Summary

تنقية Hsp104 ، وهو بروتين Disaggregase

Published: September 30, 2011
doi:

Summary

هنا ، نحن تصف وضع بروتوكول لتنقية نشطة للغاية Hsp104 ، وهو AAA + hexameric البروتين من الخميرة ، والتي المائي ATP الأزواج على تصنيفها البروتين. هذا المخطط يستغل بناء His6 الموسومة لتنقية تقارب من<em> E. القولونية</em> تليها أنيون تبادل اللوني ، His6 ، مع إزالة علامة TEV البروتيني ، واللوني الحجم الاستبعاد.

Abstract

Hsp104 هو hexameric AAA + البروتين 1 من الخميرة ، والتي المائي ATP الأزواج على تصنيفها بروتين 20-10 (الشكل 1). يضفي هذا النشاط الانتقائي ميزتان الرئيسية. أولا ، استعادة الطبيعة من المجاميع التي المختلين Hsp104 يخول بقاء الخميرة بعد تشدد البروتين misfolding المختلفة ، بما في ذلك الصدمة الحرارية 3،5،11،12. ثانيا ، إعادة تشكيل الألياف اميلويد بيتا عبر Hsp104 التي تمكن من استغلال الخميرة البريونات لا تعد ولا تحصى (amyloids المعدية) كمستودع للفائدة وراثية الاختلاف المظهري 13-22. بشكل ملحوظ ، ويعيد تشكيل Hsp104 مباشرة oligomers preamyloid والألياف اميلويد ، بما فيها تلك التي تتكون من بروتينات بريون الخميرة وSup35 Ure2 23-30. هذه الوظيفة اميلويد هو إعادة تشكيل الوجه المتخصصة Hsp104 الخميرة. وهاء orthologue القولونية ، ClpB ، فشل أو يعيد oligomers preamyloid ييفات اميلويد 26،31،32.

تم العثور على orthologues Hsp104 في جميع ممالك الحياة باستثناء perplexingly والحيوانات. في الواقع ، ما إذا كانت الخلايا الحيوانية تمتلك أي نظام الأنزيمية أن الأزواج تصنيفها البروتين لاستعادة الطبيعة (بدلا من التدهور) لا يزال غير معروف 33-35. وبالتالي ، اقترحنا وغيرها التي يمكن وضعها Hsp104 كعامل العلاجية لمختلف الأمراض العصبية مرتبطة misfolding من بروتينات معينة في oligomers preamyloid السامة والألياف اميلويد 4،7،23،36-38. لا توجد علاجات التي تستهدف بشكل مباشر الأنواع المجمعة المرتبطة بهذه الأمراض. حتى الآن ، ويذوب Hsp104 oligomers السامة ويتألف من الألياف اميلويد synuclein ألفا ، والتي ترتبط مع مرض باركنسون 23 فضلا عن أشكال من الأميلويد بي ار بي 39. الأهم من ذلك ، يقلل Hsp104 تجميع البروتين وإلى التقليل من تنكس عصبي في نماذج من القوارض مرض باركنسون 23 و 38 مرض هنتنغتون. من الناحية المثالية ، لتحسين العلاج والتقليل من الآثار الجانبية ، ستكون هندستها وHsp104 potentiated لإعادة انتقائي المجاميع الخاصة المركزية لهذا المرض في السؤال 4،7. ومع ذلك ، فإن الفهم المحدود الهيكلية والميكانيكية لليقسم Hsp104 كيف يمكن لمثل ذخيرة متنوعة من هياكل مجمعة والبروتينات لا علاقة لها يحبط هذه المساعي 30،40-42.

لفهم بنية وآلية Hsp104 ، فإنه لا بد من دراسة هذا البروتين النقي وإعادة نشاطها disaggregase بمكونات ضئيلة. Hsp104 هو بروتين 102kDa مع الباياء من ~ 5.3 ، الذي hexamerizes في وجود أو ADP ATP ، أو على تركيزات عالية من البروتين في غياب 43-46 النوكليوتيدات. هنا ، نحن تصف بروتوكول الأمثل لتنقية Hsp104 ، نشطة للغاية مستقرة من E. القولونية. استخدام E. القولونية يسمح مبسطة على نطاق واسع الإنتاج ويمكن أن يؤديها لدينا وسيلة سريعة وموثوق بها عن المتغيرات Hsp104 عديدة. بروتوكول لدينا زيادات Hsp104 النقاء ويبسط له 6 – إزالة علامة مقارنة طريقة تنقية السابقة من E. 47 القولونية. وعلاوة على ذلك ، والبروتوكول لدينا أكثر من سهلة ومريحة بروتوكولين أكثر حداثة 26،48.

Protocol

1. التعبير عن Hsp104 وتستخدم لتنقية البلازميد في E. القولونية ، pPROEX – HTB – Hsp104 ، يحتوي على Hsp104 مفتوح القراءة الإطار تحت سيطرة محرض لجنة الحقيقة والمصالحة المروج 26. وتنتج Hsp104 البلازميد مع N – محطة صاحب العلامة – <…

Discussion

الجدول الزمني : بالنسبة للنشاط Hsp104 القصوى من المستحسن أن يتم الانتهاء من خطة لتنقية كامل في أسرع وقت ممكن. ومع ذلك ، فإن عددا من الخطوات لتنقية جدول زمني يجعل المطالبة التي قد لا تكون دائما عملية. إذا نفذت الخطوات تنقية في أسرع وقت ممكن ، والوقت من نهاية التعبير من ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل عن طريق منحة من المعاهد القومية للصحة (5T32GM008275 – 22) ، وزمالة جمعية القلب الاميركية predoctoral (لقمة شرق آسيا) ، وزمالة واجهة الكيمياء ، علم الأحياء من المعاهد الوطنية للصحة (2T32GM071339 – 06A1) (لMED) ، والمنح المقدمة من المعاهد الوطنية للصحة (1DP2OD002177 – 01 – 0110 وNS067354) ، والمؤسسة الطبية إليسون ، ومؤسسة بيل وميليندا غيتس (للشبيبة).

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number
BL21-CodonPlus-RIL Competent Cells Stratagene, Agilent Technologies 230255
2XYT broth USB 75864
Complete, mini, EDTA-free protease inhibitor tablets Roche 1836170
Pepstatin A Sigma P4265
Ni-Sepharose 6 Fast Flow GE Healthcare 17-5318-02
Amicon Ultra-15 centrifugal filter units (MWCO 30,000) Millipore UFC903008
Resource Q – 6ml column GE Healthcare 17-1179-01
proTEV Protease Promega V6052
AcTEV Protease Invitrogen 12575015
Superose 6 10/300 GL GE Healthcare 17-5172-01
Hsp40 Assay Designs SPP-400
Hsp72 Assay Designs ADI-NSP-555

References

  1. Erzberger, J. P., Berger, J. M. Evolutionary relationships and structural mechanisms of AAA+ proteins. Annu Rev Biophys Biomol Struct. 35, 93-114 (2006).
  2. Glover, J. R., Lindquist, S. Hsp104, Hsp70, and Hsp40: A Novel Chaperone System that Rescues Previously Aggregated Proteins. Cell. 94, 73-82 (1998).
  3. Parsell, D. A., Kowal, A. S., Singer, M. A., Lindquist, S. Protein disaggregation mediated by heat-shock protein Hsp104. Nature. 372, 475-478 (1994).
  4. Vashist, S., Cushman, M., Shorter, J. Applying Hsp104 to protein-misfolding disorders. Biochem Cell Biol. 88, 1-13 (2010).
  5. Parsell, D. A., Sanchez, Y., Stitzel, J. D., Lindquist, S. Hsp104 is a highly conserved protein with two essential nucleotide-binding sites. Nature. 353, 270-273 (1991).
  6. Doyle, S. M., Wickner, S. Hsp104 and ClpB: protein disaggregating machines. Trends Biochem Sci. 34, 40-48 (2009).
  7. Shorter, J. Hsp104: a weapon to combat diverse neurodegenerative disorders. Neurosignals. 16, 63-74 (2008).
  8. Glover, J. R., Lum, R. Remodeling of protein aggregates by Hsp104. Protein Pept Lett. 16, 587-597 (2009).
  9. Mogk, A., Haslberger, T., Tessarz, P., Bukau, B. Common and specific mechanisms of AAA+ proteins involved in protein quality control. Biochem Soc Trans. 36, 120-125 (2008).
  10. Grimminger-Marquardt, V., Lashuel, H. A. Structure and function of the molecular chaperone Hsp104 from yeast. Biopolymers. 93, 252-276 (2010).
  11. Sanchez, Y., Lindquist, S. L. HSP104 required for induced thermotolerance. Science. 248, 1112-1115 (1990).
  12. Sanchez, Y., Taulien, J., Borkovich, K. A., Lindquist, S. Hsp104 is required for tolerance to many forms of stress. Embo J. 11, 2357-2364 (1992).
  13. Alberti, S., Halfmann, R., King, O., Kapila, A., Lindquist, S. A systematic survey identifies prions and illuminates sequence features of prionogenic proteins. Cell. 137, 146-158 (2009).
  14. Halfmann, R., Alberti, S., Lindquist, S. Prions, protein homeostasis, and phenotypic diversity. Trends Cell Biol. 20, 125-1233 (2010).
  15. Shorter, J., Lindquist, S. Prions as adaptive conduits of memory and inheritance. Nat Rev Genet. 6, 435-450 (2005).
  16. True, H. L., Berlin, I., Lindquist, S. L. Epigenetic regulation of translation reveals hidden genetic variation to produce complex traits. Nature. 431, 184-187 (2004).
  17. True, H. L., Lindquist, S. L. A yeast prion provides a mechanism for genetic variation and phenotypic diversity. Nature. 407, 477-483 (2000).
  18. Tyedmers, J., Madariaga, M. L., Lindquist, S. Prion switching in response to environmental stress. PLoS Biol. 6, e294-e294 (2008).
  19. Chernoff, Y. O., Lindquist, S. L., Ono, B., Inge-Vechtomov, S. G., Liebman, S. W. Role of the chaperone protein Hsp104 in propagation of the yeast prion-like factor [psi+]. Science. 268, 880-884 (1995).
  20. Halfmann, R., Lindquist, S. Epigenetics in the extreme: prions and the inheritance of environmentally acquired traits. Science. 330, 629-632 (2010).
  21. Satpute-Krishnan, P., Langseth, S. X., Serio, T. R. Hsp104-dependent remodeling of prion complexes mediates protein-only inheritance. PLoS Biol. 5, e24-e24 (2007).
  22. Sweeny, E. A., Shorter, J. Prion proteostasis: Hsp104 meets its supporting cast. Prion. 2, 135-140 (2008).
  23. Lo Bianco, C. Hsp104 antagonizes alpha-synuclein aggregation and reduces dopaminergic degeneration in a rat model of Parkinson disease. J Clin Invest. 118, 3087-3097 (2008).
  24. Narayanan, S., Walter, S., Reif, B. Yeast prion-protein, sup35, fibril formation proceeds by addition and substraction of oligomers. Chembiochem. 7, 757-765 (2006).
  25. Savistchenko, J., Krzewska, J., Fay, N., Melki, R. Molecular chaperones and the assembly of the prion Ure2p in vitro. J Biol Chem. 283, 15732-15739 (2008).
  26. Shorter, J., Lindquist, S. Hsp104 catalyzes formation and elimination of self-replicating Sup35 prion conformers. Science. 304, 1793-1797 (2004).
  27. Shorter, J., Lindquist, S. Destruction or potentiation of different prions catalyzed by similar Hsp104 remodeling activities. Mol Cell. 23, 425-438 (2006).
  28. Shorter, J., Lindquist, S. Hsp104, Hsp70 and Hsp40 interplay regulates formation, growth and elimination of Sup35 prions. Embo J. 27, 2712-2724 (2008).
  29. Doyle, S. M. Asymmetric deceleration of ClpB or Hsp104 ATPase activity unleashes protein-remodeling activity. Nat Struct Mol Biol. 14, 114-122 (2007).
  30. Wendler, P. Atypical AAA+ subunit packing creates an expanded cavity for disaggregation by the protein-remodeling factor Hsp104. Cell. 131, 1366-1377 (2007).
  31. Hinault, M. P. Stable alpha-synuclein oligomers strongly inhibit chaperone activity of the Hsp70 system by weak interactions with J-domain co-chaperones. J Biol Chem. 285, 38173-38182 (2010).
  32. Tipton, K. A., Verges, K. J., Weissman, J. S. In vivo monitoring of the prion replication cycle reveals a critical role for Sis1 in delivering substrates to Hsp104. Mol Cell. 32, 584-591 (2008).
  33. Bieschke, J., Cohen, E., Murray, A., Dillin, A., Kelly, J. W. A kinetic assessment of the C. elegans amyloid disaggregation activity enables uncoupling of disassembly and proteolysis. Protein Sci1. 8, 2231-2241 (2009).
  34. Cohen, E., Bieschke, J., Perciavalle, R. M., Kelly, J. W., Dillin, A. Opposing activities protect against age-onset proteotoxicity. Science. 313, 1604-1610 (2006).
  35. Cohen, E. Reduced IGF-1 signaling delays age-associated proteotoxicity in mice. Cell. 139, 1157-1169 (2009).
  36. Cushman, M., Johnson, B. S., King, O. D., Gitler, A. D., Shorter, J. Prion-like disorders: blurring the divide between transmissibility and infectivity. J Cell Sci. 23, 1191-11201 (2010).
  37. Carmichael, J. Bacterial and yeast chaperones reduce both aggregate formation and cell death in mammalian cell models of Huntington’s disease. Proc Natl Acad Sci. 97, 9701-9705 (2000).
  38. Vacher, C., Garcia-Oroz, L., Rubinsztein, D. C. Overexpression of yeast hsp104 reduces polyglutamine aggregation and prolongs survival of a transgenic mouse model of Huntington’s disease. Hum Mol Genet. 14, 3425-3433 (2005).
  39. Liu, Y. H. Heat Shock Protein 104 Inhibited the Fibrillization of Prion Peptide 106-126 and Disassembled Prion peptide 106-126 Fibrils in vitro. Int J Biochem Cell Biol. , (2011).
  40. Wendler, P., Saibil, H. R. Cryo electron microscopy structures of Hsp100 proteins: crowbars in or out. Biochem Cell Biol. 88, 89-96 (2010).
  41. Wendler, P. Motor mechanism for protein threading through Hsp104. Mol Cell. 34, 81-92 (2009).
  42. Lee, S., Sielaff, B., Lee, J., Tsai, F. T. CryoEM structure of Hsp104 and its mechanistic implication for protein disaggregation. Proc Natl Acad Sci. 107, 8135-8140 (2010).
  43. Parsell, D. A., Kowal, A. S., Lindquist, S. Saccharomyces cerevisiae Hsp104 protein. Purification and characterization of ATP-induced structural changes. J Biol Chem. 269, 4480-4487 (1994).
  44. Schirmer, E. C., Queitsch, C., Kowal, A. S., Parsell, D. A., Lindquist, S. The ATPase activity of Hsp104, effects of environmental conditions and mutations. J Biol Chem. 273, 15546-15552 (1998).
  45. Schirmer, E. C., Ware, D. M., Queitsch, C., Kowal, A. S., Lindquist, S. L. Subunit interactions influence the biochemical and biological properties of Hsp104. Proc Natl Acad Sci. 98, 914-919 (2001).
  46. Hattendorf, D. A., Lindquist, S. L. Cooperative kinetics of both Hsp104 ATPase domains and interdomain communication revealed by AAA sensor-1 mutants. EMBO J. 21, 12-21 (2002).
  47. Schirmer, E. C., Lindquist, S. Purification and properties of Hsp104 from yeast. Methods Enzymol. 290, 430-444 (1998).
  48. Hattendorf, D. A., Lindquist, S. L. Analysis of the AAA sensor-2 motif in the C-terminal ATPase domain of Hsp104 with a site-specific fluorescent probe of nucleotide binding. Proc Natl Acad Sci. 99, 2732-2737 (2002).
  49. Lum, R., Niggemann, M., Glover, J. R. Peptide and protein binding in the axial channel of Hsp104. Insights into the mechanism of protein unfolding. J Biol Chem. 283, 30139-30150 (2008).
  50. Lum, R., Tkach, J. M., Vierling, E., Glover, J. R. Evidence for an unfolding/threading mechanism for protein disaggregation by Saccharomyces cerevisiae Hsp104. J Biol Chem. 279, 29139-29146 (2004).
  51. Tessarz, P., Mogk, A., Bukau, B. Substrate threading through the central pore of the Hsp104 chaperone as a common mechanism for protein disaggregation and prion propagation. Mol Microbiol. 68, 87-97 (2008).
  52. Weibezahn, J. Thermotolerance requires refolding of aggregated proteins by substrate translocation through the central pore of ClpB. Cell. 119, 653-665 (2004).

Play Video

Cite This Article
Sweeny, E. A., DeSantis, M. E., Shorter, J. Purification of Hsp104, a Protein Disaggregase. J. Vis. Exp. (55), e3190, doi:10.3791/3190 (2011).

View Video