Summary

Determinação da taxa de transporte de xenobióticos e nanomateriais através da placenta usando o<em> Ex vivo</em> Modelo de perfusão da placenta humana

Published: June 18, 2013
doi:

Summary

O<em> Ex vivo</em> Modelo de perfusão de recirculação dupla placenta humana pode ser utilizada para investigar a transferência de xenobióticos e nanopartículas pela placenta humana. Neste protocolo de vídeo que descreve o equipamento e as técnicas necessárias para uma boa realização de uma perfusão placenta.

Abstract

Décadas atrás, a placenta humana foi pensado para ser uma barreira impenetrável entre a mãe eo feto. No entanto, a descoberta de defeitos congénitos, induzidos por talidomida e muitos estudos posteriores depois provado o oposto. Hoje vários xenobióticos nocivos, como nicotina, heroína, metadona ou drogas, bem como poluentes ambientais foram descritos para superar essa barreira. Com o crescente uso da nanotecnologia, a placenta é susceptível de entrar em contacto com novas nanopartículas seja acidental ou intencionalmente através da exposição no caso de potenciais aplicações nanomedical. Os dados de experiências em animais não podem ser extrapolados para seres humanos porque a placenta é o órgão mais específico da espécie de mamífero 1. Portanto, o ex vivo dupla recirculação perfusão placentária humana, desenvolvido pela Panigel et ai. Em 1967 2 e continuamente modificado por Schneider et ai. Em 1972 3, pode servir como um excelente modelo tó estudar a transferência de partículas ou xenobióticos.

Aqui, vamos nos concentrar na dupla ex vivo recirculação protocolo de perfusão da placenta humana e seu desenvolvimento para obter resultados reproduzíveis.

O placentas foram obtidas após consentimento das mães de gestações complicadas prazo submetidas ao parto cesariana. Os vasos fetais e maternos de um dos cotilédones intactos foram canulados e perfundidos pelo menos por cinco horas. Como um modelo de partículas partículas de poliestireno marcadas com fluorescência, com tamanhos entre 80 e 500 nm de diâmetro foram adicionados ao circuito materna. As partículas de 80 nm eram capazes de atravessar a barreira placentária e proporcionar um perfeito exemplo para uma substância que é transferido através da placenta para o feto, enquanto as partículas de 500 nm foram retidos no tecido placentário ou circuito materna. O modelo de perfusão ex vivo da placenta humana é um dos poucos modelos que fornecem informações confiáveis ​​sobreo comportamento de transporte de xenobióticos em uma barreira importante tecido que proporciona dados relevantes preditivos e clínicas.

Introduction

A placenta é um órgão complexo que é responsável pela troca de oxigénio e dióxido de carbono, de nutrientes e de produtos de resíduos e, ao mesmo tempo capaz de manter os dois circuitos de sangue da mãe e para o feto em crescimento separados uns dos outros. Além disso, evita a rejeição da criança pelo sistema imune materno e segrega hormonas para manter a gravidez. A barreira celular é formada pelas células citotrofoblasto que fundem e formam uma verdadeira sincício sem membranas celulares laterais 4,5. Toda a placenta é organizado em várias cotilédones, que contêm uma árvore vilosidades fetal e representam uma unidade funcional da placenta.

O estudo da função de barreira da placenta foi intensificada, com a descoberta dos malformações induzidas talidomida na década de 1960. Por razões óbvias, os estudos de translocação com mulheres grávidas não pode ser executada. Consequentemente, vários modelos alternativos foram desenvolvidos 6,7 </sup>. O modelo relevante mais promissora, e provavelmente mais clínica é o modelo de perfusão ex-vivo de placenta humana desenvolvido por Panigel e colaboradores 2,3.

Muitas mulheres estão expostas a diferentes xenobióticos, tais como drogas ou poluentes ambientais durante a gravidez 8. Para alguns medicamentos, que já foram administradas regularmente durante a gravidez, em estudos in vivo, pode ser realizada por comparação da concentração de sangue materno com aquele no sangue do cordão umbilical. No entanto, geralmente há apenas informações limitadas sobre a farmacocinética e-dinâmica no feto e da teratogenicidade destas substâncias.

Por exemplo opiáceos como a heroína facilmente atravessar a barreira placentária e pode levar à restrição de crescimento intra-uterino, parto prematuro ou aborto espontâneo 9,10. Assim, em caso de abstinência desaparecidos durante a gravidez recomenda-se uma terapia de substituição com metadona. O exmodelo de perfusão in vivo de placenta humana revelou que a transferência de metadona na circulação fetal é negligenciável 11, o que se correlaciona bem com o sangue materno para cabo rácio de concentração no sangue calculados após entrega 12.

A nanotecnologia é um campo em crescimento, especialmente em medicina. Assim, sob a natural fina (<2,5 m de diâmetro) e partículas ultrafinas (<0,1 m de diâmetro) em fumaça de incêndios florestais, erupções vulcânicas e poeira do deserto, a exposição a nanomateriais artificiais (pelo menos uma dimensão <0,1 mícron 13 ) está a aumentar. Isso levantou questões sobre o potencial toxicológico de nanomateriais. Apesar de não haver perigo humano poderia ser provado, no entanto, não são os principais estudos experimentais indicam que as nanopartículas de engenharia pode provocar respostas biológicas adversas que levam a resultados toxicológicos 14. Recentemente, alguns estudos indicam que a exposição pré-natal aopoluição do ar está ligada a uma maior necessidade respiratório e inflamação das vias aéreas em recém-nascidos e crianças 15,16. Além disso, pequenas nanopartículas podem ser utilizados como veículos de fármacos para tratar especificamente tanto o feto ou a mãe. Portanto, torna-se evidente que os estudos extensivos de xenobióticos distintos ou nanomateriais e sua capacidade de atravessar a barreira placentária são obrigatórios. Um panorama atual sobre os estudos atuais sobre a permeabilidade placentária para nanomateriais é resumido em Menezes et al. 2.011 17 e Buerki-Thurnherr et al. 2.012 7.

A dupla ex vivo modelo de perfusão de recirculação de placenta humana proporciona um sistema fiável e controlada para o estudo do transporte placentário de vários compostos endógenos e exógenos 3,11,12,18,19 e uma ampla gama de outras funções da placenta como mecanismos responsáveis ​​pela desenvolvimento de estados patológicos como a pré-eclâmpsia <sup> 20-22. Neste protocolo, focadas principalmente no set up, manuseio e método que permitem o estudo de acumulação, os efeitos e as taxas de translocação de um amplo conjunto de xenobióticos ou nanopartículas.

Protocol

1. Preparação do sistema de perfusão Configure o sistema de perfusão que consiste em um banho de água, uma câmara de perfusão, duas colunas para a oxigenação, duas bombas peristálticas, duas armadilhas bolha, dois geradores de fluxo e um sensor de pressão (Figura 1). Ligação desses componentes com as secções de tubagem composta de materiais de silicone e cloreto de polivinilo de acordo com o esquema da Figura 2. Finalmente, existem dois circuitos representando …

Representative Results

A figura 4A mostra os perfis de perfusão de pequenas partículas de poliestireno (80 nm), que foram transportados através da placenta maiores em comparação com partículas de poliestireno (500 nm), que não foram transferidos para o compartimento fetal. Cada ponto de dados representa a concentração média de partícula para um determinado ponto de pelo menos 3 experiências independentes do tempo. Para poliestireno nanopartículas a transferência placentária é dependente do tamanho 19.</su…

Discussion

Sob a perfusão de recirculação dupla mostrou aqui, existem várias outras configurações experimentais possíveis, dependendo da questão que tem de ser respondida. Perfusões placentários Particularmente abertos são usados ​​para avaliar a depuração da droga a uma concentração de estado estacionário 3. A perfusão de recirculação set-up também pode ser aplicado para confirmar o transporte ativo de substâncias endógenas ou exógenas. Por esta abordagem, a mesma concentração do xenobióti…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho é apoiado financeiramente pela Fundação Nacional Suíço (NRP programa 64, conceder nenhuma 4064-131232).

Materials

Name of the Reagent Company Catalogue Number Comments (optional)
NCTC-135 medium ICN Biomedicals, Inc. 10-911-22C could be replaced by Medium 199 from Sigma (M3769)
Sodium chloride (NaCl) Sigma-Aldrich, Fluka 71381
Potassium chloride (KCl) Hospital pharmacy also possible: Sigma (P9541)
Monosodium phosphate (NaH2PO4 · H2O) Merck 106346
Magnesium sulfate (MgSO4 · H2O) Sigma-Aldrich, Fluka 63139
Calcium chloride (CaCl, anhydrous) Merck 102388
D(+) Glucose (anhydrous) Sigma-Aldrich, Fluka 49138
Sodium bicarbonate (NaHCO3) Merck 106329
Dextran from Leuconostoc spp. Sigma-Aldrich 31389
Bovine serum albumin (BSA) Applichem A1391
Amoxicilline (Clamoxyl) GlaxoSmithKline AG 2021101A
Sodium heparin B. Braun Medical AG 3511014
Sodium hydoxide (NaOH) pellets Merck 106498 CAUTION: corrosive
Ortho-phosphoric acid 85% (H3PO4) Merck 100573 CAUTION: corrosive
Maternal gas mixture: 95% synthetic air, 5% CO2 PanGas AG
Fetal gas mixture: 95% N2, 5% CO2 PanGas AG
Antipyrine (N-methyl-14C) American Radiolabeled Chemicals, Inc. ARC 0108-50 μCi CAUTION: radioactive material (specific activity: 55mCi/mmol)
Scintillation cocktail (IrgaSafe Plus) Zinsser Analytic GmbH 1003100
Polystyrene particles 80 nm Polyscience, Inc. 17150
Polystyrene particles 500 nm Polyscience, Inc. 17152
EQUIPMENT
Water bath VWR 462-7001
Thermostat IKA-Werke GmbH & Co. KG 3164000
Peristaltic pumps Ismatec ISM 833
Bubble traps (glass) UNI-GLAS Laborbedarf
Flow heater UNI-GLAS Laborbedarf
Pressure sensor + Software for analyses MSR Electronics GmbH 145B5
Notebook Hewlett Packard
Miniature gas exchange oxygenator Living Systems Instrumentation LSI-OXR
Tygon Tube (ID: 1.6 mm; OD: 4.8 mm) Ismatec MF0028
Tubes for pumps (PharMed BPT; ID: 1.52 mm) Ismatec SC0744
Blunt cannulae (Ø 0.8 mm) Polymed Medical Center 03.592.81
Blunt cannulae (Ø 1.2 mm) Polymed Medical Center 03.592.90
Blunt cannulae (Ø 1.5 mm) Polymed Medical Center 03.592.94
Blunt cannulae (Ø 1.8 mm) Polymed Medical Center 03.952.82
Parafilm VWR 291-1212
Perfusion chamber with tissue holder (plexiglass) Internal technical department Similar equipment is available from Hemotek Limited, UK
Surgical suture material (PremiCron) B. Braun Medical AG C0026005
Winged Needle Infusion Set (21G Butterfly) Hospira, Inc. ASN 2102
Multidirectional stopcock (Discofix C-3) B. Braun Medical AG 16494C
Surgical scissors B. Braun Medical AG BC304R
Dissecting scissors B. Braun Medical AG BC162R
Needle holder B. Braun Medical AG BM200R
Dissecting forceps B. Braun Medical AG BD215R
Automated blood gas system Radiometer Medical ApS ABL800 FLEX
Multi-mode microplate reader BioTek Synergy HT
Liquid scintillation analyzer GMI, Inc. Packard Tri-Carb 2200
Scintillation tubes 5.5 ml Zinsser Analytic GmbH 3020001
Tissue Homogenizer OMNI, Inc. TH-220
pH meter + electrode VWR 662-2779

References

  1. Ala-Kokko, T. I., Myllynen, P., Vahakangas, K. Ex vivo perfusion of the human placental cotyledon: implications for anesthetic pharmacology. Int. J. Obstet. Anesth. 9, 26-38 (2000).
  2. Panigel, M., Pascaud, M., Brun, J. L. Radioangiographic study of circulation in the villi and intervillous space of isolated human placental cotyledon kept viable by perfusion. J. Physiol. (Paris). 59, 277 (1967).
  3. Schneider, H., Panigel, M., Dancis, J. Transfer across the perfused human placenta of antipyrine, sodium and leucine. Am. J. Obstet. Gynecol. 114, 822-828 (1972).
  4. Enders, A. C., Blankenship, T. N. Comparative placental structure. Adv. Drug Deliv. Rev. 38, 3-15 (1999).
  5. Takata, K., Hirano, H. Mechanism of glucose transport across the human and rat placental barrier: a review. Microsc. Res. Tech. 38, 145-152 (1997).
  6. Saunders, M. Transplacental transport of nanomaterials. Wiley Interdiscip. Rev. Nanomed. Nanobiotechnol. 1, 671-684 (2009).
  7. Buerki-Thurnherr, T., von Mandach, U., Wick, P. Knocking at the door of the unborn child: engineered nanoparticles at the human placental barrier. Swiss Med. Wkly. 142, w13559 (2012).
  8. Gendron, M. P., Martin, B., Oraichi, D., Berard, A. Health care providers’ requests to Teratogen Information Services on medication use during pregnancy and lactation. Eur. J. Clin. Pharmacol. 65, 523-531 (2009).
  9. Burns, L., Mattick, R. P., Lim, K., Wallace, C. Methadone in pregnancy: treatment retention and neonatal outcomes. Addiction. 102, 264-270 (2007).
  10. von Mandach, U. Drug use in pregnancy. Ther. Umsch. 62, 29-35 (2005).
  11. Malek, A., Obrist, C., Wenzinger, S., von Mandach, U. The impact of cocaine and heroin on the placental transfer of methadone. Reprod. Biol. Endocrinol. 7, 61 (2009).
  12. Hutson, J. R., Garcia-Bournissen, F., Davis, A., Koren, G. The human placental perfusion model: a systematic review and development of a model to predict in vivo transfer of therapeutic drugs. Clin. Pharmacol. Ther. 90, 67-76 (2011).
  13. International Organization for Standardization (ISO). Technical Specification (ISO/TS) 27687. Nanotechnologies – Terminology and definitions for nano-objects – Nanoparticles, nanofibre and nanoplate. , (2008).
  14. Pietroiusti, A. Health implications of engineered nanomaterials. Nanoscale. 4, 1231-1247 (2012).
  15. Latzin, P., Roosli, M., Huss, A., Kuehni, C. E., Frey, U. Air pollution during pregnancy and lung function in newborns: a birth cohort study. Eur. Respir. J. 33, 594-603 (2009).
  16. Lacasana, M., Esplugues, A., Ballester, F. Exposure to ambient air pollution and prenatal and early childhood health effects. Eur. J. Epidemiol. 20, 183-199 (2005).
  17. Menezes, V., Malek, A., Keelan, J. A. Nanoparticulate drug delivery in pregnancy: placental passage and fetal exposure. Curr. Pharm. Biotechnol. 12, 731-742 (2011).
  18. Muhlemann, K., Menegus, M. A., Miller, R. K. Cytomegalovirus in the perfused human term placenta in vitro. Placenta. 16, 367-373 (1995).
  19. Wick, P., et al. Barrier capacity of human placenta for nanosized materials. Environ. Health Perspect. 118, 432-436 (2010).
  20. Dancis, J. Why perfuse the human placenta. Contrib Gynecol. Obstet. 13, 1-4 (1985).
  21. May, K., et al. Perfusion of human placenta with hemoglobin introduces preeclampsia-like injuries that are prevented by alpha1-microglobulin. Placenta. 32, 323-332 (2011).
  22. Guller, S., et al. Protein composition of microparticles shed from human placenta during placental perfusion: Potential role in angiogenesis and fibrinolysis in preeclampsia. Placenta. 32, 63-69 (2011).
  23. Challier, J. C. Criteria for evaluating perfusion experiments and presentation of results. Contrib. Gynecol. Obstet. 13, 32-39 (1985).
  24. Kraemer, J., Klein, J., Lubetsky, A., Koren, G. Perfusion studies of glyburide transfer across the human placenta: implications for fetal safety. Am. J. Obstet. Gynecol. 195, 270-274 (2006).
  25. leal, J. K., et al. Modification of fetal plasma amino acid composition by placental amino acid exchangers in vitro. J. Physiol. 582, 871-882 (2007).
  26. athiesen, L., et al. Quality assessment of a placental perfusion protocol. Reprod. Toxicol. 30, 138-146 (2010).
  27. Myllynen, P., et al. Preliminary interlaboratory comparison of the ex vivo dual human placental perfusion system. Reprod Toxicol. 30, 94-102 (2010).
  28. Malek, A., Sager, R., Schneider, H. Maternal-fetal transport of immunoglobulin G and its subclasses during the third trimester of human pregnancy. Am. J. Reprod. Immunol. 32, 8-14 (1994).
  29. Prouillac, C., Lecoeur, S. The role of the placenta in fetal exposure to xenobiotics: importance of membrane transporters and human models for transfer studies. Drug Metab. Dispos. 38, 1623-1635 (2010).
  30. Poulsen, M. S., Rytting, E., Mose, T., Knudsen, L. E. Modeling placental transport: correlation of in vitro BeWo cell permeability and ex vivo human placental perfusion. Toxicol. In Vitro. 23, 1380-1386 (2009).
  31. Mathiesen, L., Rytting, E., Mose, T., Knudsen, L. E. Transport of benzo[alpha]pyrene in the dually perfused human placenta perfusion model: effect of albumin in the perfusion medium. Basic Clin. Pharmacol. Toxicol. 105, 181-187 (2009).
check_url/kr/50401?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Grafmüller, S., Manser, P., Krug, H. F., Wick, P., von Mandach, U. Determination of the Transport Rate of Xenobiotics and Nanomaterials Across the Placenta using the ex vivo Human Placental Perfusion Model. J. Vis. Exp. (76), e50401, doi:10.3791/50401 (2013).

View Video