Summary

Singolo ovociti Mutagenesi bisolfito

Published: June 27, 2012
doi:

Summary

Mutagenesi bisolfito è il gold standard per l'analisi della metilazione del DNA. Il nostro protocollo modificato per l'analisi consente di metilazione del DNA al livello di singola cellula ed è stato specificamente progettato per i singoli ovociti. Può anche essere utilizzato per il clivaggio stadio embrioni.

Abstract

L'epigenetica comprende tutte ereditarie e le modifiche reversibili alla cromatina che l'accessibilità alter gene, e quindi sono i principali meccanismi per la regolazione della trascrizione genica 1. Metilazione del DNA è una modificazione epigenetica che agisce prevalentemente come un segno repressivo. Attraverso l'aggiunta covalente di un gruppo metilico su citosine in dinucleotidi CpG, può assumere altre proteine ​​repressivi e modifiche istone avviare processi di condensazione della cromatina e il silenziamento genico 2. Metilazione del DNA è essenziale per il normale sviluppo in quanto svolge un ruolo fondamentale nella programmazione dello sviluppo, differenziamento cellulare, la repressione degli elementi retrovirali, inattivazione del cromosoma X e imprinting genomico.

Uno dei metodi più potenti per l'analisi della metilazione del DNA è mutagenesi bisolfito. Bisolfito di sodio è un mutageno DNA che deamina cytosines in uracils. Dopo l'amplificazione PCR e seque ncing, questi eventi di conversione vengono rilevati come thymines. Citosine metilate sono protetti da deaminazione e quindi rimangono come citosine, che consente l'identificazione di metilazione del DNA a livello di singolo nucleotide 3. Sviluppo del saggio mutagenesi bisolfito è avanzato da quelli originariamente riportati 4-6 verso quelli che sono più sensibili e riproducibile 7. Un progresso fondamentale è stato l'incorporamento piccole quantità di DNA in un cordone di agarosio, proteggendo in tal modo il DNA dal trattamento bisolfito duro 8. Questa analisi di metilazione in grado di essere eseguita su pool di ovociti e di embrioni allo stadio di blastocisti 9. Il più sofisticato protocollo di mutagenesi bisolfito ad oggi è per i singoli embrioni allo stadio di blastocisti 10. Tuttavia, poiché blastocisti hanno in media 64 celle (contenente 120-720 pg di DNA genomico), questo metodo non è efficace per gli studi sulla metilazione ovociti individuali o clivaggio stadi embrioni.

tenda "> Assunzione di indizi da incorporare agarosio di somme di DNA minuto tra cui 11 ovociti, qui vi presentiamo un metodo per cui gli ovociti vengono direttamente incorporati in una soluzione di agarosio e lisi cordone immediatamente dopo il recupero e la rimozione della zona pellucida dell'ovocita dal. Questo ci permette di bypassare le due sfide principali di mutagenesi singolo ovocita: bisolfito. proteggere una piccola quantità di DNA dalla degradazione, e conseguente perdita durante le fasi di protocollo numerosi importante, poiché i dati sono ottenuti da ovociti singoli, il problema del bias PCR in pool Inoltre viene eliminato. , contaminazione accidentale cella cumulo rilevabili mediante questo metodo poiché ogni campione con più di un pattern di metilazione può essere esclusi dall'analisi 12. Questo protocollo fornisce un metodo migliorato per analisi di successo e riproducibile di metilazione del DNA a livello di singola cellula ed è ideale ovociti per i singoli così come scissione stadio embrioni.

Protocol

1 ° GIORNO Preparare le seguenti soluzioni fresche del giorno di raccolta degli ovociti con sterile, acqua distillata come l'acqua GIBCO. Per ridurre la possibilità di contaminazione del DNA, cambiare i guanti spesso e usare puntali con filtro. Tenere tubi angolato lontano quando aperto, e richiuderli tutte le provette quando non in uso. Si raccomanda che le soluzioni sono state rilasciate n +1. 3% agarosio LMP Punto di Fusione 30 mg …

Discussion

Questo saggio ovocita singolo contiene molti passi con un numero che sono critiche e richiedono particolare attenzione. Il primo è lavaggio ovocita. È particolarmente importante lavare ciascun ovocita più volte in mezzo fresco scende dopo il trattamento ialuronidasi per rimuovere come cellule del cumulo numero possibile. Inoltre, durante il trasferimento di ovociti alla soluzione acida Tyrode per la rimozione della zona pellucida assicurarsi che circonda mezzo è chiaro cellule del cumulo. L'ovocita è molto appi…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato sostenuto dalla University of Western Ontario, il Dipartimento di Ostetricia e Ginecologia, e una borsa di ER06-02-188 da Ministryof di ricerca e innovazione, Premio ricercatore alle prime armi. MMD è stata sostenuta da un programma di formazione CIHR in riproduzione, lo sviluppo precoce e l'impatto sulla salute (REDIH) Graduate Scholarship.

Materials

Table of specific reagents and equipment.

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Oocyte Collection
Hyaluronidase Sigma H4272  
Acidic Tyrode Sigma T1788  
Proteinase K Sigma P5568  
10% IGEPAL Bioshop NON999.500  
Lysis Solution
Tris pH 7.5 Bioshop TRS001.5  
LiCl Sigma L9650  
EDTA pH 8.0 Sigma E5134  
LiDS Bioshop LDS701.10  
DTT Invitrogen P2325  
SDS Lysis Buffer
TE pH 7.5

Bioshop(Tris)

Sigma (EDTA)

TRS001.5

E5134

 
10% SDS Bioshop SDS001.500  
Bisulfite Conversion
Sodium Hydroxide Sigma S8045  
Sodium Hydrogensulfite (Sodium Bisulfite) Sigma 243973  
Hydroquinone Sigma H9003  
Low Melting Point (LMP) Agarose Sigma A9414  
Mineral Oil Sigma M8410  
M2 Medium Sigma M7167  
GIBCO Distilled water Invitrogen 15230-196  
Autoclaved double distilled (dd) water      
PCR
Illustra Hot Start Mix RTG GE Healthcare 28-9006-54  
240 ng/ml yeast tRNA Invitrogen 15401-011  
5x Green GoTaq Reaction Buffer Promega M7911  
Inner and outer nested primers Sigma    
Ligation
Promega pGEM-T Easy Vector Fisher Scientific A1360  
TA Cloning
Competent E.coli cells Zymo Research Corp. T3009  
Equipment
Dissecting Microscope      
70°C and 90°C Heat Blocks      
37°C and 50°C Waterbaths (42°C for transformations)      
Rocker      
PCR machine      

References

  1. Jaenisch, R., Bird, A. Epigenetic regulation of gene expression: how the genome integrates intrinsic and environmental signals. Nat. Genet. 33, 245-254 (2003).
  2. Rodenhiser, D., Mann, M. Epigenetics and human disease: translating basic biology into clinical applications. CMAJ. 174, 341-348 (2006).
  3. Frommer, M. A genomic sequencing protocol that yields a positive display of 5-methylcytosine residues in individual DNA strands. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 89, 1827-1831 (1992).
  4. Clark, S. J., Harrison, J., Paul, C. L., Frommer, M. High sensitivity mapping of methylated cytosines. Nucleic Acids Res. 22, 2990-2997 (1994).
  5. Feil, R., Charlton, J., Bird, A. P., Walter, J., Reik, W. Methylation analysis on individual chromosomes: improved protocol for bisulphite genomic sequencing. Nucleic Acids Res. 22, 695-696 (1994).
  6. Raizis, A. M., Schmitt, F., Jost, J. P. A bisulfite method of 5-methylcytosine mapping that minimizes template degradation. Anal. Biochem. 226, 161-166 (1995).
  7. Patterson, K., Molloy, L., Qu, W., Clark, S. DNA Methylation: Bisulphite Modification and Analysis. J. Vis. Exp. (56), e3170 (2011).
  8. Olek, A., Oswald, J., Walter, J. A modified and improved method for bisulphite based cytosine methylation analysis. Nucleic Acids Res. 24, 5064-5066 (1996).
  9. Mann, M. R. Selective loss of imprinting in the placenta following preimplantation development in culture. Development. 131, 3727-3735 (2004).
  10. Market-Velker, B. A., Zhang, L., Magri, L. S., Bonvissuto, A. C., Mann, M. R. Dual effects of superovulation: loss of maternal and paternal imprinted methylation in a dose-dependent manner. Hum. Mol. Genet. 19, 36-51 (2010).
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  13. Tahiliani, M. Conversion of 5-methylcytosine to 5-hydroxymethylcytosine in mammalian DNA by MLL partner TET1. Science. 324, 930-935 (2009).
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Cite This Article
Denomme, M. M., Zhang, L., Mann, M. R. Single Oocyte Bisulfite Mutagenesis. J. Vis. Exp. (64), e4046, doi:10.3791/4046 (2012).

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