Сигнализации Ca 2 + регулирует разнообразные биологические процессы в растениях. Здесь мы представляем подходы для мониторинга абиотическую стресс, вызванный пространственная и временная Са 2 + сигналы в Arabidopsis клеток и тканей с использованием генетически закодированные Ca 2 + показатели экворин или Case12.
Развивающие и средовые сигналы вызывают Ca 2 + колебания в клетках растений. Стимул конкретных пространственно-временные Са 2 + модели воспринимаются сотовых Ca 2 + связывающих белков, которые инициируют Ca 2 + сигнальные каскады. Тем не менее, мы все еще мало знаем о том, как стимул сигналы конкретного Ca 2 + генерируются. Специфика сигнала Са 2 + может быть связано с сложной регуляции деятельности каналов Са 2 + и / или перевозчиков в ответ на данный стимул. Чтобы определить эти клеточные компоненты и понять свои функции, она имеет решающее значение для использования системы, позволяющие чувствительный и надежный запись сигналов Ca 2 + как на тканевом и клеточном уровнях. Генетически кодируемые Са 2 + показатели, которые ориентированы на различные клеточные отсеков обеспечили платформу для живых клеток конфокальной микроскопии клеточных Са 2 + сигналов. Здесь мы опишем инструкциюс для использования двух Са 2 + систем обнаружения: экворин основе ФАС (фильм клейкие саженцы) люминесценции Ca 2 + изображений и case12 основе конфокальной флуоресцентной живая клетка Ca 2 + изображения. Свечение изображений с помощью системы FAS обеспечивает простой, надежный и чувствительный обнаружение пространственных и временных Са 2 + сигналов на тканевом уровне, в то время как конфокальной микроскопии живых клеток с помощью Case12 обеспечивает одновременное обнаружение цитозольного и ядерных Са 2 + сигналов с высоким разрешением.
Растительная клетка реагирует на окружающую среду посредством сигнализации, которая координирует сотовые действия. Рано клеток событие сигнализации в ответ на раздражители среды является переходным Ca 2 + увеличение. Узор, или подпись преходящим повышением в свободном Са 2 + концентрации характеризуется своей амплитудой, частотой и длительностью. Различные пространственно-временные подписи Ca 2 + регулировать различные клеточные активности 1. Конкретные стимулы, такие как тепло, холод, соль, засухи, света, или растительных гормонов, может точно настроить пространственно-временную активность мембранных локализованные Са 2 + каналов и / или перевозчиков, в результате конкретных Са 2 + подписей. Хотя Са 2 + транспортеры были хорошо характеризуется, мало известно о молекулярных идентичностей и функций каналов Ca 2 + в растения 1. Генетические экраны для мутантов с измененной Са 2 + ответ на стресс стимулы могут быть эффективным октренере для идентификации компонентов, которые составляют подписей Ca 2 +. Недавно на основе нескольких экворин Са 2 + системы обнаружения были разработаны облегчить генетические экраны для Са 2 + компоненты сигнализации в ответ атаки патогена и абиотическим стрессам 2-4.
Экворин был впервые использован для обнаружения Са 2 + сигналы в растениях в начале 1990-х годов 5. С тех пор, экворин была ориентирована в различных клеточных компартментах, таких как цитоплазме 5, 6 ядра, хлоропластов 7, 8, тонопласт митохондрий 9, 10 и стромы, а также в различных типах клеток в корне, чтобы контролировать конкретную клетку Са 2 + сигналы 11. Измерений, основанный экворин Ca 2 + выявить пространственную и временную Ca 2 + ответ популяции клеток под напряжением стимулы. Тем не менее, в большинстве случаев, Са 2 + ответы одиночных клеток являются unsynchroniзет в ответивших ткани 4. Поэтому записи экворин Ca 2 + не обязательно сообщить Са 2 + сигнал в индивидуальных клетках. В последние годы, генетически кодируемых флуоресцентный белок (ФП) основе Ca 2 + показатели, такие как желтый Cameleon (YCS) 12 и 13 CASEs12 были использованы для изучения Са 2 + сигналов с высоким разрешением субклеточном. YCS являются флуоресценции резонансный перенос энергии (FRET) основе Ca 2 + показатели, содержащий CFP и YFP варианты связаны с Са 2 +-связывающий белок кальмодулин и калмодулин связывания пептида М13. Кальмодулин претерпевает конформационные изменения, как он связывается с Са 2 +, тем самым приносит CFP и YFP ближе друг к другу, что приводит к увеличению передачи энергии (усиливается лад). Уровень FRET в течение долгого времени, рассчитанный примерно как отношение YFP к интенсивности сигналов CFP, отражает внутриклеточного Ca2 + динамику. Несколько YC варианты были использованы в растениях. YC3.6 было тargeted в цитозоль 14,15, ядра 16, митохондрий 17 и мембране 18, и YC4.6 и D4ER были направлены в отделение скорой 15,19, и D3cpv была направлена на пероксисомах 20. Трансгенные растения, выражающие YCS позволить жить-ячейки изображения Ca 2 + динамики внутри различных клеточных отсеках различных типов клеток. Случаях (предположительно Ca lcium себе nsor) одиночные циркулярно переставляются флуоресцентные белки (cpFPs), несущие калмодулин и калмодулина-связывающий пептид М13. После связывания с Са 2 +, МИОНы пройти конформационные изменения, что приводит к увеличению интенсивности флуоресценции. Корреляция между ответ флуоресценции МИОНа и Са 2 + концентрации позволяет внутриклеточный Ca 2 + динамика должна быть измерена количественно. Case12 вариант увеличилась флуоресценции 12 раз в Са 2 + -насыщенных форм. Н. benthiminana растения временно EXPRэссинга Case12 или Arabidopsis растения, стабильно экспрессирующие Case 12 были использованы для изучения Ca 2 + сигнализацию в оборонной и абиотическим стрессам 4,21. Асинхронный пространственная и временная Ca 2 + колебания в клетках, отвечающих на атаки патогена, или к обезвоживанию стресса были выявлены с основанной Case12 Са 2 + визуализации.
Здесь мы представляем подробные инструкции по экворин основе люминесценции визуализации ткани, так и стимулов определенной Са 2 + динамика в Arabidopsis рассаду, и для конфокальной микроскопии от цитозольной и ядерной Са 2 + динамика в Arabidopsis корневых клеток, которые выражают Дело 12. люминесценции изображений ФАС может быть адаптирована для анализа стресс-индуцированной Ca 2 + динамику в целые растения или тканей, не описанных здесь, или для скрининга мутагенизированных популяции растений Arabidopsis для мутантов с измененной стресса, вызванного Са 2 + сигналов. Установка изображений живых клеток Ca 2 + могут быть адаптированы для анализа Ca2 + динамика в рамках различных отсеков subcelluar или в различных типах клеток с помощью других Ca 2 + показатели.
Мы продемонстрировали систему FAS для записи пространственно-временную Ca 2 + ответ Arabidopsis рассады. Это ФАС Ca 2 + система записи обеспечивает простой, чувствительный и надежный подход, который может быть адаптирован для измерения Са 2 + динамику запускаются различными стим…
The authors have nothing to disclose.
We are grateful to B. Stevenson for technical assistance and Dr Marc R. Knight for providing Aequorin transgenic line. This work was funded by the National Institutes of Health Grant R01 GM059138.
Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
10X10 cm square petri dish | VWR | 60872-310 | |
adhesive film | VWR | 60941-062 | |
polyethylene tubing | PerkinElmer | 9908265 | |
1 mL syringe | VWR | 53548-000 | |
silicone grease | Beckman | 335148 | |
2-well chambered cover glass | Nalge Nunc international | 155379 | |
8-well chambered cover glass | Nalge Nunc international | 155409 | |
luminescence imaging system | Princeton Instruments | N/A | |
inverted confocal laser-scanning microscope | Nikon Instruments Inc. | N/A | Nikon A1R |
Imaging software | Nikon Instruments Inc. | N/A | Nikon Elements |
ImageJ | NIH | N/A | Public domain, Java-based image processing program |
DataGraph | Visual Data Tools Inc | N/A | DataGraph 3.1.1 is the newest version |
coelenterazine | NanoLight Technolgies | #301B NF-BCTZ-FB | |
All purpose Bleach | Any local store | N/A | |
Triton X-100 | Fisher | BP151500 | |
MS salt | Phytotechnology Labs | M524-50L | |
sucrose | VWR | BDH8029-12KG | |
Agar | Sigma | A1296-5KG | |
Phytagel | Sigma | P8169-1KG |