Summary

MicroRNA<em> In situ</em> Hybridation pour les tissus rénaux fixés au formol

Published: November 30, 2013
doi:

Summary

Cet article décrit un protocole d'hybridation in situ optimisé pour la détection colorimétrique de l'expression de micro-ARN dans des sections de rein fixés au formol.

Abstract

Dans cet article, on décrit un procédé de détection colorimétrique de miARN dans le rein par hybridation in situ avec de la digoxigénine marqué dans les sondes de microARN. Ce protocole, développé à l'origine par Kloosterman et ses collègues pour une large utilisation de sondes Exiqon miRNA 1, a été modifié pour surmonter les difficultés inhérentes à l'analyse des miRNA dans les tissus rénaux. Il s'agit notamment des questions telles que l'identification de la structure et difficile à retirer la sonde résiduelle et anticorps. L'utilisation de relativement mince, 5 mm d'épaisseur, les coupes de tissus autorisés pour une visualisation claire des structures du rein, alors qu'un signal de la sonde solide a été maintenu dans les cellules. En outre, la concentration de la sonde et des conditions d'incubation ont été optimisés pour faciliter la visualisation de l'expression de microARN avec faible bruit de fond et le signal non spécifique. Ici, le protocole optimisé est décrit, couvrant la collecte de tissu initial et de la préparation à travers le montage de lames à la fin de la procédure. Le compone de basents de ce protocole peuvent être modifiés pour l'application à d'autres tissus et des modèles de culture cellulaire.

Introduction

MicroARN sont de petite taille (environ 22 nucléotides de long) non codantes des ARN qui sont produites de façon endogène. Ils fonctionnent généralement à supprimer l'expression de la protéine par la répression de translation ou la dégradation de l'ARNm. miARN se lient à des cibles ARNm avec complémentarité incomplète, ce qui permet à un seul miARN pour supprimer plusieurs cibles.

Comprendre les types et les structures cellulaires expriment miARN est une partie importante de la compréhension des mécanismes par lesquels des modifications dans miRNA influence d'expression cellulaire et des phénotypes de tissus. Bien que les méthodes telles que le séquençage miRNA, qPCR et Northern blot peuvent être utilisés pour la détection de miARN dans les tissus entiers, cette approche ne permet pas de déterminer quel type de cellule spécifique ils sont venus dans un tissu donné. Dissection de composants cellulaires et structurelles avant l'analyse à l'aide de ces méthodes peut être très difficile et les conditions nécessaires à la réalisation des isolations appropriées peut conduire à alterations dans l'expression génique ou de la dégradation d'ARN. microRNA hybridation in situ est une méthode utilisée pour visualiser l'emplacement de micro-ARN et des niveaux d'expression dans les tissus. Cette technique est particulièrement utile dans les tissus constitués de structures hétérogènes, tels que le rein.

Les microARN ont été montré à jouer un rôle de régulation dans 2,3 de développement du rein et de la physiologie 4. modifications d'expression de microARN ont également été montré pour être impliqué dans la pathologie rénale telles que la fibrose 5-10, la néphropathie diabétique 7, carcinome rénal 11,12, et l'insuffisance rénale aiguë 13. Dans notre recherche, nous avons constaté que l'optimisation de microARN hybridation in situ pour les tissus rénaux en était précieux pour déterminer les emplacements exacts structurelles d'expression des miARN dans la santé et la maladie 14. Détermination de l'expression tubulaire et cellulaire de différentes microARN est important parce que leur réglementation de targets peuvent dépendre de fonctions cellulaires. Dans les états pathologiques, il est également important de déterminer comment altérations de l'expression des miARN peuvent avoir des répercussions sur la fonction.

Le but de la méthode décrite ici était de construire des méthodologies ISH existants élaborés par Kloosterman et al. 15, d'autres enquêteurs 16,17, et ceux suggérés par Exiqon 1 et d'optimiser la méthode pour les tissus rénaux fixes au formol. Nous avons utilisé cette méthode avec succès pour identifier les différences régionales dans les microARN miR rénale expression-382 avec obstruction urétérale unilatérale 18. Cette approche peut être utilisée avec d'autres tissus, avec une optimisation supplémentaire.

Protocol

Une. coupes de tissus rénaux Fixés au formol (10%) des sections de rein paraffine sont coupés sur des lames de microscope à 5 mm d'épaisseur en utilisant un Microm HM 355 S. Les lames peuvent être stockées pendant plusieurs mois avant l'analyse. 2. Préparation de la solution Préparer 1 L de PBS 1x dans le trou DDH 2 O dans une bouteille avec vis autoclavable. Remplir une autre bouteille de 1 L de ddH 2 O. Ajouter 1 ml de DEPC…

Representative Results

Les zones d'une section de tissu qui se dessécher pendant les hybridations, des incubations ou étapes de lavage généralement finissent par coloration plus sombre lors de l'élaboration du NBT / BCIP. Figure 1 montre une partie d'une section de rein, dans lequel le HybriSlip glissé hors du bord d' le tissu, lui permettant de devenir partiellement déshydraté. Malgré la réhydratation et la couverture dans les étapes restantes, le signal dans la partie déshydraté est artificielle…

Discussion

Le but de cet article est de décrire un protocole de miARN hybridation in situ qui fonctionne bien dans les tissus rénaux fixés au formol. Tout en travaillant sur ce protocole plusieurs sources importantes d'artefact coloration ont été identifiés. Une attention particulière à ces points peut aider à éviter la coloration artefact et augmenter la probabilité d'une course de ISH succès.

Une des causes les plus évitables de artefact coloration peut se produire lorsq…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par les US National Institutes of Health accorde HL082798 et HL111580.

Materials

Paraformaldehyde Sigma P6148
PBS Gibco 70011044
Diethyl Pyrocarbonate Sigma D5758
Tween-20 Sigma P1379
Xylenes Sigma 534056
Ethanol Ultra Pure 200CSPTP
Tris-HCl Life Technologies 15506-017
CaCl2 Sigma C2536
Glycine J.T. Baker 4059-00
Citric Acid Sigma C2404
Formamide Sigma F9037
20x SSC Buffer Life Technologies 15557-044
Heparin SAGENT 25021-400-30
Yeast RNA Life Technologies AM7118
MgCl2 Sigma M8266-1004
NaCl J.T. Baker 4058-01
Proteinase K Fermentas EO0491
3’ DIG- miRNA probe Exiqon miR dependent-05
3’ DIG- Scrambled miR probe Exiqon 99004-05
3’ DIG- U6 miR probe Exiqon 99002-05
Anti-Digoxigenin-Ab Fab Roche 11093274910
Fragments
NBT/BCIP Roche 11681451001
Permount Fisher SP15-500
Coverslips Fisher Fit to tissue size
Microtom HM 355 S Thermo Scientific 23-900-672
In-slide Out Hybridization Oven Boekel 241000
Aluminum Tray Assembly Boekel C2403973
Stainless Steel Rack Insert Boekel C2403754

References

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Cite This Article
Kriegel, A. J., Liang, M. MicroRNA In situ Hybridization for Formalin Fixed Kidney Tissues. J. Vis. Exp. (81), e50785, doi:10.3791/50785 (2013).

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