Summary

Pseudofracture: Akut Periferik Doku Travma Modeli

Published: April 18, 2011
doi:

Summary

Pseudofracture, steril kas-iskelet travma tekrarlanabilir bir fare modeli, geç dönem post-travmatik immün yanıtların değerlendirilmesi için izin verir. Bu makale, usul yürütme, deneysel model kombinasyonları için potansiyel çoklu travma çalışma izni de dahil olmak üzere model adım adım açıklanmıştır.

Abstract

Travması sonrası çoklu organ yetmezliği ve travma hastalarında yüksek mortalite yol açabilir erken bir hiper-reaktif inflamatuvar yanıtı yoktur; bu yanıtı, sık sık enfeksiyon klinik komplikasyonlar ekler gecikmiş bir immünosupresyon eşlik eder ve ayrıca mortaliteyi artırabilir 1-9. Birçok çalışma, bağışıklık sisteminin reaktivite travması sonrası bu değişiklikleri değerlendirmek üzere başladı. 10-15
Immünolojik çalışmalar büyük ölçüde transgenik ve in vivo modelleme için kullanılabilir knockout farelerde çeşitli yoluyla desteklenmektedir; ayrıntılı araştırmalarda bu suşların yardım immünolojik yanıtlar yer alan moleküler yollar değerlendirmek için 16-21

Farelerde kırık tespit teknikleri, karmaşık ve kolayca tekrarlanabilir gibi deneysel fare travma modelleme meydan okuma, uzun vadeli bir araştırmadır. 22-30

Bu pseudofracture modeli, kolayca çoğaltılabilir travma modelinde, anestezi sürekli, uzun süreli kullanımı olmadan, hayvan ve uzun süreli sağkalım açısından hareket özgürlüğü sağlayan, immünolojik bir ekstremite kırığı ortamında taklit ederek, bu zorlukların üstesinden. Amaç, uzun kemik kırığı özellikleri yeniden; yaralandı kas ve yumuşak doku yerli kemiği kırmadan zarar görmüş kemik ve kemik iliği maruz kalmaktadır.

Ikili bir kas arka ayaklarında ezilme yaralanmaları, kemik çözüm bu yaralı kas içine enjeksiyon yoluyla takip pseudofracture modeli iki bölümden oluşmaktadır. Kemik çözüm, bir yaş ve kilo eşleştirilmiş singeneik donör her iki arka ayaklarında uzun kemiklerin hasat hazırlanmıştır. Bu kemikler daha sonra ezilmiş ve fosfat yeniden süspanse kemik çözüm oluşturmak için tamponlu salin.

İkili femur kırığı ekstremite travma, yaygın olarak kullanılan ve köklü bir model ve pseudofracture modelinin geliştirilmesi sırasında karşılaştırmalı bir model oldu. Mevcut kırık modellerin çeşitliliği arasında, steril henüz orantılı olarak ciddi bir çevresel doku travması modeli istediği gibi, pseudofracture karşılaştırma olarak yumuşak doku yaralanması ile kırık kapalı bir yöntem kullanmayı seçti. 31

Hemorajik şok, ağır travma ayarı sık rastlanan bir bulgudur ve küresel hipoperfüzyon bir travma modelinde çok ilgili bir öğe ekler 32-36 pseudofracture modeli yüksek şiddeti bir çoklu travma modeli için bir hemorajik şok modeli ile kolayca kombine edilebilir . 37

Protocol

1. Çalgı ve Cerrahi Alan Hazırlık: Tüm deneysel prosedürleri aseptik teknikler kullanılarak yapılmaktadır. Başlamadan önce, deney alanı iyice temizlenmeli ve sterilize edilmelidir. Benchtop hava kuru ve daha sonra% 70'lik alkol ile silinmelidir izin dezenfekte edilmelidir. Deneysel çalışma alanı soyunma cerrahi mavi ped ve steril alan yerleştirin. Kullanmadan önce tüm malzeme ve aletler otoklavda sterilize edilir. Şırınga ve iğneler steri…

Discussion

Pseudofracture, steril kas-iskelet travma tekrarlanabilir bir fare modeli, post-travmatik bağışıklık yanıtlarının değerlendirilmesi için izin verir. Pseudofracture modeli immünolojik özellikleri uzun bir kemik kırığı rekreasyon üzerinden bir ekstremite kırığı ortamında taklit: 38,39 bifazik bir bağışıklık yanıtı şu yaralandı kas ve yumuşak doku yerli kemiği kırmadan zarar görmüş kemik ve kemik iliği maruz görülebileceği. 48hrs etrafında bir çukur olarak tasvir gecikm…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Hemorajik Şok GM053789 Finansman Kaynağı / Sayı Moleküler Biyoloji

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Surgical blue pad   Fisher Scientific 50-7105  
Sterile Field dressings   Fisher Scientific NC9517505  
Circulating heating pad 18″x26″   Harvard py872-5272  
Hot bead instrument sterilizer   VWR 11156-002  
Stainless steel tray 8″ x 11″   VWR 62687-049  
Plexiglass boards (10x15x0.5cm)   University of Pittsburgh Machine shop    
Tape rolls 1″   Corporate Express MMM26001  
50cc conical tube   can be purchased through any global vendor    
Straight side wide mouth jars (used as cap for nose cone)   VWR 159000-058  
Oster A5 clippers w. size 40 blade   VWR 10749-020  
Surgical scissors (straight – 12cm)   Fine Science Tools 14068-12  
Hemostats curved -18cm   Harvard 81331718  
Forceps (0.8mm-tip, curved-10cm)   Fine Science Tools 11050-10  
Gauze 4″x4″   can be purchased through any global vendor    
1.5cc microfuge tube   can be purchased through any global vendor    
Ice bucket   can be purchased through any global vendor    
Mortar and Pestle   Fisher 12-961AA  
1cc syringe w/ 25G needle   Fisher Scientific 14-826-88  
20G needle   can be purchased through any global vendor    
1mL pipetteman   can be purchased through any global vendor    
1mL pipette tips   can be purchased through any global vendor    
Falcon polystyrene 8ml tubes   VWR 60819-331  
Sterilization pouch 3″x8″   VWR 24008  
Sterilization pouch 5″x10″   VWR 24010  
MacConkey II Agar plate   BD Biosciences 221172  
Ethyl Alcohol – 200 proof   Pharmaco-AAPER   [70%]
Pentobarbital Sodium (Nembutol Sodium Solution)   Ovation   70mg/kg
Aerrane (Isoflurane)   Baxter   99.9%
Triadine Povidone Iodine (Betadine)   Triad disposables    
Phosphate Buffered Saline (PBS)        
Buprenorphine HCl   Bedford Laboratories   0.1mg/kg

References

  1. DeCamp, M. M., Demling, R. H. Posttraumatic multisystem organ failure. JAMA. 260, 530-534 (1988).
  2. Deitch, E. A. Multiple organ failure. Pathophysiology and potential future therapy. Ann Surg. 216, 117-134 (1992).
  3. Carrico, C. J., Meakins, J. L., Marshall, J. C. Multiple organ failure syndrome. Arch Surg. 121, 196-208 (1986).
  4. Hauser, C. J., Joshi, P., Jones, Q. Suppression of natural killer cell activity in patients with fracture/soft tissue injury. Arch Surg. 132, 1326-1330 (1997).
  5. Faist, E., Baue, A. E., Dittmer, H. Multiple organ failure in polytrauma patients. J Trauma. 23, 775-787 (1983).
  6. Baker, C. C., Oppenheimer, L., Stephens, B. Epidemiology of trauma deaths. Am J Surg. 140, 144-150 (1980).
  7. Faist, E., Kupper, T. S., Bakeer, C. L. Depression of cellular immunity after major injury its association with posttraumatic complications and its reversal with immunomodulation. Arch Surg. 121, 1000-1005 (1986).
  8. Lenz, A., Franklin, G. A., Cheadle, W. G. Systemic inflammation after trauma. Injury. 38, 1336-1345 (2007).
  9. Flohe, S., Flohe, S. B., Schade, F. G. Immune response of severely injured patients–influence of surgical intervention and therapeutic impact. Lang Arch Surg. 392, 639-648 (2007).
  10. Ayala, A., Wang, P., Ba, Z. F. Differential alterations in plasma IL-6 and TNF levels after trauma and hemorrhage. Am J Physiol. 260, R167-R171 (1991).
  11. Kalicke, T., Schlegel, U., Printzen, G. Influence of a standardized closed soft tissue trauma on resistance to local infection. An experimental study in rats. J Ortho Res. 21, 373-378 (2003).
  12. Kobbe, P., Vodovotz, Y., Kaczorowski, D. J. The role of fracture associated soft tissue injury in the induction of sytemic inflammation and remote organ dysfunction after bilateral femur fracture. J Ortho Trauma. 22, 385-390 (2008).
  13. Kobbe, P., Vodovotz, Y., Kaczorwoski, D. J. Pattern of cytokine release and evolution of remote organ dysfunction after bilateral femur fracture. Shock. 30, 43-47 (2008).
  14. Flohe, S. B., Flohe, S., Schade, F. U. Deterioration of the immune system after trauma: signals and cellular mechanisms. Inn. Immun. 14, 333-344 (2008).
  15. Maier, B., LeFering, R., Lhenert, M. Early versus late onset of multiple organ failure is associated with differing patterns of plasma cytokine biomarker expression and outcome after severe trauma. Shock. 28, 668-674 (2007).
  16. Mestas, J., Hughes, C. W. Of mice not men: differences between mouse and human immunology. J. Immunol. 172, 2731-2738 (2004).
  17. Hoth, J. J., Wells, J. D., Brownlee, N. A. Toll like receptor 4-dependent responses to lung injury in a murine model of pulmonary contusion. Shock. 31, 376-381 (2009).
  18. Matsutani, T., Samy, A. n. a. n. t. h. a., Rue, T. S., W, L. Transgenic prolactin-/- mice: effect of trauma-hemorrhage on splenocyte functions. Am J Physiol Cell Physiol. 288, 1109-1116 (2005).
  19. Matsutani, T., Samy, A. n. a. n. t. h. a., Kang, T. S., S-C, . Mouse genetic background influences severity of immune responses following trauma-hemorrhage. Cytokine. 30, 168-117 (2005).
  20. Tsukamoto, T., Pape, H. C. Animal models for trauma research: What are the options. Shock. 31, 3-10 (2008).
  21. DeMaria, E. J., Pellicane, J. V., Lee, R. B. Hemorrhagic shock in endotoxin resistant mice : Improved survival unrelated to deficient production of tumor necrosis factor. J Trauma. 35, 720-724 (1993).
  22. Jamsa, T., Jalovaara, P., Peng, Z. Comparison of three-point bending test and peripheral quantitative computed tomography analysis in the evaluation of the strength of mouse femur. Bone. 23, 155-161 (1998).
  23. Bounarens, F., Einhorn, T. A. Production of a standard closed fracture in laboratory animal bone. J Ortho Res. 2, 97-101 (1984).
  24. Holstein, J. H., Menger, M. D., Culemann, U. Development of a locking femur nail for mice. J Biomech. 40, 215-219 (2007).
  25. Holstein, J. H., Garcia, P., Histing, T. Advances in the establishment of defined mouse models for the study of fracture healing and bone regeneration. J Orthop Trauma. 23, S31-S38 (2009).
  26. Histing, T., Garcia, P., Matthys, R. An internal locking plate to study intramembranous bone healing in a mouse femur fracture model. J Orthop Research. 28, 397-402 .
  27. Manigrasso, M. B., O’Connor, J. P. Characterization of a closed femur fracture model in mice. J Ortho Trauma. 18, 687-695 (2004).
  28. Mark, H., Bergholm, J., Nilsson, A. An external fixation method and device to study fracture healing in rats. Acta Orthop Scand. 74, 476-487 (2003).
  29. Bhandari, M., Shanghnessy, S. A minimally invasive percutaneous technique of intramedullary nail insertion in an animal model of fracture healing. Arch Orthop Trauma Surg. 121, 591-593 (2001).
  30. Sonanis, S. V., Lampard, A. L., Kamat, N. A simple technique to remove a bent femoral intramedullary nail and broken interlocking screw. J Trauma. 63, 435-438 (2007).
  31. Kobbe, P., Kaczorwoski, D. J., Vodovotz, Y. Local exposure of bone components to injured soft tissue induces Toll-like receptor 4-dependent systemic inflammation with acute lung injury. Shock. 30, 686-691 (2008).
  32. Bumann, M., Henke, T., Gerngross, H. Influence of haemorrhagic shock on fracture healing. Lang Arch Surg. 388, 331-338 (2003).
  33. Santry, H. P., Alam, H. B. Fluid resuscitation: past, present, and the future. Shock. 33, 229-241 (2010).
  34. Hierholzer, C., Billiar, T. R. Molecular mechanisms in the early phase of hemorrhagic shock. Lang Arch Surg. 386, 302-308 (2001).
  35. Chaudry, I., Ayala, A., Ertel, W. Hemorrhage and resuscitation: immunological aspects. Am J Physiol. 259, 63-678 (1990).
  36. Kawasaki, T., Hubbard, W. J., Choudhry, M. A. Trauma-hemorrhage induces depressed splenic dendritic cell functions in mice. J Immunol. 177, 4514-4520 (2006).
  37. Kohut, L., Darwiche, S. S., Frank, A. M., Brumfield, J. M., Billiar, T. R. Fixed volume or Fixed Pressure: A Murine Model of Hemorrhgaic Shock. J Vis Exp. , (2010).
  38. Menzel, C. L., Pfeifer, R., Darwiche, S. S. Models of lower extremity damage in mice: time course of organ damage and immune response. J Surg Res. 166, e149-e156 (2011).
  39. Pfeifer, R., Kobbe, P., Darwiche, S. S. Role of hemorrhage in the induction of systemic inflammation and remote organ damage: Analysis of combined pseudo-fracture and hemorrhagic shock. J Orthop Res. 29, 270-274 (2011).
check_url/kr/2074?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Darwiche, S. S., Kobbe, P., Pfeifer, R., Kohut, L., Pape, H., Billiar, T. Pseudofracture: An Acute Peripheral Tissue Trauma Model. J. Vis. Exp. (50), e2074, doi:10.3791/2074 (2011).

View Video