Summary

הערכת התפתחות בלוטת החלב פונקציה ועל מודלים עכבר

Published: July 21, 2011
doi:

Summary

שיטה זו מתארת ​​כיצד לנתח ולהעריך התפתחות תפקוד בלוטת החלב ומן העכברים. בלוטות החלב נכרת מוערכים לתואר הפיתוח באמצעות הר שלם תוך פליטה החלב מוערך באמצעות אוקסיטוצין מבוססי assay myoepithelial התכווצות התא.

Abstract

בלוטת החלב האנושי מורכב האונות 15-20 כי חלב מפרישים לתוך הפתח הסתעפות מערכת צינור לעבר הפטמה. אונות אלו הן עצמם מורכבת ממספר יחידות מסוף אונתית צינור עשוי alveoli הפרשה ותעלות מתכנסים 1. בעכברים, ארכיטקטורה דומה שנצפה הריון שבו צינוריות ו alveoli משובצים בתוך stroma רקמת החיבור. אפיתל עכבר בלוטת החלב הוא עץ כמו מערכת של צינורות מורכב משתי שכבות של תאים, השכבה הפנימית של תאים luminal מוקף שכבה חיצונית של תאים myoepithelial כונה על ידי לגבולות קרום המרתף 2. בזמן הלידה, רק עץ ductal rudimental קיים, המורכב סניפים הדביק 15-20 העיקרי. סניף התארכות ולהתחיל הגברה בתחילת גיל ההתבגרות, סביב 4 שבועות, תחת השפעה של הורמונים 3,4,5. ב 10 שבועות, רוב stroma הוא פלש ידי מערכת מורכבת של צינורות כי יעברו מחזורים של הסתעפות ונסיגה כל מחזור הייחום עד ההריון 2. עם תחילת ההריון, השלב השני של הפיתוח מתחיל, עם התפשטות והבחנה של אפיתל ליצירת ענבים בצורת הפרשה חלב מבנים קרא alveoli 6,7. לאחר הלידה ובמהלך ההנקה, החלב מיוצר על ידי תאים הפרשה luminal ו מאוחסן בתוך לומן של alveoli. לשחרר אוקסיטוצין, מגורה על ידי רפלקס עצבי המושרה על ידי היניקה של הגורים, גורמת להתכווצויות מסונכרן של תאים myoepithelial סביב alveoli לאורך צינורות, המאפשר חלב להיות מועבר דרך הצינורות אל הפטמה שבה הוא הופך להיות זמין עד 8 ​​גורים. התפתחות בלוטת החלב בידול, ותפקוד הם דורשים מתוזמר היטב, לא רק אינטראקציות בין stroma את האפיתל, אך גם בין תאים myoepithelial ו luminal בתוך האפיתל 9,10,11. ובכך, מוטציות בגנים רבים מעורבים אינטראקציות אלה עלולים לפגוע גם התארכות ductal במהלך היווצרות ההתבגרות או alveoli במהלך ההריון התמיינות מוקדם במהלך ההריון המאוחרות ההפעלה הפרשה המוביל הנקה 12,13. במאמר זה, אנו מתארים כיצד לנתח בלוטות החלב עכבר ולהעריך את התפתחותם באמצעות mounts כולו. אנחנו גם מדגימים כיצד להעריך התכווצויות myoepithelial ואת פליטת חלב באמצעות לשעבר vivo אוקסיטוצין מבוססי assay תפקודית. ההשפעה של מוטציה בגן על התפתחות בלוטת החלב לתפקד ולכן יכול להיקבע באתרו על ידי ביצוע שתי הטכניקות הללו בעכברים מוטציה מלאה ו wild-type.

Protocol

1. בלוטת החלב לנתיחה להרדים את העכבר באמצעות שאיפת CO 2. הימנע נקע בצוואר הרחם אם אפשר שכן הוא עלול לפגוע בכלי הדם הגדולים בצוואר לגרום להצטברות של דם סביב בלוטות החלב, עיבוד לנתיחה קשה יותר. עם זאת, אם קריטריונים אח…

Discussion

התפתחות בלוטת החלב הם פונקציה מתוזמר היטב. עכברים Mutant עשוי הנמל מוטציות גנטיות שיכולות לפגוע בהתפתחות בלוטת החלב לתפקד הדגשת הצורך להעריך ארכיטקטורה בלוטת 13,12. הרכבה שלם ניתן לבצע כפי שמתואר במאמר זה בכל שלבי התפתחות בלוטת החלב. בדרך כלל, פיתוח של האפיתל נבחנת ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

מחקרים אלו מומנו על ידי CIHR ומענקים CBCRA ל DWL. IP מומן על ידי מלגות CIHR מ-STP, FRSQ ו CIHR. MKGS מומן על ידי מלגות OGS CIHR ו-STP. המחברים מודים קווין בר עזרתו עם גידול העכבר.

Materials

Reagent Company Catalogue number
Carmine Sigma-Aldrich C1022
Aluminum potassium sulfate Sigma-Aldrich A6435
Thymol Sigma-Aldrich T0501
Methyl salicylate Sigma-Aldrich M6752
Oxytocin Sigma-Aldrich O3251

References

  1. Geddes, D. T. Inside the lactating breast: the latest anatomy research. J Midwifery Womens Health. 52, 556-556 (2007).
  2. Sternlicht, M. D. Key stages in mammary gland development: the cues that regulate ductal branching morphogenesis. Breast Cancer Res. 8, 201-201 (2006).
  3. Silberstein, G. B., Flanders, K. C., Roberts, A. B., Daniel, C. W. Regulation of mammary morphogenesis: evidence for extracellular matrix-mediated inhibition of ductal budding by transforming growth factor-beta 1. Dev Biol. 152, 354-354 (1992).
  4. Daniel, C. W., Robinson, S., Silberstein, G. B. The role of TGF-beta in patterning and growth of the mammary ductal tree. J Mammary Gland Biol Neoplasia. 1, 331-331 (1996).
  5. Neville, M. C., Daniel, C. W. . The Mammary gland : development, regulation, and function. , (1987).
  6. Oakes, S. R., Hilton, H. N., Ormandy, C. J. The alveolar switch: coordinating the proliferative cues and cell fate decisions that drive the formation of lobuloalveoli from ductal epithelium. Breast Cancer Res. 8, 207-207 (2006).
  7. Anderson, S. M., Rudolph, M. C., McManaman, J. L., Neville, M. C. Key stages in mammary gland development. Secretory activation in the mammary gland: it’s not just about milk protein synthesis!. Breast Cancer Res. 9, 204-204 (2007).
  8. Reversi, A., Cassoni, P., Chini, B. Oxytocin receptor signaling in myoepithelial and cancer cells. J Mammary Gland Biol Neoplasia. 10, 221-221 (2005).
  9. Haslam, S. Z. Cell to cell interactions and normal mammary gland function. J Dairy Sci. 71, 2843-2843 (1988).
  10. Plante, I., Laird, D. W. Decreased levels of connexin43 result in impaired development of the mammary gland in a mouse model of oculodentodigital dysplasia. Dev Biol. 318, 312-312 (2008).
  11. Talhouk, R. S. Heterocellular interaction enhances recruitment of alpha and beta-catenins and ZO-2 into functional gap-junction complexes and induces gap junction-dependant differentiation of mammary epithelial cells. Exp Cell Res. 314, 3275-3275 (2008).
  12. Palmer, C. A., Neville, M. C., Anderson, S. M., McManaman, J. L. Analysis of lactation defects in transgenic mice. J Mammary Gland Biol Neoplasia. 11, 269-269 (2006).
  13. Howlin, J., McBryan, J., Martin, F. Pubertal mammary gland development: insights from mouse models. J Mammary Gland Biol Neoplasia. 11, 283-283 (2006).
  14. You, L. Modulation of mammary gland development in prepubertal male rats exposed to genistein and methoxychlor. Toxicol Sci. 66, 216-216 (2002).
  15. Grill, C. J., Cohick, W. S., Sherman, A. R. Postpubertal development of the rat mammary gland is preserved during iron deficiency. J Nutr. 131, 1444-1444 (2001).
  16. Hennighausen, L., Robinson, G. W. Think globally, act locally: the making of a mouse mammary gland. Genes Dev. 12, 449-449 (1998).
  17. Aupperlee, . Strain-specific differences in the mechanisms of progesterone regulation of murine mammary gland development. Endocrinology. 150, 1485-1485 (2009).
  18. Montero Girard, G. Association of estrogen receptor-alpha and progesterone receptor A expression with hormonal mammary carcinogenesis: role of the host microenvironment. Breast Cancer Res. 9, R22-R22 (2007).
  19. Moore, D. M., Vogl, A. W., Baimbridge, K., Emerman, J. T. Effect of calcium on oxytocin-induced contraction of mammary gland myoepithelium as visualized by NBD-phallacidin. J Cell Sci. 88, 563-563 (1987).
check_url/kr/2828?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Plante, I., Stewart, M. K., Laird, D. W. Evaluation of Mammary Gland Development and Function in Mouse Models. J. Vis. Exp. (53), e2828, doi:10.3791/2828 (2011).

View Video