Summary

마우스의 인대 유도 임플란트 주위염의 실험 모델

Published: May 17, 2024
doi:

Summary

이것은 마우스에서 합자에 의한 임플란트 주위염의 실험 모델에 대한 보고서입니다. 동물의 수술 전후 관리, 발치, 임플란트 식립, 합자에 의한 임플란트 주위염에 이르기까지 모든 수술 단계를 설명합니다.

Abstract

치과 임플란트는 성공률과 생존율이 높습니다. 그러나 임플란트 주위염(PI)과 같은 합병증은 치료하기가 매우 어렵습니다. PI는 치과 임플란트 주변 조직의 염증과 지지 뼈의 점진적인 손실을 특징으로 합니다. 건강과 기능 측면에서 치과 임플란트의 수명을 최적화하려면 임플란트 주위염 병태생리학을 이해하는 것이 중요합니다. 이와 관련하여 연구에서 마우스 모델을 사용하는 것은 임상 환경을 재현하는 데 분명한 이점이 있음이 입증되었습니다. 이 연구는 마우스에서 인대 유도 임플란트 주위염의 실험 모델을 설명하고 관찰된 뼈 및 조직 변화를 감안할 때 이 질병을 유도하는 데 효과가 있는지 여부를 결정하는 것을 목표로 했습니다. 실험적 임플란트 주위 유도는 치아 발치, 임플란트 식립 및 합자 유도 PI의 단계를 포함합니다. 3주령 C57BL/6J 수컷 마우스 18마리의 샘플을 합자(N=9)와 대조군 비합자(N=9)의 두 그룹으로 나누었습니다. 임상적, 방사선학적 및 조직학적 요인의 평가가 수행되었습니다. 합자 그룹은 비합자 그룹보다 훨씬 더 높은 뼈 손실, 연조직 부종 증가 및 정점 상피 이동을 보여주었습니다. 이 전임상 모델은 마우스에서 임플란트 주위염을 성공적으로 유도할 수 있다는 결론을 내렸습니다.

Introduction

치과 임플란트는 빠진 치아를 대체하기 위한 바람직한 선택으로 점점 더 보편화되고 있다1. 미국 성인 인구에서 치과 임플란트의 보급률은 2026년까지 최대 23%까지 증가할 것으로 예상됩니다2. Grand View Research(2022)의 시장 분석 보고서에 따르면 치과용 임플란트의 글로벌 시장 규모는 2022년에 약 46억 달러에 이를 것으로 예상됩니다. 또한 2030년까지 약 10%의 꾸준한 연간 성장률을 보일 것으로 예상됩니다3. 불행히도 치과 임플란트의 사용은 임플란트 주위염과 같은 합병증을 유발할 수 있습니다. 임플란트 주위염은 임플란트 주위 점막의 염증과 그에 따른 지지 뼈의 점진적인 손실을 특징으로 하는 생물막 유발 질환으로 정의되었다4.

체계적 문헌고찰에 따르면 임플란트 주위염의 평균 유병률은 환자 수준에서 19.53%(95% 신뢰 구간[CI], 12.87 – 26.19%), 임플란트 수준에서 12.53%(95% CI 11.67 – 13.39%)였다5. 임플란트 주위염은 임플란트 실패의 증가로 인해 공중 보건이 증가하고 결과적으로 상당한 치료 비용이 발생하기 때문에 공중 보건이 증가하고 있음을 나타냅니다6.

임플란트 주위염의 발병 기전을 이해하는 것은 임플란트의 발병과 진행을 예방하고 심미성과 기능 측면에서 임플란트의 수명을 극대화하기 위한 체계적인 접근법을 개발하는 데 매우 중요하다 7,8. 이러한 의미에서, 생쥐가 인간과 유전자의 95% 이상을 공유한다는 점9,10, 이용 가능한 온라인 유전자 데이터베이스의 수, 임상 시나리오를 재현할 수 있는 능력11을 고려할 때, 치과 연구에서 쥐 모델을 사용하는 것이 유리한 것으로 입증되었다. 설명된 모든 장점은 염증 조직 평가 및 질병 매핑을 위한 유전자 변형 가용성(예: 녹아웃 및 과발현)을 넘어 다양한 질병12에서 유전적 기전을 해부하고, 접근 가능한 수용 및 관리, 인간 패널로 널리 이용 가능한 항체를 가능하게 한다13. 장점이 있기는 하지만, 마우스의 임플란트 주위염을 다룬 논문은 거의 없다. 이는 무엇보다도 미니 임플란트를 구하거나 설치하는 데 어려움이 있는 등 방법론적 문제 때문입니다.

마우스에서 임플란트 주위염을 발생시키기 위해, 많은 프로토콜이 설명되었는데, 예컨대 유도 임플란트 주위염, 박테리아 유발 임플란트 주위염(14), 지다당류(LPS)-유도 임플란트 주위염(Lipopolysaccharide (LPS)-유도 임플란트 주위염(Lipopolysaccharide, LPS)-유도 임플란트 주위염(peri-implantitis)15, 또는 LPS+합자-유도 임플란트 주위염(joint LPS-induced implant-induced implantitis)16 조합이 있다. 여기서는 치주염 17,18,19 및 최근에는 임플란트 주위염 20,21을 유발하기 위해 가장 널리 사용되는 방법이기 때문에 합자 모델에 초점을 맞출 것입니다. 점막하 위치에서 임플란트 주위에 배치된 합자는 플라크 축적을 자극하고 결과적으로 조직 염증을 유발합니다. 따라서 이 접근법의 개발은 임플란트 주위 질환에 대한 전임상 연구를 위한 실행 가능한 비용 편익 기술의 표시를 기반으로 합니다. 이 연구는 마우스에서 인찰 유도 임플란트 주위염의 실험 모델을 설명하고 관찰된 뼈 및 조직 변화를 감안할 때 이 질병을 유도하는 데 효과가 있는지 여부를 결정하는 것을 목표로 합니다.

이 기사의 전반적인 목표는 인찰에 의해 마우스의 임플란트 주위염을 유도하는 데 적용된 프로토콜을 보고하고 임플란트 주변의 조직 평가 및 뼈 손실을 통해 그 효과를 관찰하는 것입니다.

Protocol

동물을 대상으로 한 시술은 캘리포니아 대학교 로스앤젤레스 캠퍼스의 총장 산하 동물 연구 위원회(ARC 프로토콜 번호 2002-125)와 동물 연구: 생체 내 실험 보고(ARRIVE)22의 승인을 받았습니다. 이 방법을 위해 18마리의 3주 된 C57BL/6J 수컷 마우스를 사용하여 치아 발치, 임플란트 식립 및 임플란트 주위 유도를 받았습니다. 모든 치과 시술은 10× 현미경 배율로 수행되었으며 훈련되고 ?…

Representative Results

이 방법을 위해 18마리의 3주 된 C57BL/6J 수컷 마우스를 사용하여 치아 발치, 임플란트 식립 및 임플란트 주위 유도를 받았습니다. 그룹당 9마리의 동물이 있었는데, 이는 선형 골 손실이 80%의 검정력, 15%의 표준편차(σ) 및 95%의 신뢰구간(α=0.05)을 달성한다는 점을 고려하면 통계적으로 유의한 수치였다. 실험 중에 쥐에게 부드러운 식단을 먹였습니다 . 9마리의 마우스는 합자(ligature-induced periimp…

Discussion

이 프로토콜은 마우스의 합자 모델을 사용하여 임플란트 주위 유도를 위한 수술 절차에 대한 설명 보고서를 제공합니다. 생쥐를 다루는 것은 비용 효율적이라는 장점이 있고, 다른 측면들 중에서도 많은 배경(23)을 감안할 때 광범위한 유전자 배열의 가용성(24,25)이 있다. 수년에 걸쳐, 몇몇 연구는 임플란트 주위염을 포함하여 의학 및 …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 연구는 NIH/NIDCR DE031431의 지원을 받았습니다. 석회질 제거 조직학적 절편을 준비하는 데 도움을 주신 UCLA의 중개 병리학 핵심 실험실에 감사드립니다.

Materials

#5 dental explorer Hu-Friedy, Chicago, IL 392-0911  Dental luxation
15c blade and surgical scalpel Henry Schein Inc., Melville, NY 1126186 Tissue incision
6-0 silk ligatures Fisher Scientific, Hampton, NH NC9201232 Ligature
Amoxicillin 50μg/mL Zoetis, San Diego, CA TS/DRUGS/57/2003 Oral suspension
Bacon Soft Diet Bio Serve®, Frenchtown, NJ 14-726-701
C57BL/6J male mice The Jackson Laboratories, Bar Harbor, ME, USA 000664 Age: 3-week-old
CTAn software V.1.16 Bruker, Billerica, MA Volumetric analysis
Dolphin software Navantis, Toronto, CA Linear bone analysis
Implant carrier & Tip D. P. Machining Inc., La Verne, CA Unique product  Implant holder
Implant support D. P. Machining Inc., La Verne, CA Unique product  Implant capture
Isoflurane  Vet One, Boise, ID NDC13985-528-60 Inhalational anesthetic
Micro-CT scan 1172 SkyScan, Kontich, Belgium μCT scans
Nrecon Software Bruker Corporation, Billerica, MA Images reconstruction
Ø 0.3mm – L 2.5mm Micro Drills  Sphinx, Hoffman Estates, IL ART. 50699  Osteotomy
Ø 0.5mm – L 1.0mm Titanium implants D. P. Machining Inc., La Verne, CA Unique product
Ophthalmic lubricant Apexa, Ontario, CA NDC13985-600-03 Artificial tears
Pin Vise General Tools, Secaucus, NJ 90 Osteotomy
Rimadyl 50mg/ml Zoetis, San Diego, CA 4019449 Anti-inflammatory
Sterile cotton tipped Dynarex, Glendale, AZ 4304-1 Hemostasis
Tip forceps Fine Science Tools, Foster City, CA 11071-10 Dental Extraction
Tying forceps Fine Science Tools, Foster City, CA 18025-10 Ligature placement

Riferimenti

  1. Ho, K., et al. A cross-sectional survey of patient’s perception and knowledge of dental implants in japan. Int J Implant Dent. 8 (1), 14 (2022).
  2. Elani, H. W., Starr, J. R., Da Silva, J. D., Gallucci, G. O. Trends in dental implant use in the u.S., 1999-2016, and projections to 2026. J Dent Res. 97 (13), 1424-1430 (2018).
  3. . Available from: https://www.grandviewresearch.com/industry-analysis/dental-implants-market (2022)
  4. Renvert, S., Persson, G. R., Pirih, F. Q., Camargo, P. M. Peri-implant health, peri-implant mucositis, and peri-implantitis: Case definitions and diagnostic considerations. J Clin Periodontol. 45 Suppl 20, S278-S285 (2018).
  5. Diaz, P., Gonzalo, E., Villagra, L. J. G., Miegimolle, B., Suarez, M. J. What is the prevalence of peri-implantitis? A systematic review and meta-analysis. BMC Oral Health. 22 (1), 449 (2022).
  6. Herrera, D., et al. Prevention and treatment of peri-implant diseases-the efp s3 level clinical practice guideline. J Clin Periodontol. 50 Suppl 26, 4-76 (2023).
  7. Graziani, F., Figuero, E., Herrera, D. Systematic review of quality of reporting, outcome measurements and methods to study efficacy of preventive and therapeutic approaches to peri-implant diseases. J Clin Periodontol. 39 Suppl 12, 224-244 (2012).
  8. Schwarz, F., Derks, J., Monje, A., Wang, H. L. Peri-implantitis. J Periodontol. 89 Suppl 1, S267-S290 (2018).
  9. Bryda, E. C. The mighty mouse: The impact of rodents on advances in biomedical research. Mo Med. 110 (3), 207-211 (2013).
  10. Mouse Genome Sequencing Consortium. Initial sequencing and comparative analysis of the mouse genome. Nature. 420 (6915), 520-562 (2002).
  11. Pirih, F. Q., et al. Ligature-induced peri-implantitis in mice. J Periodontal Res. 50 (4), 519-524 (2015).
  12. Rau, C. D., et al. High-density genotypes of inbred mouse strains: Improved power and precision of association mapping. G3 (Bethesda). 5 (10), 2021-2026 (2015).
  13. Schwarz, F., Sculean, A., Engebretson, S. P., Becker, J., Sager, M. Animal models for peri-implant mucositis and peri-implantitis. Periodontol 2000. 68 (1), 168-181 (2015).
  14. Varon-Shahar, E., et al. Peri-implant alveolar bone resorption in an innovative peri-implantitis murine model: Effect of implant surface and onset of infection. Clin Implant Dent Relat Res. 21 (4), 723-733 (2019).
  15. Pirih, F. Q., et al. A murine model of lipopolysaccharide-induced peri-implant mucositis and peri-implantitis. J Oral Implantol. 41 (5), e158-e164 (2015).
  16. Schwarz, F., et al. Influence of antiresorptive/antiangiogenic therapy on the extension of experimentally induced peri-implantitis lesions. Clin Oral Investig. 27 (6), 3009-3019 (2023).
  17. Wong, R. L., et al. Comparing the healing potential of late-stage periodontitis and peri-implantitis. J Oral Implantol. 43 (6), 437-445 (2017).
  18. Wong, R. L., et al. Early intervention of peri-implantitis and periodontitis using a mouse model. J Periodontol. 89 (6), 669-679 (2018).
  19. Hiyari, S., et al. Ligature-induced peri-implantitis and periodontitis in mice. J Clin Periodontol. 45 (1), 89-99 (2018).
  20. Nguyen Vo, T. N., et al. Ligature induced peri-implantitis: Tissue destruction and inflammatory progression in a murine model. Clin Oral Implants Res. 28 (2), 129-136 (2017).
  21. Yuan, S., et al. Comparative transcriptome analysis of gingival immune-mediated inflammation in peri-implantitis and periodontitis within the same host environment. J Inflamm Res. 15, 3119-3133 (2022).
  22. Berglundh, T., et al. Peri-implant diseases and conditions: Consensus report of workgroup 4 of the 2017 world workshop on the classification of periodontal and peri-implant diseases and conditions. J Periodontol. 89 Suppl 1, S313-S318 (2018).
  23. Hiyari, S., et al. Genomewide association study identifies cxcl family members as partial mediators of lps-induced periodontitis. J Bone Miner Res. 33 (8), 1450-1463 (2018).
  24. Kantarci, A., Hasturk, H., Van Dyke, T. E. Animal models for periodontal regeneration and peri-implant responses. Periodontol 2000. 68 (1), 66-82 (2015).
  25. Struillou, X., Boutigny, H., Soueidan, A., Layrolle, P. Experimental animal models in periodontology: A review. Open Dent J. 4, 37-47 (2010).
  26. Erata, E., et al. Cnksr2 loss in mice leads to increased neural activity and behavioral phenotypes of epilepsy-aphasia syndrome. J Neurosci. 41 (46), 9633-9649 (2021).
  27. Fakih, D., Guerrero-Moreno, A., Baudouin, C., Reaux-Le Goazigo, A., Parsadaniantz, S. M. Capsazepine decreases corneal pain syndrome in severe dry eye disease. J Neuroinflammation. 18 (1), 111 (2021).
  28. Douam, F., Ploss, A. The use of humanized mice for studies of viral pathogenesis and immunity. Curr Opin Virol. 29, 62-71 (2018).
  29. Lin, P., et al. Application of ligature-induced periodontitis in mice to explore the molecular mechanism of periodontal disease. Int J Mol Sci. 22 (16), (2021).
  30. Marchesan, J., et al. An experimental murine model to study periodontitis. Nat Protoc. 13 (10), 2247-2267 (2018).
  31. Silva, D. N. A., et al. Probiotic lactobacillus rhamnosus em1107 prevents hyperglycemia, alveolar bone loss, and inflammation in a rat model of diabetes and periodontitis. J Periodontol. 94 (3), 376-388 (2023).
  32. Kim, Y. G., et al. 6-shogaol, an active ingredient of ginger, inhibits osteoclastogenesis and alveolar bone resorption in ligature-induced periodontitis in mice. J Periodontol. 91 (6), 809-818 (2020).
  33. Fine, N., et al. Periodontal inflammation primes the systemic innate immune response. J Dent Res. 100 (3), 318-325 (2021).
  34. Yu, X., et al. Role of toll-like receptor 2 in inflammation and alveolar bone loss in experimental peri-implantitis versus periodontitis. J Periodontal Res. 53 (1), 98-106 (2018).
  35. Reinedahl, D., Chrcanovic, B., Albrektsson, T., Tengvall, P., Wennerberg, A. Ligature-induced experimental peri-implantitis-a systematic review. J Clin Med. 7 (12), (2018).

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Citazione di questo articolo
de Araújo Silva, D. N., Casarin, M., Monajemzadeh, S., Menezes da Silveira, T., Lubben, J., Bezerra, B., Pirih, F. Q. Experimental Model of Ligature-Induced Peri-Implantitis in Mice. J. Vis. Exp. (207), e66316, doi:10.3791/66316 (2024).

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