Summary

Mapeo óptico de corazones de ratas Langendorff perfundidos

Published: August 11, 2009
doi:

Summary

En este artículo se describe una técnica de alta resolución temporal y espacial de la imagen ópticamente movimiento de acción potencial en la superficie de los corazones de rata Langendorff perfundidos con un tinte potenciométrica (di-8-ANEPPS).

Abstract

Mapeo óptico de la superficie cardíaca con sensibles al voltaje tintes fluorescentes se ha convertido en una herramienta importante para investigar la excitación eléctrica en modelos experimentales que van en escala de cultivos de células de órganos de todo el<sup> [1, 2]</sup>. El estado actual de la técnica de los sistemas de formación de imágenes ópticas, la generación y propagación de potenciales de acción en el ritmo cardíaco normal o en toda la iniciación y el mantenimiento de las arritmias se pueden visualizar casi al instante<sup> [1]</sup>. El último disponible en el mercado de sistemas pueden proporcionar información a las resoluciones espacio-temporal muy alta y se basa en la costumbre-construido el equipo inicialmente desarrollado para superar los obstáculos impuestos por los métodos electrofisiológicos más convencionales<sup> [1]</sup>. Los avances en alta resolución y alta velocidad complementary metal-oxide-semiconductor cámaras (CMOS) y la intensidad de brillo, diodos emisores de luz (LED), así como los tintes sensibles al voltaje, la óptica y filtros han empezado a hacer la adquisición de señales eléctricas prácticas para los biólogos celulares cardiovasculares que están más acostumbrados a trabajar con los microscopios. A pesar de la nueva generación de cámaras CMOS pueden adquirir 10.000 fotogramas por segundo en una matriz de píxeles 16.384, dependiendo del tipo de preparación de muestras, establecidas desde hace tiempo tecnologías de adquisición de fluorescencia, tales como arrays de fotodiodos, los sistemas de escaneo láser, y se enfría acusados-Coupled Device (CCD cámaras) todavía tienen algunas ventajas con respecto al rango dinámico, relación señal-ruido y la eficiencia cuántica<sup> [1, 3]</sup>. En el presente estudio, los corazones de ratas Lewis fueron perfundidos<em> Ex vivo</em> Con una perfusión de cristaloides (solución de Krebs-Henseleit) a 37 ° C en un aparato Langendorff modificada. Después de un período de estabilización de 20 minutos, los corazones fueron perfundidos de forma intermitente con 11 mmol / L 2,3-butanodiona monoxima para eliminar la contracción asociada al movimiento durante la adquisición de la imagen. De mapeo óptico, cargamos los corazones con la sonda potenciométrica de respuesta rápida di-8-ANEPPS<sup> [4]</sup> (5 mmol / L) y brevemente iluminada la preparación con 475 ± 15 nm de luz de excitación. Durante un típico período de 2 segundos de la iluminación,> 605 nm de luz emitida desde la preparación cardiaca fue fotografiada con una cámara CMOS de alta velocidad conectado a un macroscopio horizontal. Para esta demostración, los corazones estaban ritmo de 300 pulsaciones por minuto con un electrodo coaxial conectado a una unidad de estimulación eléctrica aislada. Simultánea los registros bipolares electrográficos fueron adquiridos y analizados junto con las señales de voltaje utilizando el software fácilmente disponible. De esta manera, los potenciales de acción en la superficie de los corazones de rata Langendorff perfundidos puede ser visualizado y registrado con las señales electroencefalográficas.

Protocol

Parte 1: Preparar las soluciones y el sistema de corazón aislado perfundido En la mañana del experimento, 4,0 L de Krebs-Henseleit solución se prepara como se describió previamente [5, 6]. 11 mmol / l 2,3-butanodiona monoxima (BDM) se disuelve en 1.0 L de Krebs-Henseleit solución decantada de la perfusión preparada en la etapa 1.1. Un adicional de 150 ml de Krebs-Henseleit se retira de la perfusión preparada en el paso 1.1 y se mezcla con 5 mol / l di-8-ANEPPS (diluido en…

Discussion

La extracción del corazón de ratas anestesiadas debe realizarse rápidamente para evitar la isquemia miocárdica. Si la perfusión de la isquemia o insuficiencia coronaria se produce, el corazón es probable que desarrollar arritmias y puede llegar a ser del infarto. Además, estos corazones se muestran insuficientes emisión de fluorescencia de las grabaciones de información y los análisis posteriores. Antes de cargar el medio de contraste, las células del miocardio deben ser adecuadamente preservados con solució…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo es apoyado por becas de investigación de los Institutos Nacionales de Salud (HL068915; HL088206) y las contribuciones al Fondo de conducción cardiaca en el Hospital de Niños de Boston.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
CardioCMOS-SM128f Equipment RedShirt Imaging, Decatur, GA 30030 USA    
CardioPlex Software Equipment RedShirt Imaging, Decatur, GA 30030 USA    
LUXEON LED Light Source 460-490 nm Equipment Lumileds Lighting, US, LLC, San Jose, CA 95131 USA LXHL-PB02  
ECG Amplifier Type 689 Hugo Sachs Elektronik Equipment Harvard Apparatus, Holliston, MA 01746 USA 730149  
Dichroic Mirror 505 nm Equipment Semrock, Rochester, NY 14624 USA FF505-SDi01-25×36  
Emission Filter 605 nm Long Pass Equipment SciMedia, Costa Mesa, CA 92626 USA    
THT Sideways Equipment SciMedia, Costa Mesa, CA 92626 USA 25 BM-8  
Mini Ball Joint Holder Equipment Harvard Apparatus, Holliston, MA 01746 USA BS4 73-0177  
Small Stimulation Electrode Set Equipment Harvard Apparatus, Holliston, MA 01746 USA BS4 73-0160  
BM-6 Benchtop Vibration Isolation Platform Equipment Technology Inc., Inglewood, CA 90301 25 BM-6  
Monopolar ECG Electrode Equipment Harvard Apparatus, Holliston, MA 01746 USA BS4 73-0200  
Roller Pump SCI 400 Equipment Watson-Marlow Bredel Inc., Wilmington, MA 01887 USA 401U/D1  
Roller Pump MasterFlex Easy Load II Equipment Cole Parmer, Vernon Hills, Illinois 60061 USA Model 77201-60  
Tubing Marprene #14 Equipment Watson-Marlow Bredel Inc., Wilmington, MA 01887 USA 902.0016.016  
MasterFlex Tubing Equipment PharMed, Westlake, OH 44145 USA 06485-25  
S48 Square Pulse Stimulator Equipment Grass Technologies, West Warwick, RI 02893 USA Model S48  
SIU5 RF TRANSFORMER ISOLATION UNIT Equipment Grass Technologies, West Warwick, RI 02893 USA Model SIU5  
5 Liter Water Jacketed Reservoir Equipment Radnoti Glass Technology Inc., Monrovia CA 91016 USA 120142-5  
2 Liter Water Jacketed Reservoir Equipment Radnoti Glass Technology Inc., Monrovia CA 91016 USA 120142-2  
0.5 Liter Water Jacketed Reservoir Equipment Radnoti Glass Technology Inc., Monrovia CA 91016 USA 120142-0  
0.25 Liter Water Jacketed Reservoir Equipment Radnoti Glass Technology Inc., Monrovia CA 91016 USA 120142-025  
10 ml Heating Coil Equipment Radnoti Glass Technology Inc., Monrovia CA 91016 USA 158822  
Compliance Bubble Trap Equipment Radnoti Glass Technology Inc., Monrovia CA 91016 USA 130149  
Luer Disconnect Cannula Equipment Harvard Apparatus, Holliston, MA 01746 USA 72-1444  
3-Way stopcock, FLL to MLT, No Port Covers Equipment Harvard Apparatus, Holliston, MA 01746 USA BS4 72-2630  
Thermocouple Thermometer Equipment Cole Parmer, Vernon Hills, Illinois 60061 USA WU-91100-40  
Ultra Fine IT-Series Flexible Microprobe Equipment PhysiTemp Instruments Inc., Clifton, NJ 07013 USA IT-24P  
Oscilloscope Tektronix TDS 1002 Equipment Tektronix Inc., Beaverton, OR 97005 USA TDS 1002B  
2,3-Butanedione monoxime Reagent Sigma, St. Louis, MO 63132 USA B0753  
Ketamine HCl Reagent Hospira Inc., Lake Forest, IL 60045 USA RL-0065  
Xylazine Reagent Lloyd Inc., Iowa 51601 USA LB15705A  
E-TOXA-CLEAN® Reagent Sigma, St. Louis, MO 63132 USA E9029  
Di-8-ANEPPS Reagent Invitrogen, Carlsbad, CA 92008 USA D-3167  

References

  1. Efimov, I. R., Nikolski, V. P., Salama, G. Optical imaging of the heart. Circ Res. 95 (1), 21-33 (2004).
  2. Hucker, W. J. Images in cardiovascular medicine. Optical mapping of the human atrioventricular junction. Circulation. 117 (11), 1474-147 (2008).
  3. Entcheva, E., Bien, H. Macroscopic optical mapping of excitation in cardiac cell networks with ultra-high spatiotemporal resolution. Prog Biophys Mol Biol. 92 (2), 232-257 (2006).
  4. Entcheva, E. Fluorescence imaging of electrical activity in cardiac cells using an all-solid-state system. IEEE Trans Biomed Eng. 51 (2), 333-341 (2004).
  5. Stamm, C. Rapid endotoxin-induced alterations in myocardial calcium handling: obligatory role of cardiac TNF-alpha. Anesthesiology. 95 (6), 1396-1405 (2001).
  6. Choi, Y. H. Cardiac conduction through engineered tissue. Am J Pathol. 169 (1), 72-85 (2006).
  7. Skrzypiec-Spring, M. Isolated heart perfusion according to Langendorff—still viable in the new millennium. J Pharmacol Toxicol Methods. 55 (2), 113-126 (2007).
  8. Fedorov, V. V. Application of blebbistatin as an excitation-contraction uncoupler for electrophysiologic study of rat and rabbit hearts. Heart Rhythm. 4 (5), 619-626 (2007).

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Cite This Article
Sill, B., Hammer, P. E., Cowan, D. B. Optical Mapping of Langendorff-perfused Rat Hearts. J. Vis. Exp. (30), e1138, doi:10.3791/1138 (2009).

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