Summary

Glass Ull Filtre for å konsentrere Vanntynnbare Virus og landbruksprodukter zoonotiske patogener

Published: March 03, 2012
doi:

Summary

Glassull filtre har blitt brukt til å konsentrere vannbårne virus av en rekke forskningsgrupper rundt om i verden. Her viser vi en enkel tilnærming for å bygge glass ull filtre og demonstrere filtrene er også effektive i å konsentrere vannbårne virus-, bakterie-og protozo patogener.

Abstract

Nøkkelen første skritt i å vurdere patogen nivåer i mistanke forurenset vann er konsentrasjonen. Konsentrasjon metoder tendens til å være spesifikk for en bestemt patogen gruppe, for eksempel US Environmental Protection Agency Method 1623 for Giardia og Cryptosporidium en, noe som betyr flere metoder er nødvendig dersom prøvetaking programmet er rettet mot mer enn en patogen gruppe. En annen ulempe med dagens metoder er utstyret kan være komplisert og dyrt, for eksempel VIRADEL metoden med 1MDS patron filter for å konsentrere virus to. I denne artikkelen beskriver vi hvordan du konstruere glassull filtre for å konsentrere vannbårne patogener. Etter filter eluering, er konsentratet mottagelig for en andre konsentrasjon skritt, slik som sentrifugering, etterfulgt av patogen Påvisning og telling av kulturelle eller molekylære metoder. Filtrene har flere fordeler. Konstruksjonen er enkel og filtrene kan bygges til enNY størrelse for å møte spesifikke prøvetaking krav. Filteret deler er billig, noe som gjør det mulig å samle et stort antall prøver uten alvorlig påvirker et prosjekt budsjett. Store prøvevolumer (100s til 1000 L) kan være konsentrert avhengig av takten for tilstopping fra utvalget turbiditet. Filtrene er svært portabel og med minimal utstyr, for eksempel en pumpe og strømningsmåler, kan de implementeres i feltet for prøvetaking ferdig drikkevann, overflatevann, grunnvann, og landbruket avrenning. Endelig er glassull filtrering effektiv for å konsentrere en rekke patogene typer slik at bare én metode er nødvendig. Her rapporterer vi om filter effektivitet i å konsentrere vannbåren human enterovirus, S almonella enterica, Cryptosporidium parvum, og fugleinfluensa-viruset.

Protocol

1. Klargjøre Glassull Før og etter at hvert parti av filtre, sterilisere arbeidsområdet med 10% blekemiddel løsning. Ta på hansker og kappe. Steriliser en bøtte ved autoklavering ved 121 ° C og 15 psi i minst 20 minutter. Plasser glassull i den sterile bøtte. Mett glassull med omvendt osmose vann og la trekke i 15 minutter. Tapp omvendt osmose vann fra bøtte. Mett glassull med en M HCl og la trekke i 15 minutter. Drener 1 M HCl fra bøtten. …

Discussion

Glassull filtre har vært brukt av flere forskergrupper 3,5,6 å konsentrere menneskelige enteriske virus fra en rekke vannkilder som ferdig drikkevann 7, 8,9 grunnvann, overflatevann 10, sjø 11 vann, 12 avløpsvann, og landbruket avrenning 13. Her rapporterer vi er filtrene også effektive i å konsentrere aviær influensa virus samt bakterielle og protozo patogener Salmonella enterica (serovar Typhimurium) og Cryptosporidium parvum, h…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker William T. Eckert for narrating videoen. Utvikling av glassull protokollen var en del av Wisconsin vann og helse Trial for enteriske risikoer (WAHTER Study), finansiert av US EPA STAR Grant R831630. Alaska prøver ble samlet av A. Reeves, A. Ramey, og B. Meixell med økonomisk støtte fra USGS. All bruk av handel, produkt eller firma navn er for beskrivende kun og innebærer ikke godkjenning av amerikanske myndigheter.

Materials

Name of reagent or item Company Catalogue number
Hydrochloric acid Fisher Scientific A144-500
Sodium hydroxide Fisher Scientific BP359-212
Phosphate Buffered Saline
Sodium chloride
Potassium phosphate-dibasic
Potassium phosphate-monobasic

Fisher Scientific
Fisher Scientific
Fisher Scientific

BP358-212
BP363-500
BP362-500
Sodium hypochlorite i.e., household bleach The Clorox Co.  
Sodium thiosulfate, anhydrous Fisher Scientific S 475-212
Beef extract, desiccated Becton, Dickinson and Company 211520
Glycine Fisher Scientific G46-500
Oiled sodocalcic glass wool
Or
R-11 unfaced fiberglass insulation
Isover

Johns Manville
Bourre 725 QN


Polypropylene mesh Industrial Netting xN4510
2″x4″ Sch 80 PVC threaded pipe nipple Grainger 6MW35
2″ Sch 40 PVC cap Grainger 5WDW3
Male adapter nylon fitting (1/2″x1/2″) US Plastic Corp. 62178
Sample bottles for eluate- 1 liter Fisher Scientific 03-313-4F
60 mL syringe Fisher Scientific NC9661991
pH strips Whatman 2614 991
Prefilter, Polypropylene, 10 inch cartridge, 10 μm McMaster-Carr 4411K75
Prefilter housing Cole-Parmer S-29820-10

References

  1. US Environmental Protection Agency. Method 1623: Cryptosporidium and Giardia in Water by Filtration/IMS/FA. EPA 815-R-05-002. , (2012).
  2. Cashdollar, J. L., Dahling, D. R. Evaluation of a method to re-use electropositive cartridge filters for concentrating viruses from tap and river water. J. Virol. Methods. 132, 13-17 (2006).
  3. Lambertini, E. Concentration of enteroviruses, adenoviruses, and noroviruses from drinking water by use of glass wool filters. Appl. Environ. Microbiol. 74, 2990-2996 (2008).
  4. Spackman, E. Development of a real-time reverse transcription PCR assay for Type A influenza virus and the avian H5 and H7 hemagglutinin subtypes. J. Clin. Microbiol. 40, 3256-3260 (2002).
  5. Environment Agency. Optimisation of a new method for detection of viruses in groundwater. Report No. NC/99/40. , (2000).
  6. Vilaginés, P., Sarrette, B., Husson, G., Vilaginés, R. Glass wool for virus concentration at ambient water pH level. Water Sci. Technol. 27, 299-306 (1993).
  7. Vivier, J. C., Ehlers, M. M., Grabow, W. O. Detection of enteroviruses in treated drinking water. Water Res. 38, 2699-2705 (2004).
  8. Powell, K. L., Sililo, O. . Enteric virus detection in groundwater using a glass wool trap. In: Groundwater: Past Achievements and Future Challenges. , 813-816 (2000).
  9. Hunt, R. J., Borchardt, M. A., Richards, K. D., Spencer, S. K. Assessment of sewer source contamination of drinking water wells using tracers and human enteric viruses. Environ. Sci. Technol. 44, 7956-7963 (2010).
  10. van Heerden, J., Ehlers, M. M., Heim, A., Grabow, W. O. Prevalence, quantification and typing of adenoviruses detected in river and treated drinking water in South Africa. J. Appl. Microbiol. 99, 234-242 (2005).
  11. Vilaginés, P. Round robin investigation of glass wool method for poliovirus recovery from drinking water and sea water. Water Sci. Technol. 35, 445-449 (1997).
  12. Gantzer, C., Senouci, S., Maul, A., Levi, Y., Schwartzbrod, L. Enterovirus genomes in wastewater: concentration on glass wool and glass powder and detection by RT-PCR. J. Virol. Methods. 65, 265-271 (1997).
  13. Borchardt, M. A., Jokela, W. E., Spencer, S. K. Pathogen losses in surface water runoff from dairy manure applied to corn fields. , (2011).
  14. Deboosere, N. Development and validation of a concentration method for the detection of influenza A viruses from large volumes of surface water. Appl. Environ. Microbiol. 77, 3802-3808 (2011).
  15. Lambertini, E. Virus contamination from operation and maintenance practices in small drinking water distribution systems. J. Water Health. 9, 799-812 (2011).
check_url/kr/3930?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Millen, H. T., Gonnering, J. C., Berg, R. K., Spencer, S. K., Jokela, W. E., Pearce, J. M., Borchardt, J. S., Borchardt, M. A. Glass Wool Filters for Concentrating Waterborne Viruses and Agricultural Zoonotic Pathogens. J. Vis. Exp. (61), e3930, doi:10.3791/3930 (2012).

View Video