Summary

Human inre bröstartären (IMA) Transplantation och stentning: A Human modell för att studera utvecklingen av in-stent restenos

Published: May 09, 2012
doi:

Summary

Denna video visar en modell för att studera utvecklingen av intimal hyperplasi efter stentutveckling med en människa kärl (IMA) i en immunbrist råttmodell.

Abstract

Preklinisk in vivo forskningsmodeller att undersöka patobiologiska och patofysiologiska processer i utvecklingen av intimal hyperplasi efter kärlet stentning är avgörande för translationsrörelse metoder 1,2.

De vanligaste djurmodeller inkluderar möss, råttor, kaniner och grisar 3-5. Dock fortfarande översättningen av dessa modeller i kliniska svårt, eftersom dessa biologiska processer redan studerat i animaliska fartyg men aldrig utförts tidigare i mänsklighetens forskningsmodeller 6,7. I den här videon visar vi en ny humaniserad modell för att övervinna denna translationella gap. Den visade metoden är reproducerbar, enkel och snabb att utföra och är lämplig för att studera utvecklingen av intimal hyperplasi och tillämpningen av olika stent.

Denna video visar hur du utför stenten tekniken i mänskliga kärl följt av transplantation till immunbrist råttor ochidentifierar ursprung prolifererande celler såsom människa.

Protocol

1. Inre bröstartären (IMA) Framställning Det arteriella endotelet är blottlagda av passagen av en 2-fransk Fogarty arteriell embolektomikateter (Baxter Healthcare, Deerfield, IL, USA). Katetern dras genom hela kärlet längd två gånger för att säkerställa endotelskada. Använd någon människa stent för 8mm längd och 2,5 mm-3 mm i diameter (t.ex. Translumina, Yukon stent). VARNING: diametern hos stenten inte överstiga kärldiametern med mer än 10% för att undvika för-och efter-stent-s…

Discussion

Även om olika in vivo forskning modeller befintliga att undersöka utvecklingen av intimal hyperplasi efter stentbehandling, dessa modeller fortfarande inför translationella hinder att övervinna. Dessutom stora djurmodeller är dyra och särskilt boende förhållanden och kirurgisk utrustning inte är tillgänglig för alla laboratorier.

Med hjälp av en människa IMA att studera utvecklingen av mänskliga intima proliferation och in-stent restenos studerades innan ex situ</e…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna tackar Christiane Pahrmann för hennes bidrag. Speciellt tack till Ethicon, Norderstedt, Hamburg (Tyskland) för att ge suturmaterial.

Medel

Sonja Schrepfer har fått ett forskningsanslag från Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) (SCHR992 / 3 1 och SCHR992/4-1).] Arbetet stöddes av ISHLT Shumway karriärutveckling Grant 2010 och Falk forskningsfinansieringen (Stanford University).

Materials

Name of the reagent Company Catalog number Comments
2 French Fogarty catheter Baxter Healthcare, Deerfield, IL, USA 120602F  
Yukon Stent Translumina GmbH, Hechingen, Germany   Use the stent of your choice according to your study protocol
RPMI media Biochrom Nr.F1275  
heparin Baxter 2B0953  
isoflurane Abbot B506  
Provo-Iodine Betadine Puredue Pharma EAN:5995327165830  
80% ethanol Geyer ETV 80/0500  
Micro clamp Harvard Apparatus PY2-61-0186  
Sutures 8-0 Johnson& Johnson, 2808G  
Sutures 6-0 Johnson& Johnson, 1698 H  
Carprofen Feizer Vet PZN:0110208  
Metamizol Ratiopharm    
Target retrieval solution, pH9 Dako S2368  
Image-iT FX signal enhancer Invitrogen I36933  
mouse monoclonal anti-GFP antibody BD living colors 632381  
primary antibody diluent Dako S3022  
goat-anti-mouse IgG, Alexa Fluor 488 Invitrogen A11017  
secondary antibody diluent Dako S0809  
rabbit polycolonal anti-smooth muscle α-actin Abcam, ab5694  
goat-anti-rabbit IgG, Alexa Fluor 555 Invitrogen A21430  
Prolong Gold antifade reagent Invitrogen P36930  

References

  1. Deuse, T., Ikeno, F., Robbins, R. C., Schrepfer, S. Imaging In-Stent Restenosis: An Inexpensive, Reliable, and Rapid Preclinical Model. J. Vis. Exp. (31), e1346 (2009).
  2. Oyamada, S. Trans-iliac rat aorta stenting: a novel high throughput preclinical stent model for restenosis and thrombosis. J. Surg. Res. 166, e91-e95 (2011).
  3. Chamberlain, J. A novel mouse model of in situ stenting. Cardiovascular research. 85, 38-44 (2010).
  4. Deuse, T. Introducing the first polymer-free leflunomide eluting stent. Atherosclerosis. 200, 126-134 (2008).
  5. Finn, A. V. Differential healing after sirolimus, paclitaxel, and bare metal stent placement in combination with peroxisome proliferator-activator receptor gamma agonists: requirement for mTOR/Akt2 in PPARgamma activation. Circulation research. 105, 1003-1012 (2009).
  6. Tellez, A. Coronary bare metal stent implantation in homozygous LDL receptor deficient swine induces a neointimal formation pattern similar to humans. Atherosclerosis. 213, 518-524 (2010).
  7. Suzuki, Y., Yeung, A. C., Ikeno, F. The pre-clinical animal model in the translational research of interventional cardiology. JACC Cardiovasc. Interv. 2, 373-383 (2009).
  8. Holt, C. M. Intimal proliferation in an organ culture of human internal mammary artery. Cardiovascular research. 26, 1189-1194 (1992).
  9. Swanson, N., Javed, Q., Hogrefe, K., Gershlick, A. Human internal mammary artery organ culture model of coronary stenting: a novel investigation of smooth muscle cell response to drug-eluting stents. Clin. Sci. (Lond). 103, 347-353 (2002).

Play Video

Cite This Article
Hua, X., Deuse, T., Michelakis, E. D., Haromy, A., Tsao, P. S., Maegdefessel, L., Erben, R. G., Bergow, C., Behnisch, B. B., Reichenspurner, H., Robbins, R. C., Schrepfer, S. Human Internal Mammary Artery (IMA) Transplantation and Stenting: A Human Model to Study the Development of In-Stent Restenosis. J. Vis. Exp. (63), e3663, doi:10.3791/3663 (2012).

View Video