Summary

Изготовление Миогенный Engineered Создает тканей

Published: May 01, 2009
doi:

Summary

Здесь мы демонстрируем, изготовление коллагена основе, тканевые конструкции содержащего скелетных миобластов. Эти 3-D инженерных конструкций может быть использован для замены или ремонта тканей<em> В естественных условиях</em>. Для наших целей мы разработали их как атриовентрикулярного электрических каналом для ремонта полной блокадой сердца<sup> [1]</sup>.

Abstract

Несмотря на то, что электронные кардиостимуляторы являются жизненно медицинских приборов, их долгосрочную работу в педиатрической практике может быть проблематичным из-за ограничений, налагаемых небольшой размер ребенка и их неизбежного роста. Следовательно, существует реальная потребность в инновационных терапий, разработанный специально для педиатрических пациентов с нарушения сердечного ритма. Мы полагаем, что проводящие биологические альтернативные, состоящий из коллагена основе матрицы, содержащей autologously клеток, полученных могли лучше адаптироваться к росту, снизить потребность в периодических операций, а также значительно улучшить качество жизни этих пациентов. В настоящем исследовании мы опишем процедуру включения первичных культурах клеток скелетных миобластов в гидрогель матрицы моде хирургически-имплантируемых тканей конструкция, которая будет служить связующим звеном между электрическими верхней и нижней палат сердце. В конечном счете, мы ожидаем, используя этот тип инженерии тканей для восстановления атриовентрикулярного электрической проводимости у детей с полной блокадой сердца. В связи с этим, мы выделяем миобластов из скелетных мышц у новорожденных крыс Льюиса и пластины их на ламинин покрытием культуре ткани блюда с использованием модифицированной версии установленными протоколами<sup> [2, 3]</sup>. После одного-двух дней, культивируемые клетки собираются и смешанные с антибиотиками, 1-го типа коллагена, Матригель ™ и NaHCO<sub> 3</sub>. Результат представляет собой вязкую, единое решение, которое может быть приведен в форму практически любой формы и размера<sup> [1, 4, 5]</sup>. Для наших конструкций ткани, мы используем 1-го типа коллагена изолирован от кожи ягненка плода с использованием стандартных процедур<sup> [6]</sup>. Как только ткань укрепил при 37 ° С, культура СМИ осторожно добавляют к плите, пока построить погружен в воду. Инженерии тканей то разрешено дальнейшее конденсируются через обезвоживания еще на 2 дня, после чего он готов к<em> В пробирке</em> Оценку или хирургической имплантации.

Protocol

Часть 1: Соберите построить литейных форм Используйте лезвие сократить вдвое силиконовые трубки (VWR) и разрезать его на 3 см длиной штук. Место падения имплантата класса RTV силиконовый клей (Rhodia) на внутренней стороне каждого конца трубки. Быстро месте небольшой кусочек (1…

Discussion

Формы, в которых ткани строить будут брошены может быть сделано в любой форме и размеру, однако, там должно быть не менее двух точек крепления. В противном случае, матрицы и клетки образуют сферические структуры и клетки погибают. В настоящее время протокол, мы описываем использование п?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа проводится при поддержке грантов от Национального института здоровья (HL068915; HL088206), Новая премия исследователь из Фонда исследований Трэшер и вклад в сердечной фонд Проведение в Детской больнице Бостона.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Silicone tubing   VWR 60985-724  
Silicone adhesive   Rhodia Silicones MED ADH 4300 RTV  
Polyester Mesh   McMaster-Carr 93185T17  
Laminin   Sigma L2020  
Nutrient Mixture F-10 HAM   Sigma N6908  
Fetal Bovine Serum   Atlanta Biologicals S11550  
Penicillin/Streptomycin   Invitrogen 15140  
Fungizone   Invitrogen 15290-018  
Dispase-2   Roche 10295825001  
Collagenase 2   Worthington 46H8863  
Basic Fibroblast Growth Factor   Promega G5071  
150 mm tissue culture dishes   BD Falcon 353025  
0.05% (1X) Trypsin-EDTA   Gibco 25300  
1X Hanks Balanced Salt Solution   Invitrogen 14170-112  
7.5% NaHCO3   Gibco 25080-094  
70 μm cell strainer   BD Falcon 352350  
6-well plates   BD Falcon 353046  
50 mL Conical Vial   BD Falcon 352098  
15 mL Conical Vial   BD Falcon 352099  
0.2 μm filter   Nalgene 194-2520  

References

  1. Choi, Y. H. Cardiac conduction through engineered tissue. Am J Pathol. 169 (1), 72-85 (2006).
  2. Rando, T. A., Blau, H. M. Primary mouse myoblast purification, characterization, and transplantation for cell-mediated gene therapy. J Cell Biol. 125 (6), 1275-1287 (1994).
  3. Blau, H. M., Webster, C. Isolation and characterization of human muscle cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 78 (9), 5623-5627 (1981).
  4. Powell, C. Tissue-engineered human bioartificial muscles expressing a foreign recombinant protein for gene therapy. Hum Gene Ther. 10 (4), 565-577 (1999).
  5. Vandenburgh, H. Tissue-engineered skeletal muscle organoids for reversible gene therapy. Hum Gene Ther. 7 (17), 2195-2200 (1996).
  6. Gallop, P. M., Seifter, S. Preparation and Properties of Soluble Collagens. Methods in Enzymology. 6, 635-641 (1963).
check_url/kr/1137?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Pacak, C. A., Cowan, D. B. Fabrication of Myogenic Engineered Tissue Constructs. J. Vis. Exp. (27), e1137, doi:10.3791/1137 (2009).

View Video