Formålet med protokollen er å bruke optimale fremgangsmåter for å stimulere de cytoplasmiske DNA føler trasé i celler og in vivo. Dette oppnås ved å forbedre genereringen av lange, dobbeltkjedet DNA ved butt-ende ligering. Celler eller mus blir deretter transfektert ved hjelp av en lipid transfeksjon reagens.
For effektivt å stimulere en medfødte immunrespons, må DNA være av tilstrekkelig lengde og renhet. Vi presenterer en metode hvor dobbelt-trådet DNA (dsDNA), som har de nødvendige egenskaper for å stimulere cytoplasmisk DNA føler trasé kan genereres billig og på en enkel måte. Ved concatemerization av korte, syntetiske oligonukleotider (som mangler CpG motiver), kan dsDNA bli generert til å være av tilstrekkelig lengde for å aktivere den cytosoliske DNA føle pathway. Denne protokoll omfatter butt ende ligering av oligonukleotidene i nærvær av polyetylenglykol (PEG), som gir et effektivt miljø for ligering til å forekomme. De dsDNA concatemers kan anvendes, etter rensing ved fenol / kloroform ekstraksjon, for å simulere den medfødte immunrespons in vitro ved hjelp av standard protokoller transfeksjon. Dette DNA kan også brukes til å stimulere medfødt immunitet in vivo ved intradermal injeksjon i øret pinna av en mus, for eksempel. Avstandardisere concatemerization prosessen og den etterfølgende stimuleringsregimer, kan en pålitelig og reproduserbar aktivering av den medfødte immunsystemet bli produsert.
DNA er en viktig komponent i alle organismer og celler, som eukaryoter holder i bestemte avdelinger. En funksjon av den medfødte immunsystemet, er å identifisere når en slik compartmentalization bryter ned eller når fremmed materiale blir innført inn i organismen via et brudd på fysiske, ytre barrierer. I menneskekroppen er det en rekke proteiner som finnes å bidra til å degradere små mengder av DNA som kan unnslippe korrekt compartmentalization; DNAse I, II og III bryte ned DNA i plasma, endosome, og cytosol, respektivt. Imidlertid har det vist seg at mus som mangler DNAse II dør av alvorlig anemi forårsaket av overdreven produksjon av interferoner en som tyder på at det medfødte immunsystemet reagerer på ekstra-kjerne-DNA. Denne responsen skjer selv hos mus som er helt mangelfull i toll-like receptor signalkapasitet. Tallrike studier har nå vist at stimulator av interferon gener (STING) 2 og TANK-bindende kinase 1 (TBK1) 3 er involvert i gjenkjenning av DNA i cytoplasma, og at denne signalveien aktiveres interferon regulerende faktor (IRF) -3 4. Den påfølgende IRF3 avhengige transkripsjon av cytokin, kjemokinet og interferon gener er karakteristisk for en medfødt immunrespons mot enten et patogen eller fare forbundet molekylær mønster (PAMP eller fuktig) 5.
Ønsket om å studere intracellulære nukleinsyre sensing veier har ført til kravet om å utvikle robuste og reproduserbare metoder for å stimulere cellene ved å innføre DNA eller RNA inn i celler uten å aktivere andre medfødte immunresponser. En metode der STING / TBK1 / IRF3 pathway kan stimuleres er ved hjelp av kationiske lipid transfeksjon reagenser å levere nukleinsyre i cytoplasma hvor den kan nås av DNA-sensorer som DNA-PK, IFI16, og CGAS 6-8.
Karakteristikken av DNA som nå er forstått å tillate efficient aktivering av cytoplasma medfødte immunrespons uten stimulering av andre banene er dens lengde, masse, renhet og mangel på CpG motiver 4,7,9. Syntetiske oligonukleotider er godt egnet for det formål å generere en medfødte immunrespons som de tillater at DNA-sekvensen som skal optimaliseres, og fremstilt som en ren kjemisk species. En 45 basepar immuno-stimulerende DNA (ISD) sekvensen ble identifisert ved Stetson et al. Fire som å være et egnet, CpG-fri sekvens for dette formål. Dette dsDNA sekvensen er ellers tilfeldig og har ingen spesifikke funksjoner utover sin mangel på CpG motiver. Vi har funnet at ved concatemerizing ISD oligonukleotid inn betydelig lengre tråder øker omfanget av stimulering 7. Generering av concatemerized ISD er derfor nyttig for å stimulere en cytoplasma medfødte immunrespons. Her presenterer vi protokoller for utarbeidelsen av denne reagensen og hvordan den kan brukes til å aktivere DNA sensing veien ivitro samt in vivo.
MERK: Alle dyrestudier er utført under godkjente institusjonelle protokoller og retningslinjer dyr omsorg.
De protokoller som er beskrevet her, blir brukt til å generere dsDNA å stimulere cytosoliske medfødte immunrespons med reproduserbare resultater i et stort utvalg av celletyper og in vivo. Siden den viktigste substrat reagens som anvendes er en syntetisk oligonukleotid, har det fleksibiliteten i dette system for å bruke alternative DNA-sekvenser eller kjemiske modifikasjoner. Det er mulig, for eksempel, for å erstatte den fremre otidet beskrevet i denne protokoll med en som inneholder en fluorescerende mar…
The authors have nothing to disclose.
Forfatterne har ingen bekreftelser.
Forward Primer | Integrated DNA technologies | n/a | TACAGATCTACTAGTGATCTATGACTGATCTGTACATGATCTACA |
Reverse Primer | Integrated DNA technologies | n/a | TGTAGATCATGTACAGATCAGTCATAGATCACTAGTAGATCTGTA |
PEG8000 | Sigma-Aldrich | P-4463 | |
Molecular biology grade water | Sigma-Aldrich | W4502-1L | |
T4 Polynucleotide Kinase | Promega | M4101 | |
T4 DNA Ligase | Promega | M1801 | |
Phenol:Chloroform | Fisher Chemical | BPE1752p-400 | |
Chloroform | Fisher Chemical | C/4960/PB08 | |
Ethanol | Sigma-Aldrich | 32221-2.5L | |
DNA gel loading buffer | New England biolabs | B7021S | |
Agarose | Bioline | BIO-41025 | |
Optimem | Life Technologies | 11058021 | |
TransIT-LT1 | Mirus Bioscience | MIR 2300 | |
Hamilton Syringe | Hamilton | 80901 Model 1705 | |
30G needles | BD bioscience | 304000 | |
SYBR Safe DNA gel stain | Life Technologies | S33102 | |
Rneasy Plus Mini Kit | Qiagen | 74134 | |
Oligo(dT) primer | Thermo Scientific | SO131 | |
dNTP mix | Fermentas | R0192 | |
Super Script III reverse transcriptase | Life Technologies | 56575 | |
First strand cDNA synthesis buffer | Life Technologies | y02321 | |
SybrGreen qPCR Fast master mix | Applied Biosystems | 4385612 | |
cxcl10 murine forward primer | Integrated DNA technologies | n/a | ACTGCATCCATATCGATGAC |
cxcl10 murine reverse primer | Integrated DNA technologies | n/a | TTCATCGTGGCAATGATCTC |
il6 murine forward primer | Integrated DNA technologies | n/a | GTAGCTATGGTACTCCAGAAGAC |
il6 murine forward primer | Integrated DNA technologies | n/a | GTAGCTATGGTACTCCAGAAGAC |