Summary

Isolamento de células primário do mouse trofoblasto e Ensaio invasão do trofoblasto

Published: January 08, 2012
doi:

Summary

Neste protocolo, descreve-se a dissecção de placenta de rato sobre a gravidez d10.5, seguido de isolamento das células trofoblásticas, utilizando um gradiente de Percoll. Em seguida, demonstrar o uso de células isoladas, num ensaio de invasão de Matrigel.

Abstract

A placenta é responsável para o transporte de nutrientes, gases e factores de crescimento para o feto, bem como a eliminação de desperdícios. Assim, defeitos de desenvolvimento da placenta ter importantes conseqüências para o feto ea mãe, e são uma das principais causas de letalidade embrionária. O principal tipo de célula da porção fetal da placenta é o trofoblasto. Primários de rato trofoblasto da placenta é uma ferramenta útil para o estudo do desenvolvimento normal e anormal da placenta, e ao contrário de linhas de células, pode ser isolado e utilizado para estudar trofoblasto em fases específicas da gravidez. Além disso, a culturas primárias de trofoblasto de ratinhos transgénicos podem ser utilizados para estudar o papel de genes específicos em células da placenta. O protocolo aqui apresentado é baseado na descrição por Thordarson et al. 1, no qual um gradiente de Percoll é usado para obter uma população de células relativamente puro trofoblasto da placenta de rato isolados. Ele é similar ao utilizar mais amplamented humano métodos para isolamento 2-3 trofoblasto célula. A pureza pode ser avaliada por coloração imunocitoquímica das células isoladas para citoqueratina 7 4. Aqui, as células isoladas são então analisadas utilizando um ensaio de invasão para avaliar a capacidade de invasão de matrigel trofoblasto in vitro 5-6. As células invadidas são analisados ​​por imunocitoquímica e coradas para contagem.

Protocol

1. Dissecção da placenta do mouse Configure pares de acasalamento dos ratos. Em cada um dos dias seguintes, para verificar a presença de um tampão copulatório. O dia em que é detectada uma ficha é considerada 0,5 dias pós-coito (dpc) 7. Placentas podem ser obtidas na fase desejada da gestação, com uma dissecção limpa do início placenta possível com o desenvolvimento da placenta madura em d 10,5. Aqui, nós demonstramos 14,5 dpc. Nos volumes indicad…

Discussion

Neste vídeo, demonstramos o isolamento de células trofoblásticas da placenta de rato. Depois, mostramos um ensaio in vitro para a invasão do trofoblasto. Utilizando este procedimento, uma grande parte, mas não totalmente, população pura de células trofoblásticas pode ser obtida. Se a pureza é necessária mais, separação magnética ou grânulo de citometria de fluxo pode ser realizada, como já foi descrito para as células trofoblásticas humanas primárias. O comprimento adequado do passo de dissociação c…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Os autores gostariam de agradecer à equipa Serviços Criativos da Universidade de Missouri Centro de Apoio Acadêmico, que produziu este vídeo. Este trabalho foi financiado pelo Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Development Saúde e Humanos do Instituto Nacional de Saúde, subvenção número HD055231

Materials

Specific reagents and equipment:

Wash Solution (filter sterilize after mixing)

Reagent Amount Final concentration
10x Medium 199 50ml 1X
Hepes 2.383 g 0.02M
sodium bicarbonate 0.42 g 0.01M
Penicllin-Streptomycin 5 mL 100 U- 100 μg /ml
Sterile dH20 to 500 mL  

Dissociation solution (make fresh and filter sterilize)

Reagent Amount Final concentration
Wash Solution 100 mL  
DNase 1 vial (2000 U) 20 U/mL
Collagenase 100 mg 125 digestion units/mL
Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Collagenase Sigma C9891 This is Clostridium collagenase. Bovine pancreatic collagenase would likely work as well
NCTC-135 Sigma D4263 Add FBS to 10%
Matrigel invasion chambers BD Biosciences 354481  
10x Medium 199 Sigma M9163  
Penicillin-Streptomycin Invitrogen 15140  
DNase Sigma D4263  
100 μm Cell strainer Fisher 22363549  
Antibody to cytokeratin 7 DAKO M7018 Used at 1:100 dilution

Equipment
Standard cell culture equipment including a CO2 incubator is required. In addition, a centrifuge rotor capable of spinning 50 ml tubes at 30,000 x g is needed. Note that this exceeds the maximum speed of most conical centrifuge tubes and will likely require an Oak Ridge style tube.

References

  1. Thordarson, G., Folger, P., Talamantes, F. Development of a placental cell culture system for studying the control of mouse placental lactogen II secretion. Placenta. 8, 573-585 (1987).
  2. Petroff, M. G., Phillips, T. A., Ka, H., Pace, J. L., Hunt, J. S. Isolation and culture of term human trophoblast cells. Methods. Mol. Med. 121, 203-217 (2006).
  3. Kliman, H. J., Nestler, J. E., Sermasi, E., Sanger, J. M., Strauss, J. F. Purification, characterization, and in vitro differentiation of cytotrophoblasts from human term placentae. Endocrinology. 118, 1567-1582 (1986).
  4. Blaschitz, A., Weiss, U., Dohr, G., Desoye, G. Antibody reaction patterns in first trimester placenta: implications for trophoblast isolation and purity screening. Placenta. 21, 733-741 (2000).
  5. Librach, C. L. 92-kD type IV collagenase mediates invasion of human cytotrophoblasts. J. Cell. Biol. 113, 437-449 (1991).
  6. Schulz, L. C., Widmaier, E. P. The effect of leptin on mouse trophoblast cell invasion. Biol. Reprod. 71, 1963-1967 (2004).
  7. Tanaka, S., Kunath, T., Hadjantonakis, A. K., Nagy, A., Rossant, J. Promotion of trophoblast stem cell proliferation by FGF4. Science. 282, 2072-2075 (1998).

Play Video

Cite This Article
Pennington, K. A., Schlitt, J. M., Schulz, L. C. Isolation of Primary Mouse Trophoblast Cells and Trophoblast Invasion Assay. J. Vis. Exp. (59), e3202, doi:10.3791/3202 (2012).

View Video