Summary

Всего горы<em> На месте</em> Гибридизация E8.5 в E11.5 эмбрионов мыши

Published: October 10, 2011
doi:

Summary

Вся эта гора<em> На месте</em> Гибридизации протокола обсуждаются важнейшие шаги, которые обеспечивают воспроизводимое высокое качество результатов для исследования экспрессии генов в E8.5-E11.5 дневных эмбрионов мыши.

Abstract

Всего крепления в гибридизация является очень информативным подходом для определения моделей экспрессии генов в эмбрионах. На месте процедуры гибридизации длительным и технически сложных с несколькими важными шагами, которые в совокупности способствуют повышению качества конечного результата. Этот протокол подробно описывает несколько ключевых контроля качества шаги для оптимизации маркировки зонда и производительности. Целом, наш протокол содержит подробное описание критических шагов, необходимых для воспроизводимо получать высококачественные результаты. Во-первых, мы описываем поколения digoxygenin (DIG) меченых зондов РНК в пробирке с помощью транскрипции ДНК шаблонов генерируется с помощью ПЦР. Мы описываем три критические анализы контроля качества, чтобы определить количество, целостность и удельной активности DIG-меченых зондов. Эти шаги являются важными для создания зонда достаточной чувствительностью для обнаружения эндогенных мРНК в целом эмбриона мыши.Кроме того, мы опишем методы фиксации и хранения E8.5-E11.5 дневных эмбрионов мыши в гибридизация. Затем мы описываем подробные описания методов для ограниченного протеиназы К переваривания регидратации эмбрионов следуют подробности условий гибридизации, пост-гибридизации моет и РНКазы обработку для удаления неспецифических зонда гибридизации. AP-конъюгированных антител используется для визуализации меченых зондов и выявить паттерн экспрессии эндогенного стенограммы. Представитель результаты показаны от успешных экспериментов и типичные оптимальным экспериментов.

Protocol

1. Riboprobe поколения в пробирке с помощью транскрипции Подготовка продуктов ПЦР для шаблонов в пробирке транскрипции. Проектирование ПЦР-праймеров с фагом транскрипции промотора последовательности в их концах 5 '. Примечание: последовательность промот…

Discussion

Методы, описанные в этом протоколе были адаптированы из ряда различных источников и оптимизированы для целого крепления E8.5-E11.5 дневных эмбрионов мыши. Методы целом крепления на месте гибридизации эмбрионов позвоночных впервые появился в начале 1990-х 2,5-12. Этот протокол был ад…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана грантами NIH R21MH082360 (BGC) и R01HD056315 (NRM), а также в Университете Джорджии.

Materials

Name Type Company Catalogue number Comments
Digoxigenin-11-uridine-5′-triphosphate Reagent Roche 11209256910  
Ribonucleoside Triphosphate Set Reagent Roche 11277057001  
Quick Spin Columns for radiolabeled RNA purification Supply Roche 11274015001  
T7 RNA polymerase Reagent Roche 10881767001  
SP6 RNA polymerase Reagent Roche 10810274001  
T3 RNA polymerase Reagent Roche 11031163001  
CTP, [α-32P]- 800Ci/mmol 10mCi/ml , 250 μCi Reagent Perkin Elmer BLU008X250UC  
DNase I recombinant, RNase-free Reagent Roche 4716728001  
Urea,Colorless-to-white Crystals or Crystalline Powder Reagent Fisher BP169-500  
Gel loading buffer Reagent Ambion AM8547  
Hybond-N+, Amersham Supply GE Healthcare RPN82B  
UV Stratalinker 2400 Equipment Stratagene    
Diethyl pyrocarbonate Reagent Sigma D5758-100ML  
Heparin sodium Reagent Acros 41121-0010  
hydrogen peroxide 30% in water Reagent Fisher scientific BP2633-500  
Gluteraldehyde, 8% EM grade Reagent Polysciences 0/710 Use with caution according to manufacture’s instructions
Blocking reagent Reagent Roche 11096176001 Make into 5% stock and store at -20° C
Proteinase K Reagent Roche 3115852001  
Rnase A Reagent Roche 10109142001 Make as 10 mg/ml stock and store at -20° C.
Rnase T1 Reagent Roche 10109193001  
Ultrapure Formamide Reagent Invitrogen 15515-026  
Levamisole hydrochloride Reagent ICN Biomedicals. Inc 155228  
Ribonucleic acid from torula yeast,Type VI Reagent Sigma R6625 phenol/chloroform extracted several times and precipitated, resuspended in DEPC-dH2O and stored at -20° C
Anti-Digoxigenin-AP Fab fragments Reagent Roche 11093274910  
BM Purple AP Substrate, precipitating. Ready-to-use solution. Reagent Roche 11 442 074 001  
4mL, Clear, Closed Top, Storage Vial Convenience Kit Supply National scientific B7800-2  
Shake N Bake hybridization oven Equipment Boekel Scientific 136400  
Biopsy Sure-Tek Supply Fisherbrand 15-200-402C  
Paraplast Plus tissue embedding medium Reagent Fisherbrand 23-021-400  
Peel-A-Way disposable plastic tissue embedding molds Supply Polysciences 18646A  
Colorfrost Plus Microscope slides Supply Fisherbrand 12-550-17  
Nuclear Fast Red Reagent Sigma N8002  
Cytoseal 60 Reagent Richard-Allan Scientific 8310-16  

References

  1. Divjak, M., Glare, E. M., Walters, E. H. Improvement of non-radioactive in situ hybridization in human airway tissues: use of PCR-generated templates for synthesis of probes and an antibody sandwich technique for detection of hybridization. J. Histochem. Cytochem. 50, 541-548 (2002).
  2. Wilkinson, D. G., Nieto, M. A. Detection of messenger RNA by in situ hybridization to tissue sections and whole mounts. Methods Enzymol. 225, 361-373 (1993).
  3. Logel, J., Dill, D., Leonard, S. Synthesis of cRNA probes from PCR-generated DNA. Biotechniques. 13, 604-610 (1992).
  4. Maddox, D. M., Condie, B. G. Dynamic expression of a glutamate decarboxylase gene in multiple non-neural tissues during mouse development. BMC Dev Biol. 1, 1-1 (2001).
  5. Conlon, R. A., Rossant, J. Exogenous retinoic acid rapidly induces anterior ectopic expression of murine Hox-2 genes in vivo. Development. 116, 357-368 (1992).
  6. Krauss, S. Zebrafish pax[zf-a]: a paired box-containing gene expressed in the neural tube. EMBO J. 10, 3609-3619 (1991).
  7. Hemmati-Brivanlou, A. Localization of specific mRNAs in Xenopus embryos by whole-mount in situ hybridization. Development. 110, 325-330 (1990).
  8. Harland, R. M. In situ hybridization: an improved whole-mount method for Xenopus embryos. Methods Cell Biol. 36, 685-695 (1991).
  9. Herrmann, B. G. Expression pattern of the Brachyury gene in whole-mount TWis/TWis mutant embryos. Development. 113, 913-917 (1991).
  10. Conlon, R. A., Herrmann, B. G. Detection of messenger RNA by in situ hybridization to postimplantation embryo whole mounts. Methods Enzymol. 225, 373-383 (1993).
  11. Parr, B. A., Shea, M. J., Vassileva, G., McMahon, A. P. Mouse Wnt genes exhibit discrete domains of expression in the early embryonic CNS and limb buds. Development. 119, 247-261 (1993).
  12. Rosen, B., Beddington, R. S. Whole-mount in situ hybridization in the mouse embryo: gene expression in three dimensions. Trends Genet. 9, 162-167 (1993).
  13. Quiring, R. Large-scale expression screening by automated whole-mount in situ hybridization. Mech. Dev. 121, 971-976 (2004).
  14. Thut, C. J., Rountree, R. B., Hwa, M., Kingsley, D. M. A large-scale in situ screen provides molecular evidence for the induction of eye anterior segment structures by the developing lens. Dev. Biol. 231, 63-76 (2001).
  15. Neidhardt, L. Large-scale screen for genes controlling mammalian embryogenesis, using high-throughput gene expression analysis in mouse embryos. Mech. Dev. 98, 77-94 (2000).
  16. Gordon, J., Bennett, A. R., Blackburn, C. C., Manley, N. R. Gcm2 and Foxn1 mark early parathyroid- and thymus-specific domains in the developing third pharyngeal. 103, 141-143 (2001).

Play Video

Cite This Article
Wei, Q., Manley, N. R., Condie, B. G. Whole Mount in Situ Hybridization of E8.5 to E11.5 Mouse Embryos. J. Vis. Exp. (56), e2797, doi:10.3791/2797 (2011).

View Video