Proteins interact with each other and these interactions determine in a large part their functions. Protein interaction partners can be identified at high-throughput in vivo using a yeast fitness assay based on the dihydrofolate reductase protein-fragment complementation assay (DHFR-PCA).
Proteins are the building blocks, effectors and signal mediators of cellular processes. A protein’s function, regulation and localization often depend on its interactions with other proteins. Here, we describe a protocol for the yeast protein-fragment complementation assay (PCA), a powerful method to detect direct and proximal associations between proteins in living cells. The interaction between two proteins, each fused to a dihydrofolate reductase (DHFR) protein fragment, translates into growth of yeast strains in presence of the drug methotrexate (MTX). Differential fitness, resulting from different amounts of reconstituted DHFR enzyme, can be quantified on high-density colony arrays, allowing to differentiate interacting from non-interacting bait-prey pairs. The high-throughput protocol presented here is performed using a robotic platform that parallelizes mating of bait and prey strains carrying complementary DHFR-fragment fusion proteins and the survival assay on MTX. This protocol allows to systematically test for thousands of protein-protein interactions (PPIs) involving bait proteins of interest and offers several advantages over other PPI detection assays, including the study of proteins expressed from their endogenous promoters without the need for modifying protein localization and for the assembly of complex reporter constructs.
タンパク質相互作用ネットワーク(ピン)は、タンパク質が機能的にセル1に編成されている方法の低解像度マップを提供します。各物理的な2つのタンパク質間の接続、またはタンパク質 – タンパク質相互作用(PPI)は、そのようなタンパク質複合体の中に見られるように、時間的に安定して関連付けを表すことができ、それは細胞の構造的組織化に寄与する。これらの接続には、活性、安定性、局在化および2のパートナーの相互作用を調節する過渡関連を表すことができる。与えられたタンパク質の物理的相互作用パートナーを識別すること、したがってそのタンパク質2,3の機能と規制に関する豊富な情報を提供しています。これらの理由から、大きな努力が大腸菌 4-6、 シロイヌナズナ7、サッカロマイセス·セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae)8-12、キイロショウジョウバエ<などのモデル生物でのPINのマッピングに向けて置かれている/ em>の13、線虫は、14と15 サピエンスホモエレガンス 。これらの研究は、タンパク質が細胞内で編成されているかを重要な洞察および未知の機能を有するタンパク質上のため、重要な情報を提供してきた。
いくつかの戦略は、ピンを研究するために長年にわたって開発されてきた。これらの技術は広く(16-18に概説)はPPIの上に提供する情報の種類に基づいて、三つのカテゴリーに分類することができる。最初の1は、酵母ツーハイブリッドおよびその誘導体19に基づいています。これらの技術は、バイナリのネットワークを構築することができ、タンパク質のペアの間の直接的な関連、上の情報を提供します。第二のファミリーは、ベイトタンパク質のアフィニティー精製および質量分析20に続くアフィニティー精製などのそれらの関連パートナーの同定に基づく。これらのアプローチは、直接であるタンパク質のグループを識別するまたは間接的に、一般的に安定した方法で、関連する、およびタンパク質複合体を同定するために非常に強力である。第三のアプローチは、タンパク質断片相補アッセイ(PCAは)11,21に基づいています。それは、タンパク質間の直接および近位の関連付けを検出することができますように、このアプローチは、二人の元のアプローチの解像度の中間レベルを提供します。最近18を見直しとして各技術は、独自の長所と短所があります。
そのプロテオームは、他のモデル真核生物のものよりも比較的複雑であるため、とのPPIを検出するためのハイスループットアッセイは、最初にアッセイされ、より効率的であるたために最善のような真核生物のPINは、部分的には、これまでで出芽酵母Saccharomyces cerevisiaeの一つですこのモデル生物9-12で実装。酵母系に特に強力な方法は、ジヒドロ葉酸還元酵素タンパク質断片相補アッセイ(DHFR-PCA)、されているアッセイである標準と摂動条件11,22-26における酵母PINを研究するために別のコンテキストで使用。この方法は、定量的に27で内因性発現レベルにおける所与のベイトタンパク質と相互作用パートナー11,21の天然の細胞内の局在化のための直接近直接PPIの検出を可能にする生存アッセイに依存している。このアッセイ(高密度コロニーアレイ上すなわちコロニーサイズ)を使用して得られた信号は、このように、野生型細胞のいずれかとほぼ同等の細胞環境におけるベイトとプレイとの間に形成されるタンパク質複合体の量を反映する。アッセイは、その2つのタンパク質が相互作用するときに目的の2つのタンパク質に融合されるDHFRの2つの相補断片が接近することにより、葉酸代謝に関与するレポーター酵素、ジヒドロ葉酸レダクターゼ(DHFR)の再構成に基づいている今度は酵素活性1の可逆的再構成につながる1とメトトレキサート(MTX; 図1)を含む培地上で株の増殖。この化合物は、内因性DHFR酵素ではなく、アッセイ28で使用される突然変異したものを阻害する。 PCA株の二つのコレクションを含む1 マタで株〜4300 ORFはDHFR Fに融合した[1,2]フラグメントおよびORFはDHFR [3]断片に融合、に購入することができた株α〜4800 MATを含む1すべての実験室での小規模または大規模にDHFR-PCAを実装する。ここでは、1ベイトタンパク質と、このアッセイを用いて〜4800獲物タンパク質との間のPPIをスクリーニングするための一般的なが、詳細なプロトコルを記述します。
我々は、高スループットでの任意のベイトタンパク質のための物理的な相互作用因子の系統的な同定を可能にするDHFR-PCAアッセイに基づくプロトコルを記載している。このプロトコルは、より多くの餌をスクリーニングすることによって適合され、この複製の任意の所望のレベルにすることができる。 Nup82:私たちは、核膜孔複合体に関与ベイトタンパク質のための物理的な相互作用パートナーの同定により、このプロトコルの信頼性を実証する。我々の分析は、酵母タンパク質のインタラクトームを研究する方法の能力を強調し、5以前に報告されたインターアクターと1以前に報告されていない相互作用因子( 図3F&3G)を見つけることができました。
ここで説明するプロトコルは、実験者が注意を払う必要があります先のいくつかの重要なステップを含む。私たちは、餌DHFR Fは[1,2]融合が( 図1B)が正しいことを確認してください)1にお勧めします。これは、建設およびmeasurを配列決定することによって達成することができる抗DHFR F [1,2]または抗DHFR F [3]抗体を用いて、適切なタンパク質発現をる。 2)画面を開始する前に、それが関心のある任意の餌は、PCAの画面で無差別な相互作用を発揮するかどうかを確認することをお勧めします。これは、適切なL-DHFR制御または手動で適切なL-DHFRコントロールで餌を交配し、MTXの培地中での増殖アッセイを実行することによって交差餌とコントロール画面を実行することによって行うことができる。水分が印刷プロセス中に寒天表面上の細胞接着のために最適であるように、それらが使用される前に3)プレート日注がれるべきである。 4)ソースプレートは、先プレートに十分な細胞を転送するための4倍以上を使用すべきではない。目的プレートのコピー数の増加は、膨張の連続工程( – > 16コピー- > 64コピー、例えば 4コピー)することによって行うことができる。あるいは、細胞は、芝生または複製の異なるラウンド間コロニーの異なる位置に撮像することができる。 5)もし、いくつかのpositionsは二倍体の選択(複数可)の後に不足している、ソースプレートは(4.5〜4.7ステップ)嵌合段階で何度も使用されなかったことを確認してください。 6)MTX媒体は右の濃度ですべての必須成分が含まれていることを確認。全く成長がMTX培地上で観察されていない場合には相互作用は、目的のタンパク質についてPCAによって検出されないため、またはMTX媒体が適切に準備されなかったため、実際には、のいずれかであり得る。媒体はDHFRが相補性断片を示す株の増殖を可能にすることを保証するために、構成的な相互作用は、コレクションの空の位置に追加され、そのようなロイシンジッパー部分33( 図1C)に融合DHFR断片陽性対照として使用することができる。リンカ-DHFR断片またはジッパー – リンカー – DHFR断片を用いた並列テストがDESCRとして、偽陽性の相互作用をする傾向があるすべての細胞が成長することを可能にする条件(低MTX濃度またはベイトタンパク質を区別できるようになります全ての株(培地中に欠けているMTX濃度が高すぎるか、または本質的な成分)の増殖を防止するための条件は、以下アイベッド);および例えば、ピンツールは、複製ラウンドおよび/または最後の水との間で適切に滅菌されていない、場合7)PCAを別の媒体から複製の連続ラウンドを介して行われることを考えると、異なるプレート間の株の間で交差汚染が発生することが滅菌手順のバス( すなわちウェットステーション)は、前回の複製ラウンドのコロニーによって汚染されている。アレイ上のいくつかの位置は空であり、従って、全く成長が交差汚染を検出するために観察されないはずである制御位置として使用することができる。
画像解析は、いくつかの公開されたソフトウェア(プロトコルのセクション5を参照)、または任意のカスタムスクリプトを使用して行うことができる。本研究では、カスタムスクリプトは、次の手順を実行します。1)スクリプトが共存するために、各プレートの値をピクセルに空のプレートの画素値を減算し、照明バイアスを修正してください。 2)スクリプトがエッジコロニー上の矩形を重ねることによって決定された各プレートの各1536位置については、)10. 3の画素値のしきい値を使用してバイナリに各バックグラウンド補正画像に変換し、スクリプトはImageJのが「粒子を分析し実行します…円形の選択で」機能。円形の選択は、2つの位置の±10画素間の間隔に等しい半径が設定される。 4)スクリプトは、選択範囲の中心から最も近い粒子を選択し、その場所が離れて選択範囲の中心から2コロニー間の半分以上の間隔でない場合は植民地としてそれを確認する。 5)スクリプトは、バックグラウンド補正画像上の選択された粒子の画素値を測定する。 6)さらに、残りの背景照明の偏りを修正するには、スクリプトがコロニーの画素値に対する粒子の一部ではない円形選択からすべての画素の平均値を減算する。これらの補正画素値の和補足表1の欄「IntDenBackSub」に格納されているのは、コロニーの大きさの尺度として使用される。
解析部内の重要なステップは、有意性の閾値の選択である。ここでは、負のL-DHFR F [3]のコントロールの分布に基づいて閾値を選択したが、画面の目的に応じて、そのような閾値は、厳しすぎるかもしれない。相補的な断片は、自然発生的に互いに補完してもよく、これらは、このようにほとんどのタンパク質の発現を代表するものではないことを確かに、L-DHFR F [3]コントロールが過剰発現される(強いTEFプロモーター)など。これは、L-DHFR Fの分布は、[3]のコントロールは、バックグラウンド増殖(図3D)の平均値よりも高いという事実によって強調される。したがって、バックグラウンド増殖分布の外側に明確に定められているいくつかのこの厳しい閾値を下回るスコアを有する相互作用が、は、例えば、一過性または弱間を表すことが、推定ヒットとして考えることができるアクション。例えば、二つのタンパク質をL-DHFRのコントロールのようなDHFR断片の自発的な相補性を可能にすることができるレベルで発現されていない、場合は、これらをさらに研究し、クロス検証できます。別の方法として、1は偽陽性上の真陽性の割合を最大化するために、バイオグリッド35のようなデータベースで報告された物理的な相互作用因子との重複の割合に基づいて、有意性の閾値を設定することができます。例えば、既知の物理的な相互作用物質の数が十分に高くない場合は、L-DHFR分布の使用とは異なり、この代替は必ずしも可能でないかもしれません。また、有意な閾値の選択は、最終的なデータセットで偽陽性と偽陰性の割合に影響を与える。前述のように、例えば、タンパク質が非常に豊富である場合には確かに、他のPPI検出アッセイのように、偽陽性がDHFR融合タンパク質とのタンパク質の非特異的相互作用から生じ得る。このいくつかのプレイ体系PCA画面内のすべてのベイトタンパク質と相互作用し、従って、分析11( 例えば、TEF2とAde17及び補足表2)から除去する必要があるという事実が挙げられる。 ([3] F [1,2]またはF)自発的なDHFRを呈する餌と獲物を識別するために、この問題は、適切なL-DHFRコントロールに対して2コレクションの制御PCA画面を回避するには、相補性は、特定の条件で行うことができ断片各画面の。与えられた餌の機能が分かっている場合、また、遺伝子オントロジー濃縮解析を行うことは、データの信頼性を高めることができる。一方、DHFR-PCAは、いくつかの理由のために偽陰性を生じさせることができる:1)全てのタンパク質は、これらのタンパク質を不安定化させる場合、または、例えば、それらの局在を変更することができるようにDHFR断片に融合させることができない、とDHFR融合C末端は、局在化シグナルと干渉する。いくつかの細胞区画メートルで2)DHFR再構成例えば、葉酸合成に必須の前駆体が利用できない場合などのy葉酸を生成しない。 DHFR相補11を発生するための8nmの距離内にあるように3)C末端の必要性。それらのC末端は、空間に十分近くに配置されていないこのように、よく知られた相互作用が検出されないことがある。これは、間接的であるほとんどがデータベースに報告Nup82物理的相互作用の大部分は、我々のアッセイでは検出されなかったという事実によってここで例示されている。同様に、C末端が膜に対してトランスであるための膜タンパク質間の相互作用は、DHFRにはつながらない相補性を断片化し、11が検出されることはありません。制限は、1)と3)は、タンパク質のN末端にDHFR断片を融合することにより、比較的簡単に回避することができる。そうするC末端の近くに局在化シグナルを妨害することが防止でき、NおよびC末端のシス相対している膜タンパク質の間の相互作用を検出することを可能にする膜へ。
いくつかの課題は、(2,3で検討)ピンの調査に残る。これまでに製造されたPINのマップは、主にそれぞれの種のための単一の実験条件に記載されて、したがって、タンパク質ネットワークが組織されることがありますどのように単一のスナップショットを提供しています。開発または以下の突然変異を横切って、PINが環境の変化に応じて再編成することができる方法を特定の刺激を見るために、他の実験条件の探索が必要とされている。これらの課題は、生細胞中で、彼らは研究室の大きなコミュニティによって使用できるように現在の技術を適合させることにより、リアルタイムでのPPIを問い合わせるための新しい技術の開発によって克服される。 DHFR相補複合体27の量の変化を検出することができる定量的な技術として、DHFR-PCAは、これらの課題を克服するために適合させることができるとのPPIは、DNA損傷剤22によってどのように影響されるかを研究するために使用されている</sup>、化学剤25、遺伝子欠失23,26または他の酵母種およびそれらの混成33。これらの新しい次元を探るPINの動的を明らかにすることがますます重要になるであろう。
The authors have nothing to disclose.
この作品は、ヘルスリサーチ(CIHR)のカナダの研究所によってサポートされていました自然科学とカナダのディスカバリーの助成金とCRLへのヒューマン·フロンティア·サイエンス·プログラムの助成金の工学研究評議会、191597、299432と324265を付与します。 CRLはCIHR新しい研究者である。ギヨームディスはテオのフェローシップでサポートされています。サミュエル·ロシェットはNSERCとFRQNTフェローシップでサポートされています。
Name of Material/Equipement | Company | Catalog Number | Comments/Description |
BioMatrix Robot, Bench-top Configuration | S&P Robotics Inc. | BM5-BC | |
96-format Pin-tool | S&P Robotics Inc. | PH-96-10 | Standard 96-format Pin-tool with 96 high-precision floating pins |
384-format Pin-tool | S&P Robotics Inc. | PH-384-10 | Standard 384-format Pin-tool with 384 high-precision floating pins |
1536-format Pin-tool | S&P Robotics Inc. | PH-1536-05 | Custom 1536-format Pin-tool with 0.5mm high-precision floating pins |
Automated imaging module | S&P Robotics Inc. | IMG-02 | |
Methotrexate | Bioshop Canada Inc. | MTX440 | CAUTION: toxic compound |
Hygromycin B | Bioshop Canada Inc. | HYG003 | |
Nourseothricin dihydrogen sulfate | Werner BioAgents | 5010000 | |
Yeast-Interactome Collection | Thermo Scientific | YSC5849 | |
Omni Tray w/lid sterile | Thermo Scientific | 242811 | |
Anti-DHFR F[1,2] antibody | Sigma-Aldrich | D1067 | |
Anti-DHFR F[3] antibody | Sigma-Aldrich | D0942 |