Summary

Подготовка нейронных культур от Midgastrula этапе эмбрионы дрозофилы

Published: July 04, 2007
doi:

Summary

Это видео демонстрирует подготовки первичных нейронов культур от midgastrula стадии эмбриона дрозофилы. Просмотров живых культур показывают клетки через 1 час после покрытия и дифференцированных нейронов после 2 дней роста бикарбоната основе определенной среде. Нейроны являются электрически возбудимыми и формы синаптических связей.

Abstract

Это видео показывает, порядок внесения первичных нейронов культур от midgastrula стадии эмбриона дрозофилы. Методы сбора эмбрионов и их dechorionation использования отбеливателя демонстрируются. Использование стеклянной пипетки придает трубке всасывания рот, мы проиллюстрируем удаление всех клетках одного из эмбрионов. Метод диспергирования клетки от каждого embyro в небольшой (5 л) каплю среды на немелованной стекло покровное демонстрируется. Вид через микроскоп на 1 час после покрытия иллюстрирует предпочтительный плотность клеток. Большинство клеток, которые выживают при выращивании в определенной среде являются нейробластов, которые делят один или несколько раз в культуре, прежде чем предоставлять neuritic процессов 12-24 часов. Вид через микроскоп иллюстрирует уровень аксонов и ветвление ожидается в здоровую культуру в 2-х дней в лабораторных условиях. Культур выращивают в простой бикарбонат основан определенной среде, в 5% CO 2 инкубаторе при 22-24 ° С. Neuritic процессов продолжать разрабатывать в течение первой недели в культуре и, когда они делают контакт с нейритов из соседних клетках они часто образуют функциональные синаптических связей. Нейроны в этих культурах выразить напряжения закрытого натрия, кальция и калия каналов и являются электрически возбудимыми. Эта культура система полезна для изучения молекулярно-генетических и экологических факторов, которые регулируют дифференциацию нейронов, возбудимость, и формирование синапса / функцию.

Protocol

И. дрозофилы эмбрионов коллекции Подготовка пластин сбора яиц Отварите 200 мл дН 2 O с 8 г агар Остудить до 50 ° C Добавить 2 мл этанола и 2 мл уксусной кислоты Налейте в 35 мм пластиковые чашки Петри, топы Охладить и хранить в воздухе трудный контейнер при т…

Discussion

В культурах Drosophila приготовленные из эмбрионов midgastrula этапе нейроны возникают из нейробластов предшественников, многие из которых делят до дифференциации в пробирке. Эта система обеспечивает, таким образом уникальные возможности для исследования генетических и экологических факторов, важных в ?…

Acknowledgements

Эта работа была поддержана NIH грант NS27501 к DKOD. Дополнительная поддержка для этой работы из HHMI профессор Грант DKOD.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Drosophila melanogaster Animal     Fruit flies
Transferrin Reagent Sigma T-1147 100x Stock: 10 mg/ml in water. Filter through 0.2 um syringe filter (cellulose acetate). Store in 220 ul aliquots (for 20 ml DMEM) at -20C.
Insulin   Sigma I-6634 200x Stock: 10 mg/ml in 0.05N HCl. Filter through 0.2 um syringe filter (cellulose acetate). Store in 120 ul aliquots (for 20 ml DMEM) at -20C.
Putrescine   Sigma P-5780 100x Stock: 10 mM in ddH2O. Filter through 0.2 um syringe filter (cellulose acetate). Store in 220 ul aliquots (for 20 ml DMEM) at -20 C
Selenium   Sigma S-5261 100x Stock: 3 uM in ddH2O. Put 0.0051 g Selenium in a 15 ml tube labeled A (3 mM stock). Add 10 ml of sterile water. Take 10 ul from Tube A to Tube B with 10 ml ddH2O (3 uM stock). Filter Tube B through 0.2 um syringe filter (cellulose acetate). Store in 220 ul aliquots (for 20 ml DMEM) at -20C
Progesterone   Sigma P-6149 100x Stock: 2 ug/ml 1. Add 1ml of 100% EtOH to 0.001 g Progesterone bottle 2. Add 49 ml ddH2O 3. Transfer 1 ml of this to second tube with 9 ml ddH2O 4. Filter through 0.2 um syringe filter (cellulose acetate) 5. Store in 220 ul aliquots (for 20 ml DMEM) at -20C
DDM1 Medium     To 10 mls of DMEM add from stocks: 100 ul Transferrin, 100 ul Putrescine, 100 ul Selenium, 100 ul Progesterone, 50 ul Insulin
Petri dishes        
Cover-slips   Bellco Biological Glassware 1943-00012 Low lead glass, autoclaved.
Paper filter   Whatman #1  
10cc syringe Tool      

The cultures made in this media must be maintained in a 5% CO2 incubator at about 22-24°C. We use a standard mammalian tissue culture incubator placed in a cold room and heated to 23°C. Always used autoclaved filtered water and make in containers that are reserved for media and supplements only. Never put a pH meter or stir bar used for other purposes in media.

References

  1. Rohrbough, J., O’Dowd, D. K., Baines, R. A., Broadie, K. Cellular bases of behavioral plasticity: Establishing and modifying synaptic circuits in the Drosophila Genetic System. J. Neurobiol. 54, 254-271 (2003).
  2. O’Dowd, D. K. Voltage-gated currents and firing properties of embryonic Drosophila neurons grown in a chemically defined medium. J. Neurobiol. 27, 113-126 (1995).
  3. Lee, D., O’Dowd, D. K. Fast excitatory synaptic transmission mediated by nAChR in cultured Drosophila neurons. J. Neurosci. 19, 5311-5321 (1999).
  4. Lee, D., O’Dowd, D. K. Cyclic-AMP-dependent plasticity at excitatory cholinergic synapses in Drosophila neurons: Alterations in the memory mutant dunce. J. Neurosci. 20, 2104-2111 (2000).
  5. Hodges, D. D., Lee, D., Boswell, K., Preston, C. F., Hall, L. M., O’Dowd, D. K. tipE regulates sodium-dependent repetitive firing in Drosophila neurons. Mol. Cell Neurosci. 19, 402-416 (2002).
  6. Lee, D., Su, H., Dowd, O., K, D. GABA receptors containing Rdl subunits mediate fast inhibitory synaptic transmission in Drosophila neurons. J. Neurosci. 23, 4625-4634 (2003).
check_url/kr/226?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sicaeros, B., O’Dowd, D. K. Preparation of Neuronal Cultures from Midgastrula Stage Drosophila Embryos. J. Vis. Exp. (5), e226, doi:10.3791/226 (2007).

View Video