alexa Fluor 568  Abcam ab175701
Alexa Fluor 594 Abcam ab150116
Alexa Fluor 647 Abcam ab150079
Bond primary antibody diluent Lecia AR9352
CD20 Maixin Biotechnology Co., Ltd kit-0001
CD3 Maixin Biotechnology Co., Ltd.  kit-0003
CD8  Maixin Biotechnology Co., Ltd RMA-0514
CK Maixin Biotechnology Co. Ltd. MAB-0671,
DAPI sig-ma D8417
ethanol Sinopharm Group Chemical reagent Co., LTD 10009218
Histocore Multicut lecia 2245
PBS(powder) Maixin Biotechnology Co., Ltd PBS-0061
slide viwer  3D histech Ltd
xylene Sinopharm Group Chemical reagent Co., LTD 10023418

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Chen, Y., Zhang, H., Fan, Y., Yang, L., Dong, Y. Multiplex Cyclic Fluorescent Immunohistochemistry. J. Vis. Exp. (203), e66136, doi:10.3791/66136 (2024).

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