Summary

Imagens em tempo real de células mielóides em Dynamics<em> Apc<sup> Min / +</sup</em> Intestinal Tumores girando Disk microscopia confocal

Published: October 06, 2014
doi:

Summary

By using transgenic reporter mice and injectable fluorescent labels, long-term intravital spinning disk confocal microscopy enables direct visualization of myeloid cell behavior into intestinal adenoma in the ApcMin/+ colorectal cancer model.

Abstract

Células mielóides são as células do sistema imunológico mais abundantes e dentro de tumores têm sido mostrados para promover a progressão do tumor. Técnicas de imagem intravital modernos permitem a observação do comportamento celular ao vivo dentro do órgão, mas pode ser um desafio em alguns tipos de câncer devido ao órgão e tumor acessibilidade, tais como intestino. A observação direta de tumores intestinais não foi previamente relatado. Um procedimento cirúrgico descrito aqui permite a observação direta da dinâmica de células mielóides dentro dos tumores intestinais em ratos vivos, utilizando camundongos transgênicos repórter fluorescente e traçadores injectáveis ​​ou anticorpos. Para este propósito, um de quatro cores, multi-região, com lentes de micro-disco giratório microscópio confocal que permite imagens contínuo a longo prazo com a aquisição de imagem foi usada rápida. Apc Min / + ratinhos que desenvolvem adenomas múltiplos do intestino delgado são cruzados com ratos c-fms-EGFP para visualizar as células mielóides e com camundongos ACTB-ECFPpara visualizar as células epiteliais do intestino das criptas. Procedimentos para a marcação de diferentes componentes, tais como tumores, vasos sanguíneos e neutrófilos, e o processo para o posicionamento do tumor para a imagiologia por meio a superfície serosa também são descritos. Filmes time-lapse compilados a partir de várias horas de imagens permitem que a análise do comportamento de células mielóides in situ no microambiente intestinal.

Introduction

Evidência esmagadora demonstra agora que o microambiente do tumor, consistindo em populações celulares heterogéneas, incluindo fibroblastos, células endoteliais, células imunitárias e inflamatórias, matriz extracelular e factores solúveis, desempenha um papel crucial na iniciação e progressão de tumores sólidos, contribuindo para quase todos características de câncer 1. Com efeito, durante a progressão do tumor, há interações dinâmicas constantes entre as células cancerosas transformadas e células do estroma que evoluem para gerar um microambiente favorável à malignidade 2. Entre as células do sistema imunológico que se infiltram no microambiente do tumor, as células mielóides são os mais abundantes 3. Consistindo de macrófagos associados a tumores (TAM), células supressoras derivadas de mielóides (MDSCs), células dendríticas (DC) e de neutrófilos (PMNs), as células mielóides são recrutadas a partir da medula óssea e infiltrar progressivamente tumores, libertando citocinas, factores de crescimento e proteases que pode promovercrescimento do tumor e se espalhar 4. A interferência entre células cancerosas e células mielóides é complexo, mas dinâmico. Assim, a compreensão da natureza de suas interações é crucial para determinar por que essas células promovem a progressão do câncer, em vez de participar de uma resposta imune anti-tumor, e pode ajudar a encontrar novos alvos para controlá-lo.

A observação direta por microscopia intravital fornece informações sobre a dinâmica de células dentro dos tecidos de camundongos ao vivo 5. A quatro cores, multi-região, disco giratório com lentes micro-sistema confocal foi projetado para estudar células estromais dentro de tumores mamários 6. Esta abordagem permite a imagiologia contínua a longo prazo e inclui várias vantagens, tais como: (a) de aquisição de imagens rápidas para minimizar artefactos de movimento, (b), a anestesia de longo prazo, (c) quatro aquisição de cor a seguir diferentes tipos de células, (d) marcação fluorescente de diferentes componentes tumorais, e (e) a observação de diferentes microambientes tumorais sagacidadehin o mesmo mouse para evitar mouse para variabilidade rato 7-9. Com esta tecnologia, os diferentes comportamentos de células têm sido relatados no vírus do tumor mamário de modelo (MMTV) polioma meio conduzido pelo promotor T oncogene (Pymt) que mostra as fases progressivas da tumorigénese. Os linfócitos T reguladoras (Treg, visualizadas pelo transgene Foxp3 EGFP) migram preferencialmente na proximidade dos vasos sanguíneos que o DCS (CD11c-DTR-EGFP), fibroblastos associada a carcinoma (FSP1 + / + -EGFP) e células mielóides (c-fms -EGFP) exibem maior mobilidade na periferia do tumor do que no interior da massa do tumor. Na condição de hipóxia sistémica aguda, as células migraram de forma diferente: Tregs parar a migração em contraste com as células mielóides que continuam a mover-se 6. Além disso, no mesmo modelo de rato, demonstrou-se que as alterações de sensibilidade com doxorrubicina fase do tumor, a distribuição da droga está relacionada com a resposta a fármacos, e doxorrubicinatratamento conduz ao recrutamento dependente de CCR2 de células mielóides ao tumores. Assim, imagens ao vivo também pode ser usado para obter insights sobre as respostas de drogas no local e na biologia do chemoresistance 10,11.

Polipose adenomatosa coli (APC) mutações genéticas ocorrem geralmente em adenomas colorretais humanos e carcinomas 12 e mutação de uma única cópia dos resultados gene APC em polipose adenomatosa familiar (FAP), o que confere um risco extremamente elevado para câncer de cólon 13. A estirpe de ratinhos Apc Min / + carrega uma mutação no códon 850 truncamento do gene APC e desenvolve espontaneamente várias adenomas intestinais em todo o intestino delgado de 14 16. Imagens intravital longo prazo do intestino é difícil por causa da capacidade de invasão do procedimento, uma vez que a abertura da cavidade peritoneal, é necessária para o acesso ao intestino. Imagens ao vivo de curto prazo ruaudies ter sido previamente publicada no intestino saudável 17,18, mas a observação direta de longo prazo de tumores intestinais não foi relatado. Um procedimento cirúrgico foi concebido e aperfeiçoado para visualizar tumores através da superfície serosa do intestino, usando o sistema de microscopia intravital fiação disco previamente utilizado para tumores mamários 6,10 imagem. Neste artigo, é descrito um protocolo que permite que se siga o comportamento de células mielóides no interior dos tumores do intestino delgado, utilizando Apc Min / + mice.

Protocol

NOTA: Todos os experimentos com animais foram realizados de acordo com procedimentos aprovados pelo Comitê de Cuidados e Uso Animal Institucional (IACUC), UCSF. Todos os experimentos com imagens eram procedimentos não-sobrevivência e os animais foram sacrificados imediatamente após o final da aquisição da imagem. 1. geração de camundongos NOTA: Apc Min / +, ratinhos portadores de uma mutação no gene APC, desenvolvem espontanea…

Representative Results

Usando fiação de microscopia confocal de disco, tecidos não tumorais e tumorais no intestino delgado de Apc Min / +; ACTB-ECFP; ratinhos c-fms-ECFP pode ser visualizada a partir da superfície serosa. Depois de imagem, software da câmera é usada para analisar e ajustar a aquisição (Figura Complementar 1). Após a administração intravenosa (iv) injecção de 2.000 kDa fluorescente rodamina-dextrano e um anticorpo conjugado Ly-6G 647, vasos sanguíneos e PMN …

Discussion

Neste trabalho, um protocolo detalhado é descrito por disco giratório de imagem confocal da dinâmica de células mielóides em tumores intestinais por várias horas em um animal vivo, fotografada do lado da serosa do intestino.

Para evitar a inflamação e a ter condições fisiológicas óptimas, a imagiologia do intestino tem que ser feito no órgão intacto. No entanto, a imagem do lado da serosa do intestino é difícil, uma vez que a luz tem de passar através de diferentes camadas d…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gostaríamos de agradecer Ying Yu para APC Min / + camundongos genotipagem. Este estudo foi apoiado por fundos do INSERM e subvenções (CA057621 e AI053194) do National Institutes of Health.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
ApcMin/+ mice Jackson Laboratory 2020
ACTB-ECFP mice Jackson Laboratory 3773
cfms-EGFP mice Jackson Laboratory 18549
2,000 kDa Dextran, rhodamine-conjugated Invitrogen D7139
Isoflurane Butler Animal Health Supply 29450
Nitrogen UCSF
Oxygen UCSF
1X PBS UCSF cell culture facility
Saline Buffer UCSF cell culture facility
Anti-mouse Ly-6G (GR1) antibody AF647 UCSF Monoclonal antibody core Stock 1mg/ml. Use at 7ug/mouse
Atropine LARC UCSF Use at 1mg/Kg mouse
Alcohol wipes Becton Dickinson 326895
28G1/2 insulin syringe Becton Dickinson 329465
Remium cover glass Fisher Scientific 12-548-5M 24×50-1
Superfrost plus microscope slides Fisher Scientific 12-550-15 25x75x1mm
Krazy glue Office Max 7111555
Betadine LARC UCSF
Heat blanket Gaymar Industries
Hot bead sterilizer Fine Science Tools 18000-45 Turn ON 30min before use
Cotton tipped apllicators 6-inch Electron Microscopy Sciences 72310-10
Anesthesia system Summit Anesthesia Support
Inverted microscope Carl Zeiss Inc Zeiss Axiovert 200M
stage insert Applied Sientific Instrumentation
Mouse Ox oximeter, software and sensors Starr Life Sciences MouseOx
Nebulizer Summit Anesthesia Support
Imaris Bitplane
mManager Vale lab, UCSF Open-source software
ICCD camera Stanford Photonics XR-Mega-10EX S-30
Spinning disk confocal sacan-head Yokogawa Corporation CSU-10b

References

  1. Hanahan, D., Weinberg, R. A. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell. 144 (5), 646-674 (2011).
  2. Hanahan, D., Coussens, L. M. Accessories to the crime: functions of cells recruited to the tumor microenvironment. Cancer Cell. 21 (3), 309-322 (2012).
  3. Schouppe, E., De Baetselier, P., Van Ginderachter, J. A., Sarukhan, A. Instruction of myeloid cells by the tumor microenvironment: Open questions on the dynamics and plasticity of different tumor-associated myeloid cell populations. Oncoimmunology. 1 (7), 1135-1145 (2012).
  4. Egeblad, M., Nakasone, E. S., Werb, Z. Tumors as organs: complex tissues that interface with the entire organism. Dev Cell. 18 (6), 884-901 (2010).
  5. Lohela, M., Werb, Z. Intravital imaging of stromal cell dynamics in tumors. Curr Opin Genet Dev. 20 (1), 72-78 (2010).
  6. Egeblad, M., et al. Visualizing stromal cell dynamics in different tumor microenvironments by spinning disk confocal microscopy. Dis Model Mech. 1 (2-3), 155-167 (2008).
  7. Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. Dynamic long-term in vivo imaging of tumor-stroma interactions in mouse models of breast cancer using spinning-disk confocal microscopy. Cold Spring Harb Protoc. 2011 (2), (2011).
  8. Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. Monitoring of vital signs for long-term survival of mice under anesthesia. Cold Spring Harb Protoc. 2011 (2), (2011).
  9. Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. Preparation of mice for long-term intravital imaging of the mammary gland. Cold Spring Harb Protoc. 2011 (2), (2011).
  10. Nakasone, E. S., Askautrud, H. A., Egeblad, M. Live imaging of drug responses in the tumor microenvironment in mouse models of breast cancer. J Vis Exp. (73), e50088 (2013).
  11. Nakasone, E. S., et al. Imaging tumor-stroma interactions during chemotherapy reveals contributions of the microenvironment to resistance. Cancer Cell. 21 (4), 488-503 (2012).
  12. Walther, A., et al. Genetic prognostic and predictive markers in colorectal cancer. Nat Rev Cancer. 9 (7), 489-499 (2009).
  13. Fearon, E. R. Molecular genetics of colorectal cancer. Annu Rev Pathol. 6, 479-507 (2011).
  14. Moser, A. R., Pitot, H. C., Dove, W. F. A dominant mutation that predisposes to multiple intestinal neoplasia in the mouse. Science. 247 (4940), 322-324 (1990).
  15. Su, L. K., et al. Multiple intestinal neoplasia caused by a mutation in the murine homolog of the APC gene. Science. 256 (5057), 668-670 (1992).
  16. Watson, A. J., et al. Epithelial barrier function in vivo is sustained despite gaps in epithelial layers. Gastroenterology. 129 (3), 902-912 (2005).
  17. McDole, J. R., et al. Goblet cells deliver luminal antigen to CD103+ dendritic cells in the small intestine. Nature. 483 (7389), 345-349 (2012).
  18. Xu, C., Shen, Y., Littman, D. R., Dustin, M. L., Velazquez, P. Visualization of mucosal homeostasis via single- and multiphoton intravital fluorescence microscopy. J Leukoc Biol. 92 (3), 413-419 (2012).
  19. Haigis, K. M., et al. Differential effects of oncogenic K-Ras and N-Ras on proliferation, differentiation and tumor progression in the colon. Nat Genet. 40 (5), 600-608 (2008).
  20. Sansom, O. J., et al. Loss of Apc allows phenotypic manifestation of the transforming properties of an endogenous K-ras oncogene in vivo. Proc Natl Acad Sci U S A. 103 (38), 14122-14127 (2006).
  21. Janssen, K. P., et al. APC and oncogenic KRAS are synergistic in enhancing Wnt signaling in intestinal tumor formation and progression. Gastroenterology. 131 (4), 1096-1109 (2006).
  22. Takaku, K., et al. Intestinal tumorigenesis in compound mutant mice of both Dpc4 (Smad4) and Apc genes. Cell. 92 (5), 645-656 (1998).
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Cite This Article
Bonnans, C., Lohela, M., Werb, Z. Real-time Imaging of Myeloid Cells Dynamics in ApcMin/+ Intestinal Tumors by Spinning Disk Confocal Microscopy. J. Vis. Exp. (92), e51916, doi:10.3791/51916 (2014).

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